验证隐花色素对GR的调控依赖Cop1
确定哺乳动物隐花色素是否通过Cop1介导GR转录抑制
在DKO MEFs中诱导Cry1或Cry2,检测GR靶基因Sgk1和Gilz的表达;敲低Cop1观察对隐花色素效应的影响;用KL001稳定内源隐花色素,并敲低Cop1进行类似实验。
Cryptochromes-Mediated Inhibition of the CRL4Cop1-Complex Assembly Defines an Evolutionary Conserved Signaling Mechanism.
包含体外细胞系(MEFs、HEK-293T、U-2OS)、体内小鼠模型及原代肝细胞,通过RNA-seq、免疫共沉淀、蛋白质稳定性检测等功能与机制验证。
小鼠胚胎成纤维细胞(MEFs) HEK-293T细胞 U-2OS细胞 C57BL/6J小鼠及原代肝细胞
KL001浓度10 μM,处理时间18-24小时 siRNA敲低Cop1(ON-TARGETplus SMARTpool) 地塞米松处理(1 μg/小鼠或100 ng/mL) AAV-shRNA体内敲低Cop1(1×10^11 GC 逆转录眶注射) Cry2-N130截短突变体(N端130氨基酸)
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
确定哺乳动物隐花色素是否通过Cop1介导GR转录抑制
在DKO MEFs中诱导Cry1或Cry2,检测GR靶基因Sgk1和Gilz的表达;敲低Cop1观察对隐花色素效应的影响;用KL001稳定内源隐花色素,并敲低Cop1进行类似实验。
在全基因组范围内评估隐花色素和Cop1对GR靶基因的调控
对野生型MEFs进行RNA-seq,在存在或不存在KL001、Cop1敲低的情况下,比较地塞米松处理的转录组变化,分析差异表达基因和转录因子基序。
确认在肝脏中隐花色素-Cop1轴对GR活性的时间依赖调控
使用AAV-shRNA在体内敲低Cop1,在ZT2和ZT10时间点检测地塞米松诱导的GR靶基因表达。
验证隐花色素是否通过抑制Cop1活性增加其底物的蛋白稳定性
在DKO MEFs中诱导Cry2,检测c-Jun、JunB和Cop1的蛋白水平及半衰期;用KL001处理野生型MEFs检测底物稳定性;使用c-Jun敲除MEFs表达野生型或突变型c-Jun验证。
确定隐花色素与CRL4Cop1复合物的相互作用机制及关键结构域
在HEK-293T细胞中共表达HA-Det1与FLAG-Cry2或截短突变体,进行免疫沉淀;检测Cry2-N130突变体对底物稳定性和GR活性的影响。
证明隐花色素通过结合Det1将Cop1从CRL4复合物中置换出来
在HEK-293T细胞中表达Cop1,共表达Cry1或Cry2,检测Cop1与Det1和Ddb1的结合;进行免疫共沉淀和质谱分析。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | DMEM培养基 | Corning Life Sciences | -- |
| 胎牛血清 | Corning Life Sciences | -- | |
| 药物处理 | 多西环素 | Sigma-Aldrich | -- |
| KL001 | Sigma | -- | |
| MG132 | Peptides International | -- | |
| siRNA转染 | ON-TARGETplus SMARTpool siRNA | Dharmacon | -- |
| RNAi Max转染试剂 | Thermo Fisher Scientific | -- | |
| 质粒转染 | 聚乙烯亚胺 | -- | -- |
| siLentFect转染试剂 | Bio-Rad | -- | |
| 免疫沉淀 | 抗FLAG M2琼脂糖珠 | Sigma | -- |
| 抗HA琼脂糖树脂 | Sigma | -- | |
| 蛋白A琼脂糖珠 | Invitrogen | -- | |
| Western blot | 抗Cop1抗体 | Bethyl | A300-894A |
| 抗Cry1抗体 | Bethyl | A302-614A | |
| 抗c-Jun抗体 | Cell Signaling Technology | 9165 | |
| 抗Cry2抗体 | Bethyl | A302-615A | |
| 抗JunB抗体 | Bethyl | A302-704A | |
| 抗β-肌动蛋白抗体 | Sigma-Aldrich | A5441 | |
| 抗Det1抗体 | Santa Cruz Biotechnology | sc-514348 | |
| 抗Ddb1抗体 | Bethyl | A300-462A | |
| RT-qPCR | RNeasy小型试剂盒 | Qiagen | -- |
| RNA至cDNA EcoDry预混液 | Clontech/Takara Bio | 639546 | |
| ABsolute Blue qPCR SYBR Green Mix | Thermo Fisher Scientific | AB-4166B | |
| 罗氏Lightcycler 480 | Roche | -- | |
| RNA-seq | Illumina HiSeq 2500 | Illumina | -- |
| Dynabeads Oligo(dT)25 | Invitrogen | -- | |
| 动物实验 | C57BL/6J小鼠 | Jackson Laboratory | JAX:000664 |
| AAV shRNA | Vector Biolabs | -- | |
| 质粒构建 | QuikChange定点突变试剂盒 | Agilent | 200523 |
| pcDNA3.1 | Life Technologies | -- | |
| pBabe | Cell Biolabs | -- | |
| pTRIPZ | Dharmacon | -- | |
| 细胞培养 | HEK-293T细胞 | ATCC | CRL-3216 |
| U-2OS细胞 | ATCC | HTB-96 | |
| Beta-TC-6细胞 | ATCC | CRL-11506 | |
| c-Jun敲除小鼠胚胎成纤维细胞 | -- | -- | |
| Cry1/Cry2双敲除小鼠胚胎成纤维细胞 | -- | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 细胞实验(MEFs) | 细胞系(WT、DKO)、地塞米松浓度、KL001浓度、siRNA Cop1处理、检测基因(Sgk1、Gilz) 阅读提示:Figure 1 图注和Methods中'Cell Cultures'、'Gene Silencing by siRNA'部分 |
| RNA-seq分析 | 处理条件(dexamethasone±KL001±siCop1)、生物重复数、差异表达阈值(p-adj<0.05) 阅读提示:Figure 2 图注和Methods中'RNA Extraction and Sequencing Analysis'部分 |
| 体内实验(小鼠肝脏) | 小鼠品系、性别、年龄、AAV-shRNA剂量和注射方式、地塞米松剂量和时间、ZT时间点 阅读提示:Figure 3 图注和Methods中'In vivo delivery of shRNA'部分 |
| 蛋白稳定性检测 | CHX浓度和处理时间、KL001预处理时间、蛋白检测(c-Jun、JunB等) 阅读提示:Figure 4 图注和Methods中'Immunoprecipitation and immunoblotting'部分 |
| 免疫共沉淀与质谱 | 质粒共转染组合、MG132处理、细胞系、免疫沉淀抗体 阅读提示:Figure 5-6 图注和Methods中'Immunoprecipitation and immunoblotting'、'Mass spectrometry'部分 |
| 原代肝细胞实验 | 胶原酶浓度、KL001和胰高血糖素浓度及处理时间 阅读提示:Methods中'Hepatocytes isolation and glucagon treatment'部分 |