建立CCl4诱导的肝纤维化小鼠模型
构建肝纤维化模型以评估KD的治疗效果。
6周龄雄性C57BL/6J小鼠腹腔注射10% CCl4(2 mL/kg),每周2次,持续8周,同时口服灌胃KD(30、20、10 mg/kg)或溶剂,每日1次,持续8周。
Kinsenoside attenuates liver fibro-inflammation by suppressing dendritic cells via the PI3K-AKT-FoxO1 pathway.
包含体内CCl4诱导肝纤维化模型、体外细胞实验(BMDC、JS-1)、过继转移实验、机制验证(ChIP、siRNA、通路抑制剂/激动剂)等多层级证据,并明确功能与机制验证。
CCl4诱导肝纤维化小鼠模型 骨髓来源树突状细胞(BMDCs) 小鼠肝星状细胞(JS-1) 小鼠原代CD8+T细胞
CCl4诱导肝纤维化小鼠模型:6周龄雄性C57BL/6J小鼠,腹腔注射10% CCl4(2 mL/kg),每周2次,持续8周 KD给药剂量:30、20、10 mg/kg,口服灌胃,每日1次,持续8周 BMDC培养:GM-CSF(20 μg/mL)和IL-4(10 ng/mL)处理7天,LPS(10 μg/mL)诱导成熟24小时 DC过继转移:5×10^6个细胞/只,尾静脉注射,在CCl4暴露6周后第1、8、15天 信号通路验证:PI3K激动剂740 Y-P(20 μg/mL)、PI3K抑制剂LY294002、siFoxO1转染
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
构建肝纤维化模型以评估KD的治疗效果。
6周龄雄性C57BL/6J小鼠腹腔注射10% CCl4(2 mL/kg),每周2次,持续8周,同时口服灌胃KD(30、20、10 mg/kg)或溶剂,每日1次,持续8周。
验证KD是否直接调节DC的成熟和功能。
从骨髓分离BMDCs,用GM-CSF和IL-4培养7天,LPS(10 μg/mL)诱导成熟,并用不同浓度KD处理,检测DC表面标志物(MHC-II、CD86、CCR7、PD-L1)、细胞因子(IL-12、IL-10)和糖酵解。
探究KD通过DC调节HSC活化的机制。
将BMDCs(3×10^4)与JS-1(3×10^5)在transwell中共培养,DC经KD、si-IL-12或KD+si-IL-12预处理,检测JS-1中α-SMA、Col-I、TGF-β1和TIMP-1的表达。
验证DC在KD抗肝纤维化作用中的必要性。
将LPS成熟BMDCs或KD处理的BMDCs(5 μg/mL)通过尾静脉注射给CCl4诱导的LF小鼠,评估肝脏病理、炎症和纤维化指标。
阐明KD调节DC功能的分子机制。
检测KD对LPS或740 Y-P诱导的DC中PI3K/AKT/FoxO1磷酸化的影响,使用LY294002、siFoxO1干预,并通过ChIP检测FoxO1与PD-L1启动子的结合。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | RPMI 1640培养基 | HyClone | -- |
| 粒细胞-巨噬细胞集落刺激因子 | Peprotech | -- | |
| 白细胞介素-4 | Shanghai ExCell Biology Inc. | -- | |
| DMEM/F-12培养基 | HyClone | -- | |
| 胎牛血清 | -- | -- | |
| 细胞处理 | 转化生长因子-β1 | Peprotech | -- |
| 脂多糖 | -- | -- | |
| 细胞分离 | CD8a+T细胞分离试剂盒 | Miltenyi Biotec | -- |
| 凋亡检测 | FITC-Annexin V凋亡检测试剂盒 | BD Biosciences | -- |
| 免疫组化/免疫荧光 | 抗α-SMA抗体 | Proteintech | -- |
| 免疫荧光 | 抗FoxO1抗体 | Cell Signaling Technology | -- |
| Alexa Fluor 594标记驴抗兔IgG | Antgene | -- | |
| 流式细胞术 | FITC标记CD11c抗体 | eBioscience | -- |
| APC标记CD86抗体 | eBioscience | -- | |
| PE标记MHC-II抗体 | eBioscience | -- | |
| PE标记CD274抗体 | eBioscience | -- | |
| APC标记CCR7抗体 | eBioscience | -- | |
