隐花色素介导的CRL4Cop1复合物组装抑制定义了一种进化上保守的信号机制

Cryptochromes-Mediated Inhibition of the CRL4Cop1-Complex Assembly Defines an Evolutionary Conserved Signaling Mechanism.

作者信息Luca Rizzini, Daniel C Levine, Mark Perelis, Joseph Bass, Clara B Peek, Michele Pagano
PMID31155351
期刊Curr Biol
发布时间2019-06-17
DOI10.1016/j.cub.2019.04.073

实验完整度

包含体外细胞系(MEFs、HEK-293T、U-2OS)、体内小鼠模型及原代肝细胞,通过RNA-seq、免疫共沉淀、蛋白质稳定性检测等功能与机制验证。

主要模型

小鼠胚胎成纤维细胞(MEFs) HEK-293T细胞 U-2OS细胞 C57BL/6J小鼠及原代肝细胞

重点核对

KL001浓度10 μM,处理时间18-24小时 siRNA敲低Cop1(ON-TARGETplus SMARTpool) 地塞米松处理(1 μg/小鼠或100 ng/mL) AAV-shRNA体内敲低Cop1(1×10^11 GC 逆转录眶注射) Cry2-N130截短突变体(N端130氨基酸)

摘要

在植物中,隐花色素是负调控泛素连接酶CRL4Cop1的光受体。在哺乳动物中,隐花色素是生物钟的核心组成部分和糖皮质激素受体(GR)的抑制因子。此外,哺乳动物隐花色素失去了与Cop1相互作用的能力,这表明它们无法抑制CRL4Cop1。与这一假设相反,我们发现哺乳动物隐花色素也是CRL4Cop1的负调控因子,通过这一机制,它们在培养细胞和小鼠肝脏中抑制GR转录网络。在机制上,隐花色素通过与Det1相互作用使Cop1失活,Det1是哺乳动物CRL4Cop1复合物的一个亚基,在其他CRL4复合物中不存在。通过这种相互作用,Cop1加入CRL4复合物的能力被抑制;因此,其底物得以积累。因此,哺乳动物中隐花色素与Det1之间的相互作用反映了植物中隐花色素与Cop1之间的相互作用,表明隐花色素-Cop1轴起源于一个共同的祖先。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
哺乳动物隐花色素是否作为CRL4Cop1的负调控因子,并抑制糖皮质激素受体(GR)转录网络?
核心机制
哺乳动物隐花色素(Cry1/Cry2)通过其N端与CRL4Cop1复合物的Det1亚基结合,竞争性取代Cop1,从而抑制CRL4Cop1复合物组装,导致其底物(如c-Jun)稳定并积累,进而抑制GR转录活性。
主要证据
在DKO MEFs中诱导Cry1或Cry2降低GR靶基因表达;敲低Cop1消除隐花色素效应;RNA-seq显示KL001和Cop1敲低影响的GR靶基因启动子富含AP-1基序;免疫共沉淀证实Cry2与Det1结合,且Cry2表达减少Cop1与Det1-Ddb1的结合;Cry2-N130片段足以稳定底物和抑制GR。
研究意义
揭示了隐花色素-Cop1轴在哺乳动物中的保守性,并指出该轴可能调控广泛的信号网络,为未来研究隐花色素依赖的底物稳定及其在不同器官中的生理作用提供基础。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

验证隐花色素对GR的调控依赖Cop1

确定哺乳动物隐花色素是否通过Cop1介导GR转录抑制

在DKO MEFs中诱导Cry1或Cry2,检测GR靶基因Sgk1和Gilz的表达;敲低Cop1观察对隐花色素效应的影响;用KL001稳定内源隐花色素,并敲低Cop1进行类似实验。

2

RNA-seq分析隐花色素-Cop1轴对GR转录网络的影响

在全基因组范围内评估隐花色素和Cop1对GR靶基因的调控

对野生型MEFs进行RNA-seq,在存在或不存在KL001、Cop1敲低的情况下,比较地塞米松处理的转录组变化,分析差异表达基因和转录因子基序。

3

体内验证隐花色素-Cop1轴对GR的节律性抑制

确认在肝脏中隐花色素-Cop1轴对GR活性的时间依赖调控

使用AAV-shRNA在体内敲低Cop1,在ZT2和ZT10时间点检测地塞米松诱导的GR靶基因表达。

4

检测隐花色素对Cop1底物稳定性的影响

验证隐花色素是否通过抑制Cop1活性增加其底物的蛋白稳定性

在DKO MEFs中诱导Cry2,检测c-Jun、JunB和Cop1的蛋白水平及半衰期;用KL001处理野生型MEFs检测底物稳定性;使用c-Jun敲除MEFs表达野生型或突变型c-Jun验证。

