筛选肿瘤相关hnRNP
确定对结直肠癌细胞生长影响最大的hnRNP家族成员
在HCT116细胞中分别敲低20种代表性hnRNP,使用SRB assay检测细胞活力;验证hnRNP A0敲低对多种癌细胞和非癌细胞生长的影响,并过表达hnRNP A0观察效果。
A tumor-specific modulation of heterogeneous ribonucleoprotein A0 promotes excessive mitosis and growth in colorectal cancer cells.
包含体外细胞系筛选、流式细胞术、Western blot、RNA-seq、免疫沉淀、基因编辑、异种移植模型及AOM-DSS小鼠模型等多层级验证。
结直肠癌细胞系HCT116 胃癌细胞系MKN45 胰腺癌细胞系SUIT-2和PANC-1 食管癌细胞系OE33 非肿瘤细胞系CoEpiC、HCEC-1CT、Het1A 结直肠癌患者组织样本 异种移植裸鼠模型 AOM-DSS诱导的结直肠癌小鼠模型
hnRNP A0敲低显著抑制HCT116、MKN45、SUIT-2、PANC-1、OE33细胞生长,但不影响非肿瘤细胞(n=5) hnRNP A0 siRNA处理HCT116细胞48小时导致G2/M期阻滞(G2/M 68.29%)和染色体错位(62.0%) hnRNP A0磷酸化位点Ser84缺失降低NUDT12、OPN3、RAB3GAP1 mRNA表达并抑制细胞生长 MK-2抑制剂PF-3644022处理HCT116细胞降低hnRNP A0与RAB3GAP1等mRNA结合 AOM-DSS小鼠模型中hnRNP A0或RAB3GAP1敲低减少肿瘤数量
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
确定对结直肠癌细胞生长影响最大的hnRNP家族成员
在HCT116细胞中分别敲低20种代表性hnRNP,使用SRB assay检测细胞活力;验证hnRNP A0敲低对多种癌细胞和非癌细胞生长的影响,并过表达hnRNP A0观察效果。
评估hnRNP A0对结直肠癌细胞有丝分裂和凋亡的调控作用
用hnRNP A0 siRNA处理HCT116细胞48小时,通过流式细胞术分析细胞周期,免疫细胞化学检测染色体排列,Western blot检测cleaved PARP和caspase-3,TUNEL染色检测凋亡。
识别hnRNP A0直接结合并稳定化的mRNA,确定介导其功能的靶标
通过RNA免疫沉淀(RIP)和RNA-seq分析hnRNP A0结合的mRNA;通过siRNA敲低hnRNP A0后的RNA-seq分析表达变化的mRNA;取交集筛选候选靶标;用siRNA敲低候选靶标验证对细胞活力的影响。
确认hnRNP A0的磷酸化(Ser84)对其结合和稳定靶标mRNA的必要性
比较非肿瘤细胞CoEpiC中hnRNP A0的靶标;检测癌细胞和非癌细胞中hnRNP A0总蛋白和磷酸化水平;用MK-2抑制剂PF-3644022处理癌细胞,检测靶标mRNA表达;构建Ser84敲除的HCT116细胞(CRISPR-Cas9)检测靶标mRNA表达和细胞生长;在hnRNP A0敲除细胞中过表达hnRNP A0恢复靶标表达;异种移植模型验证PF-3644022的效果。
验证hnRNP A0通过RAB3GAP1调控ZWINT1蛋白稳定性和染色体排列的机制
检测RAB3GAP1和OPN3 siRNA对染色体排列的影响;Western blot检测securin和cyclin B1表达;用MG132处理检查ZWINT1降解;IP检测ZWINT1与活性Rab3共定位;构建AOM-DSS模型评估hnRNP A0和RAB3GAP1敲低对肿瘤形成的影响。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | McCoy's 5A培养基 | ATCC | -- |
| RPMI-1640培养基 | -- | -- | |
| DMEM培养基 | -- | -- | |
| 胎牛血清 | -- | -- | |
| 青霉素 | -- | -- | |
| 链霉素 | -- | -- | |
| 结肠上皮细胞培养基 | ScienCell | -- | |
| 支气管上皮细胞生长基础培养基 | Lonza | -- | |
| ColoUp培养基 | Biochrom | FG0615 | |
| GlutaMAX™-1 | Gibco | 35050-038 | |
| 宇宙小牛血清 | Hyclone | SH30087 | |
| 表皮生长因子 | Sigma Aldrich | E9644 | |
| 胰岛素 | Sigma Aldrich | I9278 | |
| 脱铁转铁蛋白 | Sigma Aldrich | T2036 | |
| 氢化可的松 | Sigma Aldrich | H0396 | |
| 蛋白质提取 | 哺乳动物细胞提取试剂盒 | BioVision | -- |
| Western blotting | 硝酸纤维素膜 | -- | -- |
| SuperBlock T-20封闭液 | Thermo Fisher Scientific | -- | |
| 裂解型caspase-3抗体 | Cell Signaling Technology | 9661 | |
| 裂解型PARP抗体 | Cell Signaling Technology | 5625 | |
| hnRNP A0抗体 | Novus Biologicals | NBP2-22293 | |
| 磷酸化hnRNP A0抗体 | Signalway Antibody | 12686 | |
| ZWINT1抗体 | Bethyl Laboratories | A300-781A | |
| RAB3GAP1抗体 | Proteintech Group | 21663-1-AP | |
| Securin抗体 | Abcam | ab79546 | |
| Cyclin B1抗体 | Abcam | ab32053 | |
| OPN3抗体 | Abcam | ab75285 | |
