选择性GPR55拮抗作用降低癌细胞的化疗耐药性

Selective GPR55 antagonism reduces chemoresistance in cancer cells.

作者信息Nagendra S Singh, Michel Bernier, Irving W Wainer
PMID27423937
发布时间2016-09
DOI10.1016/j.phrs.2016.07.013

实验完整度

高

包含体外细胞实验、多种细胞系、Western blot、免疫荧光、核蛋白提取等功能和机制验证。

主要模型

PANC-1人胰腺癌细胞系 MDA-MB-231人乳腺癌细胞系 U87MG人胶质母细胞瘤细胞系 MCF-7人乳腺癌细胞系(低GPR55表达对照)

重点核对

MNF处理浓度和时间:24小时,浓度范围(例如0-1μM,1μM用于联合处理) 细胞系:PANC-1、MDA-MB-231、U87MG、MCF-7 预处理方式:MNF预处理24小时后更换培养基再加化疗药 检测指标:MDR蛋白表达、核内Pgp/BCRP、药物核积累、IC50值 对照:0.01% DMSO作为对照组

摘要

G蛋白偶联受体55(GPR55)具有促癌活性,其功能可被(R,R')-4'-甲氧基-1-萘基非诺特罗(MNF)通过尚未明了的信号通路竞争性抑制。本文在人胰腺癌细胞系PANC-1中研究了MNF的抗肿瘤作用,重点关注已知癌症生物标志物的表达以及多药耐药(MDR)外排泵如P-糖蛋白(Pgp)和乳腺癌耐药蛋白(BCRP)的表达和功能。将PANC-1细胞与MNF(1μM)孵育24小时可显著降低EGF受体、丙酮酸激酶M2(PKM2)和β-连环蛋白的蛋白水平,并伴随HIF-1α核积累以及PKM2和β-连环蛋白磷酸化活性形式的显著减少。用MNF或GPR55拮抗剂CID 16020046抑制GPR55可降低总细胞提取物中MDR蛋白的量,同时减少Pgp和BCRP的核表达。在MNF处理的PANC-1细胞中,阿霉素的核积累显著增加,且MNF预孵育增加了这些细胞中阿霉素和吉西他滨的细胞毒性。在高表达GPR55的MDA-MB-231乳腺癌细胞和U87MG胶质母细胞瘤细胞中也观察到MNF增强阿霉素的细胞毒性。数据表明,抑制GPR55活性通过减弱MEK/ERK和PI3K-AKT通路产生抗肿瘤效应,导致MDR蛋白表达和功能降低。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
GPR55抑制是否能降低癌细胞对化疗药物的耐药性,其潜在机制是否涉及MDR蛋白表达的调节。
核心机制
GPR55拮抗剂MNF或CID通过抑制MEK/ERK和PI3K-AKT信号通路,减少PKM2的核转位和β-catenin、HIF-1α的活性,从而下调MDR蛋白(Pgp、BCRP、MRP1、MRP5)的表达,增加化疗药物在细胞内的积累和细胞毒性。
主要证据
在PANC-1细胞中,MNF和CID降低MDR蛋白表达和核内积累,减少p-AKT和核内p-PKM2、p-β-catenin、HIF-1α;MNF预处理显著降低阿霉素和吉西他滨的IC50值,并增加阿霉素的核积累;在MDA-MB-231和U87MG细胞中也观察到MNF增强阿霉素细胞毒性。
研究意义
GPR55拮抗剂可能成为逆转MDR表型的合理治疗策略,尤其为胰腺癌等GPR55表达肿瘤的治疗提供新方法。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

细胞增殖测定

评估MNF对PANC-1、MDA-MB-231和MCF-7细胞生长的影响。

使用[3H]-胸苷掺入实验,将细胞接种于24孔板,用不同浓度MNF处理24小时,测定DNA合成。

2

蛋白表达分析

检测MNF对PANC-1细胞中癌症相关蛋白和MDR蛋白表达的影响。

用MNF处理PANC-1细胞24小时,收集裂解液,通过Western blot检测EGFR、β-连环蛋白、PKM2、细胞周期蛋白D1、Pgp、BCRP、MRP1、MRP5等蛋白水平。

