验证TDG结合DNA/RNA杂交体
测试TDG是否能结合DNA/RNA杂交双链体。
使用凝胶电泳迁移率变动分析(EMSA)测量TDG对含有UF修饰的DNA/RNA杂交体(H1-UF, H2-UF)和相应DNA/DNA双链体的结合亲和力,并计算Kd值。
Thymine DNA glycosylase binds to R-loops and excises 5-formyl and 5-carboxyl cytosine from DNA/RNA hybrids.
体外生化实验(EMSA、单周转动力学、19F NMR)、细胞内实验(DRIP、ChIP-seq分析)以及多种底物模型,包含功能验证和机制验证。
体外合成的DNA/RNA杂交底物 来自TCF21启动子的R-loop底物 HeLa细胞转染TDG表达质粒 小鼠胚胎干细胞ChIP-seq和MapR数据
TDG对DNA/RNA杂交体的结合亲和力(Kd值) TDG对5fC/5caC的切除速率(kmax) TDG在对称修饰CpG位点的链选择性 TDG与R-loop的细胞共定位(DRIP实验)
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
测试TDG是否能结合DNA/RNA杂交双链体。
使用凝胶电泳迁移率变动分析(EMSA)测量TDG对含有UF修饰的DNA/RNA杂交体(H1-UF, H2-UF)和相应DNA/DNA双链体的结合亲和力,并计算Kd值。
测试TDG是否能在DNA/RNA杂交体上催化碱基切除。
使用单周转动力学实验,在过量TDG下测量TDG切除含G•U或G•T的DNA/RNA杂交体的速率,并比较TDGA145G突变体的活性。
测试TDG是否能从DNA/RNA杂交体中切除5fC和5caC。
使用单周转动力学测定TDG对含5fC或5caC的杂交底物(H1-5fC, H1-5caC)的切除速率,并与DNA/DNA双链体比较。
探究DNA/RNA杂交体中TDG介导的核苷酸翻转是否受损。
使用含UF或TF的DNA/RNA杂交体和DNA/DNA双链体,在有无TDG存在下进行19F NMR测量,计算翻转平衡常数Kflip。
测试TDG是否能在内源序列衍生的真实R-loop结构上切除碱基。
合成了包含TCF21启动子区域的DNA底物,构建R-loop、flap和hybrid结构,通过单周转动力学测定TDG的切除活性。
测试R-loop是否使TDG偏向于切除杂交链,从而避免DSB形成。
构建含对称G•U的DNA双链体(symGU)和R-loop底物(symGU-R),通过单周转动力学监测两条链的切除,并用native PAGE检测DSB形成。
探究TDG在细胞内是否与R-loop结构结合。
在HeLa细胞中过表达TDG,进行DNA-RNA免疫沉淀(DRIP)实验,结合S9.6抗体和Western blot检测TDG的共沉淀;并分析mESC中TDG ChIP-seq与MapR信号的全局重叠。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| DNA合成 | Integrated DNA Technologies | Integrated DNA Technologies | -- |
| Expedite 8909 DNA/RNA合成仪 | -- | -- | |
| 核苷亚磷酰胺 | Glen Research | -- | |
| 荧光标记 | 磺基-Cy3 NHS酯 | Lumiprobe Life Science Solutions | 21320 |
| 花青素5 NHS酯 | Lumiprobe Life Science Solutions | 23320 | |
| DRIP实验 | Dynabeads蛋白A磁珠 | Thermo Fisher Scientific | 10001D |
| 抗DNA-RNA杂交体[S9.6]抗体 | Kerafast, Inc. | ENH001 | |
| Western blot | TDG多克隆抗体 | Proteintech | 13370-1-AP |
| 山羊抗兔IgG(H+L)高交叉吸附二抗,Alexa Fluor Plus 647 | Thermo Fisher Scientific | A32733 | |
| 细胞培养 | HeLa S3细胞 | American Type Culture Collection | CCL-2.2 |
| DMEM培养基 | Thermo Fisher Scientific | -- | |
| 细胞转染 | Lipofectamine 3000转染试剂 | Thermo Fisher Scientific | L3000008 |
| 蛋白纯化 | His GraviTrap TALON柱 | CYTIVA | 29000594 |
| Sephadex G-25树脂HiTrap脱盐柱 | Cytiva | 17140801 | |
| HiTrap Q HP阴离子交换层析柱 | Cytiva | 17115301 | |
| Amicon Ultra离心过滤器(3 kDa MWCO) | Millipore Sigma | UFC900308 | |
| DSB检测 | Hpy188I限制酶 | New England Biolabs | R0617S |
| 样品处理 | 蛋白酶K | New England Biolabs | P8107S |
| Western blot | NuPAGE LDS样品缓冲液 | Thermo Fisher Scientific | NP0007 |
| Trans-Blot Turbo转印系统 | Bio-Rad | -- | |
| 凝胶成像 | ChemiDoc MP成像系统 | Bio-Rad Laboratories, Inc | -- |
| Image Lab软件6.1.0版 | Bio-Rad Laboratories, Inc | -- | |
| 数据处理 | GraphPad Prism 9 | GraphPad Software | -- |
| NMR | Bruker 600 MHz波谱仪 | Bruker | -- |
| DNA浓度测定 | NanoDrop 2000c | Thermo Fisher Scientific | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| TDG结合实验 | TDG浓度范围、底物浓度、缓冲液成分(NaCl, MgCl2, Tris-HCl pH, 甘油)、孵育温度和时间 阅读提示:Methods: Electrophoretic mobility shift assay |
| 碱基切除动力学 | 底物浓度、TDG浓度、缓冲液成分、反应温度、时间点 阅读提示:Methods: Glycosylase assays |
| 19F NMR | DNA浓度、TDG浓度、缓冲液(NaCl, TCEP, Tris-HCl pH, D2O)、温度、扫描次数 阅读提示:Methods: 19F NMR spectroscopy |
| DSB实验 | TDG浓度、APE1浓度、底物浓度、缓冲液、反应时间、蛋白处理 阅读提示:Methods: DSB assay |
| DRIP实验 | 细胞类型、转染条件、裂解缓冲液、抗体(S9.6)、RNase处理、洗涤条件 阅读提示:Methods: DNA-RNA immunoprecipitation |
| 细胞培养与转染 | 细胞系(HeLa S3)、培养基、转染试剂及用量、质粒 阅读提示:Methods: Cell culture and transfection |