sEV分离及sEV-ICA制备
获取牛奶来源的sEV并负载ICA,验证其成功制备
通过超速离心从牛奶中分离sEV,与ICA按1:9比例共孵育制备sEV-ICA;通过Western blot、TEM、NTA和HPLC鉴定sEV及sEV-ICA的特征和载药量。
Nanotherapy for bone repair: milk-derived small extracellular vesicles delivery of icariin.
包含体外细胞实验(CCK-8、ALP、Western blot)、体内小鼠颅骨缺损模型、转录组测序、双荧光素酶和ChIP机制验证,证据层级丰富。
MC3T3-E1小鼠前成骨细胞系 小鼠颅骨缺损模型 293T细胞 牛乳来源小细胞外囊泡
sEV-ICA的载药量(HPLC测定为5%-8%) ICA处理浓度0.1 μg/mL 动物模型分组及样本量(C57BL/6小鼠,n=4/组) sEV-ICA中ICA剂量(400 μg)及sEV剂量(3200 μg) siRNA敲低STAT5a后GJA1表达变化
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
获取牛奶来源的sEV并负载ICA,验证其成功制备
通过超速离心从牛奶中分离sEV,与ICA按1:9比例共孵育制备sEV-ICA;通过Western blot、TEM、NTA和HPLC鉴定sEV及sEV-ICA的特征和载药量。
评估sEV-ICA对成骨细胞增殖和分化的促进作用
MC3T3-E1细胞分别用DMSO、ICA、sEV、sEV-ICA处理,检测CCK-8增殖、ALP活性、ALP染色、茜素红染色及成骨标志物表达。
验证sEV-ICA在小鼠颅骨缺损模型中的骨修复效果
将sEV-ICA负载于GelMA水凝胶,植入小鼠颅骨缺损部位,2周后通过大体观察、HE染色和免疫组化评估骨形成。
寻找sEV-ICA促进成骨的关键基因
对DMSO、ICA、sEV和sEV-ICA处理的MC3T3-E1细胞进行RNA测序,通过差异表达基因、GO富集和热图分析,发现GJA1表达升高,并通过Western blot和siRNA敲低验证其功能。
验证STAT5a是否直接结合GJA1启动子并激活其转录
通过siRNA敲低STAT5a观察GJA1表达变化;双荧光素酶报告基因实验验证STAT5a对GJA1启动子的激活;ChIP实验验证STAT5a在GJA1启动子上的结合位点。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| sEV分离 | BCA蛋白检测试剂盒 | Beyotime Institute of Biotechnology | -- |
| sEV表征 | 透射电子显微镜 | -- | -- |
| ZetaView® BASIC NTA | Particle Metrix GmbH | -- | |
| CD81抗体 | Abcam | -- | |
| CD63抗体 | Abcam | -- | |
| CD40抗体 | Bioss Antibodies | -- | |
| ALIX抗体 | Abbexa Ltd. | -- | |
| 药物负载 | 淫羊藿苷 | Chengdu Must Bio-technology Co. Ltd | -- |
| HPLC分析 | 高效液相色谱系统 | Shimadzu Corp | -- |
| 安捷伦1200液相色谱系统 | Agilent Technologies | -- | |
| 细胞培养 | α-MEM培养基 | Gibco; Thermo Fisher Scientific | -- |
| 胎牛血清 | AusGeneX | -- | |
| 地塞米松 | -- | -- | |
| β-甘油磷酸钠 | -- | -- | |
| 维生素C | -- | -- | |
| 免疫荧光 | PKH67染料 | Sigma-Aldrich, Merck KGaA | -- |
| Triton X-100 | -- | -- | |
| 鬼笔环肽抗体 | Yeasen Biotechnology | -- | |
| 苯基吲哚 | Yeasen Biotechnology | -- | |
| 细胞增殖 | CCK-8试剂盒 | APExBIO | -- |
| ALP活性 | ALP检测试剂盒 | Nanjing Jiancheng Bioengineering Institute | -- |
| RT-qPCR | TRIzol试剂 | Sangon Biotech | -- |
| Evo M-MLV反转录试剂盒 | Accurate Biotechnology Ltd. | -- | |
| SYBR Green预混液qPCR试剂盒 | Accurate Biotechnology | -- | |
| SYBR® Premix Ex Taq™ II | TaKaRa | -- | |
| Western blot | RIPA裂解缓冲液 | -- | -- |
| RUNX2抗体 | Signalway Antibody | -- | |
| ALP抗体 | Abcam | -- | |
| STAT5a抗体 | Cell Signaling Technology | -- | |
| GJA1抗体 | Bioworld | -- | |
| GAPDH抗体 | Bioworld | -- | |
| 二抗 | ABclonal | -- | |
| ECL发光液 | -- | -- | |
| Bio-Rad凝胶成像系统 | Bio-Rad | -- | |
| 释放实验 | 甲基丙烯酰化明胶 | Engineering for Life | -- |
| Omnicure S2000固化灯 | Lumen Dynamics Group | -- | |
| 动物实验 | 牙科慢速打磨机 | Saeshin | -- |
| 组织学 | EDTA | -- | -- |
| BMP2抗体 | Abcam | -- | |
| siRNA敲低 | siRNA | General boil | -- |
| Lipofectamine 3000 | Thermo Fisher Scientific | -- | |
| 双荧光素酶 | pEZX-PG04.1载体 | GeneCopoeia Inc. | -- |
| pReceiver-M02载体 | GeneCopoeia Inc. | -- | |
| Secrete-Pair双荧光素酶检测试剂盒 | GeneCopoeia | -- | |
| ChIP | ChIP-IT Express酶法试剂盒 | Active Motif | -- |
| 统计分析 | GraphPad Prism 8.0 | GraphPad Software | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| sEV分离 | 离心时间、转速、温度未明确说明,收集过程中所用缓冲液未明确说明 阅读提示:见Methods 2.1 |
| 药物负载 | 共孵育温度22°C,时间24h,比例1:9,去除未结合药物的离心条件(10,000×g 10min) 阅读提示:见Methods 2.2 |
| 细胞培养 | MC3T3-E1细胞系,培养基α-MEM + 10%FBS + 100U/mL青霉素 + 100mg/mL链霉素,培养条件37°C、5% CO2 阅读提示:见Methods 2.4 |
| 体外成骨诱导 | 成骨诱导液成分(地塞米松10 nmol/L、β-甘油磷酸钠10 mmol/L、维生素C 50 μg/mL),处理浓度ICA 0.1 μg/mL,时间点5天、7天、21天 阅读提示:见Methods 2.4、2.7、Results 3.2 |
| 体内动物实验 | 动物品系C57BL/6,性别雄性,年龄8周,样本量n=4/组,分组(GelMA含PBS、ICA 400 μg、sEV 3200 μg、sEV-ICA 3200 μg,阴性对照无植入),缺损大小1.5×1.5 mm,植入后2周取材 阅读提示:见Methods 2.11 |
| siRNA敲低 | siRNA浓度50 nmol/well,转染试剂Lip3000,敲低基因GJA1、STAT5a、Nrf2、PAX6 阅读提示:见Methods 2.13 |
| 双荧光素酶 | 细胞293T,种子密度1×10^6,转染质粒(GJA1启动子、Over-STAT5a),转染后48h检测 阅读提示:见Methods 2.15 |
| ChIP | 细胞MC3T3-E1密度1.5×10^7,抗体STAT5a和rabbit IgG,使用ChIP-IT Express Enzymatic试剂盒 阅读提示:见Methods 2.16 |