3

GPR55依赖性验证

确认MNF的作用是否通过抑制GPR55实现。

用GPR55拮抗剂CID预处理PANC-1细胞,再用GPR55激动剂AM251处理,检测相关蛋白表达和AKT磷酸化。

4

核转位分析

评估MNF和CID对核内HIF-1α、磷酸化PKM2和β-连环蛋白的影响。

用MNF或CID预处理血清饥饿的PANC-1细胞10分钟,再用AM251处理20分钟,提取核蛋白,通过Western blot检测核内蛋白水平。

5

细胞内药物积累

评估MNF对阿霉素在细胞中积累和核保留的影响。

PANC-1和MDA-MB-231细胞用MNF预处理24小时,再加入阿霉素2小时,通过荧光显微镜观察和定量细胞内荧光强度。

6

化疗药物细胞毒性测定

评估MNF预处理对阿霉素和吉西他滨在PANC-1、MDA-MB-231、U87MG细胞中细胞毒性的增强作用。

细胞用MNF预处理24小时,更换培养基加入不同浓度化疗药,再培养24小时,通过[3H]-胸苷掺入测定细胞活力,计算IC50。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

验证细胞功能变化
验证分子表达变化
验证药物积累

产品清单

实验环节名称品牌货号
杜氏改良Eagle培养基Quality Biological--
RPMI-1640培养基Quality Biological--
Eagle最低必需培养基Quality Biological--
胎牛血清Hyclone--
青霉素/链霉素Quality Biological--
人重组胰岛素Sigma-Aldrich--
MNF----
AM251Sigma-Aldrich--
阿霉素Sigma-Aldrich--
吉西他滨Sigma-Aldrich--
CID 16020046Sigma-Aldrich--
[3H]-胸苷PerkinElmer Life Science--
NE-PER核蛋白提取试剂盒Thermo Fisher Scientific--
RIPA裂解缓冲液Boston BioProducts--
蛋白酶抑制剂混合物Sigma-Aldrich--
4-12%预制胶Invitrogen--
聚偏二氟乙烯膜Invitrogen--
ECL Plus化学发光试剂GE Healthcare--
Lab-Tek II CC2腔室玻片Thermo Scientific Nunc--
Triton X-100Sigma-Aldrich--
Prolong Gold抗荧光淬灭封片剂Invitrogen--
DAPIInvitrogen--
蔡司LSM 710共聚焦显微镜Zeiss--
蔡司Axiovert 200显微镜Zeiss--
ImageJ软件National Institutes of Health--

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
细胞培养
细胞系来源、培养基组成(含血清和抗生素浓度)、培养条件(温度、CO2、湿度)、传代次数限制
阅读提示:Methods 2.2 Cell Culture
药物处理
MNF浓度、孵育时间、给药顺序、溶剂对照(0.01% DMSO)
阅读提示:Methods 2.3, 2.4; Results 3.1-3.4
增殖实验
细胞接种密度、[3H]-胸苷浓度、处理时间、DNA沉淀步骤
阅读提示:Methods 2.3
蛋白表达分析
抗体种类和稀释度、裂解缓冲液、蛋白上样量、电泳及转膜条件、内参蛋白
阅读提示:Methods 2.4
核转位实验
血清饥饿时间、预处理时间、刺激时间、核提取试剂盒、检测蛋白
阅读提示:Methods 2.4.2, 2.5
阿霉素积累实验
MNF预处理浓度和时间、阿霉素浓度和处理时间、荧光显微镜设置
阅读提示:Methods 2.6
细胞毒性实验
化疗药浓度范围、处理时间、MNF预处理条件、IC50计算模型
阅读提示:Methods 2.3, Results 3.3, 3.4