| APC标记CD3抗体 | eBioscience | -- | |
| PE标记CD8抗体 | eBioscience | -- | |
| FITC标记CD4抗体 | eBioscience | -- | |
| APC标记NK1.1抗体 | eBioscience | -- | |
| APC标记CD11b抗体 | eBioscience | -- | |
| PE标记Gr1抗体 | eBioscience | -- | |
| FITC标记F4/80抗体 | eBioscience | -- | |
| APC标记CD86抗体 | eBioscience | -- | |
| Alexa 647标记CD206抗体 | eBioscience | -- | |
| siRNA转染 | GenMute™ siRNA转染试剂 | SignaGen Laboratories | -- |
| ChIP实验 | Simple ChIP Plus酶法染色质免疫沉淀试剂盒 | Cell Signaling Technology | -- |
| ELISA | ELISA试剂盒 | eBioscience | -- |
| ELISA试剂盒 | Ruixin Biotech | -- | |
| NO检测 | Griess试剂 | Beyotime | -- |
| 葡萄糖摄取 | 葡萄糖检测试剂盒 | Rsbio | -- |
| 代谢分析 | 安捷伦Seahorse XF细胞培养微孔板 | Agilent Technologies | -- |
| Western blot | PI3K抗体 | Cell Signaling Technology | -- |
| p-PI3K (Tyr458)抗体 | Cell Signaling Technology | -- | |
| AKT抗体 | Cell Signaling Technology | -- | |
| p-AKT (Ser473)抗体 | Cell Signaling Technology | -- | |
| FoxO1抗体 | Cell Signaling Technology | -- | |
| p-FoxO1 (Ser256)抗体 | Signalway Antibody | -- | |
| α-SMA抗体 | Proteintech | -- | |
| GAPDH抗体 | Bioswamp | -- | |
| Histone 3抗体 | Sungene Biotech | -- | |
| ECL化学发光检测试剂盒 | Amersham Biosciences | -- | |
| 双红外激光成像系统(Odyssey CLX) | LI-COR | -- | |
| qPCR | TRIzol试剂 | -- | -- |
| 反转录试剂盒 | Promega | -- | |
| 药物处理 | 金线莲苷 | -- | PubChem |
| LY294002 | -- | PubChem | |
| 740 Y-P | -- | PubChem | |
| 细胞标记 | DiR荧光染料 | -- | -- |
| 动物实验成像 | Pear Trilogy成像系统(Odyssey CLX) | LI-COR | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 动物模型建立 | 小鼠品系、性别、年龄、CCl4剂量、给药频率、持续时间 阅读提示:Materials and methods 2.1, 2.3 |
| KD给药 | KD剂量(10、20、30 mg/kg)、给药方式(口服灌胃)、频率、持续时间 阅读提示:Materials and methods 2.3 |
| BMDC培养 | 骨髓来源、GM-CSF和IL-4浓度、培养时间、LPS浓度和处理时间 阅读提示:Materials and methods 2.4 |
| DC过继转移 | DC数量(5×10^6)、处理条件(KD浓度)、注射时间点 阅读提示:Materials and methods 2.5 |
| 信号通路干预 | 740 Y-P浓度(20 μg/mL)、LY294002浓度、siFoxO1和si-IL-12序列及转染方法 阅读提示:Materials and methods 2.10, 2.11 |
| DC与HSC共培养 | DC和JS-1数量、处理条件(KD、si-IL-12)、共培养时间 阅读提示:Materials and methods 2.6 |