chIRAP基因发现与序列分析
鉴定一个在chIFITM2基序内的新开放阅读框,并分析其序列特征和进化保守性。
通过序列比较发现486 bp的ORF,进行结构预测、启动子分析、不同禽类序列比对,并通过PCR检测细胞和组织中的表达。
Identification and antiviral mechanism of a novel chicken-derived interferon-related antiviral protein targeting PRDX1.
包含体外细胞实验(DF-1等)、鸡胚体内实验、Co-IP、质谱分析、分子对接、点突变及功能验证等多层级证据。
DF-1细胞系 鸡胚 CEK、CEF原代细胞
chIRAP过表达对VSV-EGFP、NDV-rL-EGFP、NDV-Na-EGFP感染的抑制作用(MOI和时间) siRNA敲低内源性chIRAP对病毒增殖的影响 鸡胚中chIRAP转染(5 μg DNA/0.8 μl jetPEI)后H1N1感染(1×10^5 Pfu) chIRAP与PRDX1的相互作用(Co-IP)及分子对接预测位点 PRDX1点突变(D79A等)对chIRAP抗病毒效果和ROS水平的影响
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
鉴定一个在chIFITM2基序内的新开放阅读框,并分析其序列特征和进化保守性。
通过序列比较发现486 bp的ORF,进行结构预测、启动子分析、不同禽类序列比对,并通过PCR检测细胞和组织中的表达。
检测chIRAP是否响应病毒和干扰素刺激,并受干扰素通路调控。
qRT-PCR检测NDV感染和I/II/III型干扰素刺激后chIRAP表达水平,以及过表达chIRAP对干扰素通路相关基因的影响。
验证chIRAP过表达对多种病毒的抑制作用。
构建chIRAP重组表达质粒转染DF-1细胞,通过CCK8、激光共聚焦、荧光观察、流式细胞术和WB检测对VSV、NDV、H9N2的抑制效果。
探究内源性chIRAP缺失对病毒增殖及干扰素抗病毒效应的影响。
通过siRNA敲低chIRAP,检测敲低效率、细胞活力、病毒增殖情况,以及chIFNλ3的抗病毒效应是否受影响。
验证chIRAP在体内的抗病毒作用。
通过鸡胚卵黄囊动脉注射chIRAP质粒,48小时后感染H1N1,检测病毒载量和chIRAP表达。
建立稳定表达chIRAP的细胞系以研究其抗病毒机制。
构建pLV-TRE3G-chIRAP-HA载体,与pLV-Tet3G共转染DF-1细胞,筛选单克隆,优化诱导条件,验证抗病毒活性。
筛选与chIRAP相互作用并影响其抗病毒功能的蛋白。
通过Co-IP和质谱鉴定相互作用蛋白,siRNA敲低候选蛋白检测对chIRAP抗病毒效果的影响,并用Co-IP验证与PRDX1的相互作用。
确定PRDX1上影响chIRAP功能的位点,并探究机制。
构建PRDX1点突变体,敲低内源性PRDX1后过表达突变体,检测对chIRAP抗病毒效果的影响;检测突变体对ROS清除能力以及chIRAP对ROS水平的影响。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | DMEM培养基 | HyClone | -- |
| 胎牛血清 | Gibco | -- | |
| 青霉素/链霉素 | Cytiva | -- | |
| 蛋白检测 | HA标签抗体 | Cell Signaling Technology | -- |
| GFP标签抗体 | Proteintech | -- | |
| 流感病毒HA抗体 | SinoBiological | -- | |
| PRDX1抗体 | Abmart | -- | |
| β-actin抗体 | Genetex | -- | |
| α-tubulin抗体 | Genetex | -- | |
| GAPDH抗体 | Genetex | -- | |
| HRP标记二抗 | Beyotime Biotechnology | -- | |
| 质粒构建与转染 | pcDNA3.1载体 | Invitrogen | -- |
| 蛋白裂解 | RIPA裂解液 | Beyotime | -- |
| 细胞活力检测 | CCK-8试剂盒 | Dojindo | -- |
| RNA提取 | TRIzol试剂 | Sangon Biotech | -- |
| qRT-PCR | SYBR Green实时荧光定量PCR预混液 | Roche | -- |
| siRNA转染 | Lipofectamine RNAiMAX转染试剂 | Thermo Fisher Scientific | -- |
| 鸡胚实验 | in vivo-jetPEI转染试剂 | Polyplus-transfection | -- |
| 免疫共沉淀 | IP裂解液 | Beyotime | -- |
| ROS检测 | 二氢罗丹明123 | MCE | -- |
| 免疫共沉淀 | 磁珠 | -- | -- |
| 细胞实验 | 二甲基亚砜 | -- | -- |
| 观察 | EVOS M5000显微镜 | Thermo Fisher Scientific | -- |
| 流式细胞术 | CytoFLEX流式细胞仪 | BECKMAN COULTER | -- |
| 蛋白免疫印迹 | PVDF膜 | GE Healthcare | -- |
| GEGENOME XRQ增强化学发光试剂 | Thermo Fisher Scientific | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 细胞培养 | DF-1细胞培养条件:DMEM+10%FBS+1%青霉素/链霉素,37°C,5% CO2 阅读提示:见Materials and methods, Cell lines |
| 病毒扩增与滴度测定 | 病毒株(NDV-Na-EGFP、NDV-rL-EGFP、H9N2、VSV-EGFP)及其MOI,TCID50测定方法 阅读提示:见Materials and methods, Viruses |
| chIRAP过表达 | 转染试剂和质粒剂量(如2 μg),转染时间48小时 阅读提示:见Materials and methods, Plasmids construction and transfection |
| siRNA敲低 | siRNA浓度50 nM,转染试剂Lipofectamine RNAiMAX,处理时间48小时 阅读提示:见Materials and methods, siRNA silencing |
| 鸡胚实验 | 鸡胚日龄(15日),注射剂量(5 μg DNA/0.8 μl jetPEI),感染病毒量(1×10^5 Pfu),处理时间 阅读提示:见Materials and methods, Chicken embryo challenge test |
| 病毒吸附与进入 | 吸附温度4°C,时间1小时;进入温度37°C,时间1小时 阅读提示:见Materials and methods, Virus adsorption assay, Virus entry assay |
| ROS检测 | 探针(Dihydrorhodamine 123),浓度、孵育时间(30分钟),检测方法(流式) 阅读提示:见Materials and methods, Detection of intracellular ROS levels |