| NUDT12抗体 | Proteintech Group | 17487-1-AP | |
| 辣根过氧化物酶标记的二抗 | R&D Systems | -- | |
| SuperSignal West Pico增强化学发光系统 | Thermo Fisher Scientific | -- | |
| 肌动蛋白抗体 | BD Transduction Laboratories | -- | |
| RNA免疫沉淀 | NP-40细胞裂解液 | Thermo Fisher Scientific | -- |
| RNA酶抑制剂 | Promega | -- | |
| 完全蛋白酶抑制剂混合物 | Roche | -- | |
| Dynabeads免疫沉淀试剂盒 | VERITAS | -- | |
| mirVana RNA分离试剂盒 | Thermo Fisher Scientific | -- | |
| 实时定量PCR | TaqMan基因表达检测 | -- | -- |
| siRNA转染 | siRNA文库 | Bioneer | -- |
| Lipofectamine RNAiMAX转染试剂 | Thermo Fisher Scientific | -- | |
| 过表达 | pCI Neo 3×FLAG载体 | -- | -- |
| Lipofectamine 3000转染试剂 | Thermo Fisher Scientific | -- | |
| SRB assay | 磺基罗丹明B | -- | -- |
| TUNEL染色 | 细胞凋亡原位检测试剂盒(TMR红色) | Roche Diagnostic | -- |
| 免疫细胞化学 | Hoechst 33342染料 | Invitrogen-Molecular Probes | -- |
| α-微管蛋白抗体 | Novus Biologicals | -- | |
| 活性Rab3抗体 | NewEast Bioscience | -- | |
| ZWINT1抗体 | Bethyl Laboratories | -- | |
| Alexa 594或488标记的二抗 | Thermo Fisher Scientific | -- | |
| 转录组分析 | Ion Total RNA-Seq试剂盒v2 | Thermo Fisher Scientific | -- |
| Ion OneTouch系统 | Thermo Fisher Scientific | -- | |
| Ion OneTouch 200模板试剂盒v3 | Thermo Fisher Scientific | -- | |
| Ion OneTouch ES系统 | Thermo Fisher Scientific | -- | |
| Ion PI芯片 | Thermo Fisher Scientific | -- | |
| Ion Proton半导体测序仪 | Thermo Fisher Scientific | -- | |
| 实时定量PCR | RNeasy小提试剂盒 | Qiagen | -- |
| 高容量cDNA逆转录试剂盒 | Applied Biosystems | -- | |
| 流式细胞术 | RNA酶 | Wako Pure Chemicals | -- |
| 碘化丙啶 | -- | -- | |
| BD FACSCalibur流式细胞仪 | Becton Dickinson | -- | |
| 基因编辑 | pX459载体 | Addgene | -- |
| Neon转染系统 | Thermo Fisher Scientific | -- | |
| Applied Biosystems 3500基因分析仪 | Applied Biosystems | -- | |
| 异种移植 | GENOMONE-Si转染试剂盒 | Ishihara Sangyo | -- |
| AOM-DSS模型 | 氧化偶氮甲烷 | Wako Pure Chemicals | -- |
| 葡聚糖硫酸钠 | MP Biomedicals | -- | |
| 分子对接 | MOE软件 | MOLSIS | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 细胞培养 | 各细胞系的培养基和添加物,如HCT116用McCoy's 5A,MKN45用RPMI-1640,SUIT-2用DMEM,添加10% FBS等 阅读提示:Materials and methods, Cell culture |
| hnRNP A0敲低 | siRNA序列(hnRNP A0 #1和#2)及转染试剂(Lipofectamine RNAiMAX) 阅读提示:Materials and methods, siRNA and transfection |
| 细胞周期分析 | 处理时间48小时,流式细胞术检测G1/S/G2/M期比例 阅读提示:Results, Figure 2a;Materials and methods, Flow cytometry |
| RNA免疫沉淀和RNA-seq | 抗体(anti-hnRNP A0),免疫沉淀试剂盒,RNA提取和测序平台 阅读提示:Materials and methods, RNA-immunoprecipitation, Transcriptome analyses |
| 基因编辑(Ser84删除) | CRISPR-Cas9载体(pX459),设计的sgRNA序列,电穿孔系统 阅读提示:Materials and methods, Gene editing of HNRNP A0 |
| 异种移植模型 | HCT116细胞数量(2×10^6),小鼠品系(BALB/c nude),siRNA注射频率(每日) 阅读提示:Materials and methods, Xenografts |
| AOM-DSS模型 | AOM剂量(10 mg/kg),DSS浓度(1%),处理周期,siRNA给药频率(每2天) 阅读提示:Materials and methods, AOM–DSS carcinogenesis mice model |