人HRD1泛素连接酶复合物的结构洞察

Structural insights into the human HRD1 ubiquitin ligase complex.

作者信息Liling Guo, Guoyun Liu, Jingjing He, Xiaoxiao Jia, Yonglin He, Zhenhua Wang, Hongwu Qian
PMID40593878
发布时间2025-07-01
DOI10.1038/s41467-025-61143-z

实验完整度

文献包含冷冻电镜结构解析、体外生化验证(免疫共沉淀、ERAD功能实验)等多个独立证据层级,并进行了功能验证。

主要模型

HEK293F细胞过表达HRD1-SEL1L-XTP3B复合物 HRD1-SEL1L-XTP3B与Derlin1/2共表达复合物 HEK293T敲除细胞(HRD1−/−、SEL1L−/−)

重点核对

HRD1二聚化界面关键残基(TM3/8)突变对HRD1-HRD1相互作用及ERAD功能的影响 SEL1L与HRD1界面残基(如F29E/Y30E、Q28E)突变对复合物形成及功能的影响 SEL1L与XTP3B界面残基(如R620A)突变对复合物形成及功能的影响 SEL1L中识别修剪N-聚糖的残基(K688A/D692A)突变对底物清除的影响 Derlin存在下SEL1L构象变化区域(如柔性环484-495、四螺旋束)突变对ERAD功能的影响

摘要

在内质网(ER)中,有缺陷的蛋白质通过ER相关蛋白降解(ERAD)途径被清除。HRD1泛素连接酶复合物以HRD1、SEL1L、XTP3B或OS9以及Derlin家族蛋白为核心组分,在管腔ERAD底物的识别、逆转位和泛素化中发挥重要作用。然而,其分子基础尚不清楚。在此,我们解析了人HRD1-SEL1L-XTP3B复合物在3.3 Å分辨率下的冷冻电镜结构。HRD1是一个二聚体,但只有一个原聚体携带SEL1L-XTP3B复合物,形成2:1:1的复合物。对电镜图谱的仔细检查揭示了一个由XTP3B和SEL1L夹持的修剪后的N-聚糖,SEL1L也可能参与修剪后聚糖的识别。当与Derlin蛋白共表达时,该复合物发生剧烈的构象变化。HRD1二聚体被破坏,两个HRD1-SEL1L-XTP3B(1:1:1)单元通过两个SEL1L分子形成的四螺旋束连接在一起。四螺旋束还接触胶束,导致跨膜区域弯曲。这些发现表明,Derlins的结合可能诱导ER膜局部弯曲。进行了基于细胞的功能测定以验证结构观察。我们的工作为进一步阐明哺乳动物HRD1复合物介导的ERAD的机制提供了结构基础。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
哺乳动物HRD1-SEL1L-XTP3B复合物的分子结构及其如何识别内质网管腔底物并与Derlin蛋白协同发挥功能。
核心机制
HRD1形成二聚体,但仅一个原聚体结合SEL1L-XTP3B;XTP3B的MRH1结构域和SEL1L的SLR12协同识别修剪后的N-聚糖;Derlin蛋白诱导SEL1L发生构象重排,形成四螺旋束,导致HRD1二聚体破坏并可能引起ER膜弯曲。
主要证据
冷冻电镜结构(3.3 Å和3.5 Å分辨率)结合功能实验:HRD1界面突变影响二聚化及CD147清除;SEL1L与XTP3B界面突变影响复合物形成及CD147清除;SEL1L中参与聚糖识别的残基突变影响CD147清除;Derlin诱导的SEL1L构象变化相关突变(如A484-487、四螺旋束残基)影响CD147清除。
研究意义
该研究为理解哺乳动物HRD1复合物介导的ERAD机制提供了结构基础,有助于阐明与HRD1功能相关的生理和病理过程。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

内源HRD1复合物纯化尝试

分离天然HRD1复合物用于结构解析,但因其异质性和低产量未能实现。

在HEK293T细胞中对内源HRD1基因C端敲入FLAG和Strep标签,通过亲和纯化分离天然复合物,并通过免疫印迹确认组分,但复合物异质性高、产量低,不适合结构解析。

