建立自体脂肪移植小鼠模型
评估FTY720对体内脂肪移植存活的影响。
C57BL/6J小鼠切除腹股沟脂肪垫,剪碎后皮下注射于背部,建立自体脂肪移植模型;随机分为对照组(生理盐水)和FTY720组(0.5 mg/kg FTY720腹腔注射)。
FTY720 Improves the Survival of Autologous Fat Grafting by Modulating Macrophages Toward M2 Polarization Via STAT3 Pathway.
包含体内AFG小鼠模型、体外RAW264.7巨噬细胞极化及3T3-L1成脂分化实验,并经功能验证(FCM、IF、qRT-PCR)和机制验证(STAT3通路抑制实验)多层验证。
C57BL/6J小鼠自体脂肪移植模型 RAW264.7巨噬细胞系 3T3-L1前脂肪细胞系
FTY720给药剂量:0.5 mg/kg,腹腔注射 RAW264.7细胞M2极化诱导:IL-4(20 ng/mL)处理24小时 FTY720处理浓度:100 nM 3T3-L1成脂分化诱导条件:1 µM地塞米松、10 µg/mL胰岛素、0.5 mM IBMX处理8天 STAT3通路抑制:使用抑制剂stattic
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
评估FTY720对体内脂肪移植存活的影响。
C57BL/6J小鼠切除腹股沟脂肪垫,剪碎后皮下注射于背部,建立自体脂肪移植模型;随机分为对照组(生理盐水)和FTY720组(0.5 mg/kg FTY720腹腔注射)。
验证FTY720对脂肪移植物存活和结构完整性的影响。
通过测量移植物体积、HE染色观察组织学结构、免疫荧光检测Perilipin阳性成熟脂肪细胞、免疫组化检测CD31阳性新生血管。
探索FTY720对移植物内巨噬细胞极化的影响。
通过流式细胞术和免疫荧光检测M1(CD45+F4/80+CD86+)和M2(CD45+F4/80+CD206+)巨噬细胞比例。
验证FTY720诱导的M2巨噬细胞是否促进前脂肪细胞成脂分化。
用IL-4诱导RAW264.7为M2巨噬细胞,并以FTY720处理,收集条件培养基(FTY720-M2-CM)处理3T3-L1细胞,检测脂滴形成、甘油三酯含量和成脂基因(PPARγ、FABP4、C/EBP-α、Adipoq)表达。
阐明FTY720促进M2极化的潜在分子机制。
通过Western blot检测M0、M2和FTY720处理的M2巨噬细胞中STAT3和p-STAT3蛋白水平,并使用STAT3抑制剂stattic验证其作用依赖性。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | 白细胞介素-4 | BioLegend | -- |
| 药物处理 | 芬戈莫德 | Selleck | -- |
| 细胞培养 | DMEM培养基 | Gibco | -- |
| 胎牛血清 | Gibco | -- | |
| 地塞米松 | -- | -- | |
| 胰岛素 | -- | -- | |
| 异丁基甲基黄嘌呤 | -- | -- | |
| 组织学检查 | CD31抗体 | Abcam | -- |
| 免疫荧光 | Perilipin抗体 | Signalway Antibody | -- |
| F4/80抗体 | Servicebio | -- | |
| CD86抗体 | Servicebio | -- | |
| CD206抗体 | Servicebio | -- | |
| 流式细胞术 | I型胶原酶 | Sigma | -- |
| APC-Cy780-CD45抗体 | BioLegend | -- | |
| FITC-CD45抗体 | BioLegend | -- | |
| BV421-F4/80抗体 | BioLegend | -- | |
| APC-CD86抗体 | BioLegend | -- | |
| PE-CD206抗体 | BioLegend | -- | |
| RT-qPCR | RNAiso Plus | Takara | -- |
| Hieff第一链cDNA合成Super Mix | Yeasen | -- | |
| SYBR Green实时PCR预混液 | Yeasen | -- | |
| 油红O染色和甘油三酯检测 | 甘油三酯GPO-PAP试剂盒 | Jiancheng Biotechnologies | -- |
| Western blot | 细胞裂解液 | Cell Signaling Technology | -- |
| PVDF膜 | Bio-Rad | -- | |
| β-actin抗体 | Santa Cruz Biotechnology | -- | |
| STAT3抗体 | Abcam | -- | |
| p-STAT3抗体 | Bio-Rad | -- | |
| HRP偶联二抗 | Proteintech Group | -- | |
| 显微镜观察 | 光学显微镜 | Sdptop | -- |
| 荧光显微镜 | Olympus | -- | |
| 流式细胞术 | LSR II流式细胞仪 | Becton Dickinson | -- |
| Western blot | ChemiDoc XRS+成像系统 | Bio-Rad | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 动物模型建立 | 小鼠品系、性别、周龄:C57BL/6J雌性6周龄;移植方法:腹股沟脂肪垫切除剪碎后皮下注射背部;FTY720剂量:0.5 mg/kg,腹腔注射;取材时间:第1、2、4、12周 阅读提示:见Materials and Methods中Animals and Model Establishment部分 |
| 体外巨噬细胞极化及FTY720处理 | RAW264.7细胞培养条件;M2极化诱导:IL-4浓度20 ng/mL,处理24小时;FTY720浓度100 nM;处理时间 阅读提示:见Materials and Methods中Cell Culture部分及Figure 4 legend |
| 3T3-L1成脂分化实验 | 分化诱导剂组成及浓度:1 µM地塞米松,10 µg/mL胰岛素,0.5 mM IBMX;处理时间8天;FTY720-M2-CM处理条件 阅读提示:见Materials and Methods中Cell Culture部分及Figure 4 legend |
| STAT3通路抑制实验 | STAT3抑制剂stattic的使用浓度及处理时间 阅读提示:见Results中FTY720 Facilitated Macrophages to M2 Phenotype Switch via STAT3 Pathway部分及Figure 5 legend |