5

鉴定隐花色素与Det1的相互作用及功能域

确定隐花色素与CRL4Cop1复合物的相互作用机制及关键结构域

在HEK-293T细胞中共表达HA-Det1与FLAG-Cry2或截短突变体,进行免疫沉淀;检测Cry2-N130突变体对底物稳定性和GR活性的影响。

6

验证隐花色素竞争性抑制Cop1与Det1结合

证明隐花色素通过结合Det1将Cop1从CRL4复合物中置换出来

在HEK-293T细胞中表达Cop1,共表达Cry1或Cry2,检测Cop1与Det1和Ddb1的结合;进行免疫共沉淀和质谱分析。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
DMEM培养基Corning Life Sciences--
胎牛血清Corning Life Sciences--
多西环素Sigma-Aldrich--
KL001Sigma--
MG132Peptides International--
ON-TARGETplus SMARTpool siRNADharmacon--
RNAi Max转染试剂Thermo Fisher Scientific--
聚乙烯亚胺----
siLentFect转染试剂Bio-Rad--
抗FLAG M2琼脂糖珠Sigma--
抗HA琼脂糖树脂Sigma--
蛋白A琼脂糖珠Invitrogen--
抗Cop1抗体BethylA300-894A
抗Cry1抗体BethylA302-614A
抗c-Jun抗体Cell Signaling Technology9165
抗Cry2抗体BethylA302-615A
抗JunB抗体BethylA302-704A
抗β-肌动蛋白抗体Sigma-AldrichA5441
抗Det1抗体Santa Cruz Biotechnologysc-514348
抗Ddb1抗体BethylA300-462A
RNeasy小型试剂盒Qiagen--
RNA至cDNA EcoDry预混液Clontech/Takara Bio639546
ABsolute Blue qPCR SYBR Green MixThermo Fisher ScientificAB-4166B
罗氏Lightcycler 480Roche--
Illumina HiSeq 2500Illumina--
Dynabeads Oligo(dT)25Invitrogen--
C57BL/6J小鼠Jackson LaboratoryJAX:000664
AAV shRNAVector Biolabs--
QuikChange定点突变试剂盒Agilent200523
pcDNA3.1Life Technologies--
pBabeCell Biolabs--
pTRIPZDharmacon--
HEK-293T细胞ATCCCRL-3216
U-2OS细胞ATCCHTB-96
Beta-TC-6细胞ATCCCRL-11506
c-Jun敲除小鼠胚胎成纤维细胞----
Cry1/Cry2双敲除小鼠胚胎成纤维细胞----

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
细胞实验(MEFs)
细胞系(WT、DKO)、地塞米松浓度、KL001浓度、siRNA Cop1处理、检测基因(Sgk1、Gilz)
阅读提示:Figure 1 图注和Methods中'Cell Cultures'、'Gene Silencing by siRNA'部分
RNA-seq分析
处理条件(dexamethasone±KL001±siCop1)、生物重复数、差异表达阈值(p-adj<0.05)
阅读提示:Figure 2 图注和Methods中'RNA Extraction and Sequencing Analysis'部分
体内实验(小鼠肝脏)
小鼠品系、性别、年龄、AAV-shRNA剂量和注射方式、地塞米松剂量和时间、ZT时间点
阅读提示:Figure 3 图注和Methods中'In vivo delivery of shRNA'部分
蛋白稳定性检测
CHX浓度和处理时间、KL001预处理时间、蛋白检测(c-Jun、JunB等)
阅读提示:Figure 4 图注和Methods中'Immunoprecipitation and immunoblotting'部分
免疫共沉淀与质谱
质粒共转染组合、MG132处理、细胞系、免疫沉淀抗体
阅读提示:Figure 5-6 图注和Methods中'Immunoprecipitation and immunoblotting'、'Mass spectrometry'部分
原代肝细胞实验
胶原酶浓度、KL001和胰高血糖素浓度及处理时间
阅读提示:Methods中'Hepatocytes isolation and glucagon treatment'部分