2

重组HRD1-SEL1L-XTP3B复合物表达与纯化

获得足量和均质的HRD1-SEL1L-XTP3B复合物用于冷冻电镜结构解析。

在HEK293F细胞中过表达HRD1、SEL1LFL或SEL1LX3、XTP3B(C端Flag和His标签),通过抗Flag亲和、Ni-NTA和SEC纯化复合物,获得均质样品用于冷冻电镜。

3

冷冻电镜结构解析

确定HRD1-SEL1L-XTP3B复合物及其与Derlin蛋白共表达时的结构。

制备冷冻样品,使用Titan Krios收集数据,通过cryoSPARC处理,分别解析HRD1-SEL1LFL-XTP3B(3.3 Å)、HRD1-SEL1LX3-XTP3B(3.5 Å)、HRD1-SEL1L-XTP3B(state D1)(3.5 Å)和state D2(3.7 Å)的结构。

4

结构验证与功能实验

验证结构观察到的关键界面和构象变化对HRD1复合物功能的影响。

通过定点突变关键残基,进行免疫共沉淀验证相互作用,并通过ERAD实验检测清除内源底物CD147的能力,以及泛素化实验。

5

Derlin蛋白诱导的构象变化分析

研究Derlin1或Derlin2共表达对HRD1-SEL1L-XTP3B复合物结构的影响。

将HRD1截短体(1-341)、SEL1LFL、XTP3B与Derlin1或Derlin2共表达,纯化后解析结构(state D1/D2),比较其与无Derlin结构的差异,并通过突变验证关键区域功能。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

验证样本或模型特征
验证分子表达变化
验证免疫效应
验证机制链路

产品清单

实验环节名称品牌货号
DMEM培养基Gibco--
胎牛血清Vivacell--
青链霉素----
SMM 293T-TII培养基Sino Biological Inc.--
Lipofectamine 3000转染试剂Invitrogen--
聚乙烯亚胺Yeasen Biotechnology (Shanghai)--
癸基麦芽糖新戊二醇Sigma--
甘氨脱氧胆酸钠Anatrace--
anti-FLAG M2亲和树脂Sigma--
Ni-NTA树脂Qiagen--
Strep-Tactin XT 4Flow树脂IBA Lifesciences--
生物素----
FLAG肽----
咪唑----
Superose 6 Increase 10/300 GL 凝胶过滤柱Cytiva--
Quantifoil R1.2/1.3铜网Quantifoil--
Vitrobot Mark IV 冷冻制样仪Thermo Fisher--
Titan Krios 冷冻电镜FEI--
K3直接电子探测器Gatan--
cryoSPARC----
Coot----
PHENIX----
PyMol----
Chimera----
Immobilon-P PVDF膜Millipore--
TBS缓冲液Biosharp--
增强化学发光底物Proteintech--
HRP标记二抗Proteintech--
抗SEL1L抗体Proteintech29801-1-AP
抗HRD1抗体Proteintech13473-1-AP
抗CD147抗体Proteintech11989-1-AP
抗GAPDH抗体Proteintech60004-1-Ig
抗DERL1抗体Abcamab176732

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
重组复合物表达与纯化
过表达细胞系(HEK293F)、转染试剂(PEI)、溶解去垢剂(DMNG浓度)、纯化缓冲液(GDN浓度)、亲和标签(FLAG/His)、SEC柱型号
阅读提示:Methods: Protein expression and purification
冷冻电镜结构解析
样品浓度(不同复合物不同)、网格类型、制样条件(湿度、温度)、数据收集参数(电压、总剂量、像素大小)、数据处理软件版本
阅读提示:Methods: Cryo-EM sample preparation and data collection, Cryo-EM data processing
HRD1二聚化验证
HRD1突变位点(TM3/8)、共表达标签(Strep/FLAG)、溶解条件、检测方法(免疫印迹)
阅读提示:Methods: Biochemical validation of the interactions in the HRD1 complex - HRD1-HRD1 interactions
ERAD功能实验
细胞系(HRD1−/−或SEL1L−/−)、转染质粒量、检测时间点、底物(CD147)、检测方法(免疫印迹)
阅读提示:Methods: ERAD assay
泛素化实验
MG132处理浓度和时间、裂解缓冲液、检测抗体
阅读提示:Methods: Substrate ubiquitination assay