免疫与感染模型建立
建立不同免疫方案下SARS-CoV-2感染的K18-hACE2小鼠模型,以评估疫苗的保护效果。
K18-hACE2小鼠通过肌肉注射接受不同疫苗或对照,随后鼻内感染SARS-CoV-2,并在不同时间点处死。
Immunization with MVA-based vaccines protects K18-hACE2 mice from SARS-CoV-2 infection-associated inflammatory lesions in brains.
研究包含体内动物实验(K18-hACE2小鼠)、多种疫苗构建体、不同免疫方案,并通过组织学、免疫组化及图像分析验证结果,证据层级较多。
K18-hACE2小鼠(B6.Cg-Tg (K18-ACE2)2Prlmn/J)
K18-hACE2小鼠的免疫方案(两种剂量或单剂量,间隔时间) 疫苗类型(MVA-SARS-2-S、MVA-SARS-2-ST、MVA-SARS-2-N、MVA-SARS-2-ST/N) 免疫与感染间隔(四周或两天) 感染剂量与毒株(3.6 × 10^4 TCID50,Germany/BavPat1/2020) 观察时间点(6, 7, 8 dpi)
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
建立不同免疫方案下SARS-CoV-2感染的K18-hACE2小鼠模型,以评估疫苗的保护效果。
K18-hACE2小鼠通过肌肉注射接受不同疫苗或对照,随后鼻内感染SARS-CoV-2,并在不同时间点处死。
评估脑和视网膜的炎症病变及病毒抗原分布。
脑和眼睛固定后包埋切片,进行HE染色和免疫组化染色(抗SARS-CoV-2-NP、Iba-1、CD3),并进行半定量和定量分析。
比较不同免疫组间的病理变化差异,验证疫苗的神经保护效果。
使用Kruskal-Wallis检验和Dunn-Bonferroni事后检验分析血管评分、病毒抗原评分、Iba-1阳性面积百分比及CD3阳性细胞数。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 免疫组化 | 抗SARS-CoV-2核衣壳蛋白抗体 | Sino Biological | 40143-MM05 |
| 抗Iba-1抗体 | FUJIFILM Wako Pure Chemical Corporation | #019-197 | |
| 抗CD3抗体 | Dako Agilent | #A0452 | |
| 对照血清 | 正常兔血清 | Sigma-Aldrich Chemie GmbH | #R4505 |
| 对照腹水 | 非免疫BALB/c小鼠腹水 | Cedarlane® | #BL CL8100 |
| 组织切片数字化 | Olympus VS200切片扫描仪 | Olympus Deutschland GmbH | -- |
| 图像分析 | QuPath软件 | -- | -- |
| 统计分析 | SPSS for Windows | IBM® SPSS® Statistics | -- |
| 图形绘制 | GraphPad Prism | GraphPad Software, Inc. | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 动物实验与免疫 | 小鼠品系:K18-hACE2;性别:雌性和雄性;免疫途径:肌肉注射;免疫方案:两次(第0天和21天)或一次(第0天);疫苗类型;感染时间;感染剂量和毒株 阅读提示:Methods/2.1 动物实验和研究设计,Figure 1 |
| 组织病理学与免疫组化 | 组织固定时间(脑72小时,眼睛3周);切片厚度;抗体稀释度(抗Iba-1 1:8000,抗CD3 1:200);评分系统 阅读提示:Methods/2.2 组织学和免疫组化,Figure legends (图2, 3, 4) |
| 图像分析与统计 | 扫描仪型号(Olympus VS200);软件版本(QuPath 0.4.3);统计方法(Kruskal-Wallis检验和Dunn-Bonferroni校正);显著性水平(p≤0.05) 阅读提示:Methods/2.3 数字图像分析,2.4 统计分析 |