分析CICD患者血液中TEMs比例
探究TEMs在CICD患者中的变化及其与血管重建程度的关系
收集CICD患者颈内静脉血(Matsushima A级和C级)及颅内动脉瘤对照,分离PBMC,流式检测CD14+Tie2+细胞比例。
Tie2-expressing monocytes/macrophages promote angiogenesis in chronically ischaemic brain tissue.
包含患者血液样本分析、体外细胞共培养与转染、裸鼠ICAO+EMS模型、大鼠2VO+EMS模型及DLR/RIP/ChIP分子验证等多层级实验。
人脐静脉内皮细胞(HUVECs) ICAO+EMS裸鼠模型 2VO+EMS SD大鼠模型 CICD患者颈内静脉血样本
TEMs比例:CICD患者颈内静脉血中CD14+Tie2+细胞比例(流式细胞术) HUVECs与TEMs共培养浓度:1×10^3、2×10^3、4×10^3个TEMs(缺氧条件) 裸鼠脑室内注射TEMs剂量:1×10^5、2×10^5、4×10^5个细胞 大鼠模型中miR-126-5p agomir/antagomir转染TM组织,剂量20 μg/只 大鼠脑室内注射慢病毒(LV-sh-ANGPT2或LV-ANGPT2)剂量:1×10^8 TU/mL,10 μL
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
探究TEMs在CICD患者中的变化及其与血管重建程度的关系
收集CICD患者颈内静脉血(Matsushima A级和C级)及颅内动脉瘤对照,分离PBMC,流式检测CD14+Tie2+细胞比例。
验证TEMs是否促进HUVECs增殖、抑制凋亡、促进管形成和迁移
从Grade-A患者PBMC中分选TEMs和TNMs,与HUVECs在缺氧条件下直接或间接共培养,进行EdU、凋亡、管形成、划痕和Transwell迁移实验。
验证TEMs在慢性缺血脑组织中是否促进血管生成并改善脑灌注
建立ICAO+EMS裸鼠模型,脑室内注射TEMs或TNMs,通过MRI-ASL评估CBP,Western blot和免疫荧光检测CD31表达。
验证miR-126-5p与TRPS1、TRPS1与ANGPT2的直接调控关系
通过DLR、RIP和ChIP实验验证分子间结合;转染HUVECs后检测蛋白表达和功能变化。
验证miR-126-5p/TRPS1/ANGPT2通路在体内对TEMs募集和血管生成的作用
建立2VO+EMS大鼠模型,TM组织转染agomir/antagomir,脑室内注射慢病毒,评估CBP、认知功能、TEMs浸润及蛋白表达。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| PBMC分离 | 人全血单个核细胞分离液 | Solarbio | -- |
| 流式检测 | APC偶联抗CD14抗体 | BioLegend | 367117 |
| PE偶联抗Tie2抗体 | Sino Biological | 10700-R116-F | |
| 细胞培养 | 高糖DMEM培养基 | Gibco | -- |
| 胎牛血清 | Gibco | -- | |
| 青霉素-链霉素 | Gibco | -- | |
| 细胞分选 | QuadroMACS分离器 | Miltenyi Biotec | -- |
| LS分离柱 | Miltenyi Biotec | -- | |
| 人CD14磁珠 | Miltenyi Biotec | -- | |
| Tie2抗体 | Abcam | ab221154 | |
| NHS-生物素 | ThermoFisher | -- | |
| 抗生物素磁珠 | Miltenyi Biotec | -- | |
| 细胞转染 | Lipofectamine™ 3000转染试剂 | Invitrogen | -- |
| EdU实验 | BeyoClick™ EdU细胞增殖检测试剂盒(Alexa Fluor 555) | Beyotime | -- |
| Hoechst 33342染料 | -- | -- | |
| 凋亡检测 | Annexin V-FITC凋亡检测试剂盒 | Beyotime | -- |
| 管形成实验 | 基质胶 | Corning | -- |
| Western blotting | RIPA裂解液 | Beyotime | -- |
| 磷酸酶抑制剂混合物 | Beyotime | -- | |
| BCA蛋白定量试剂盒 | Beyotime | -- | |
| PVDF转印膜 | Millipore | -- | |
| ECL超敏发光液 | NCM Biotech | -- | |
| 抗TRPS1抗体 | Proteintech | 21938-1-AP | |
| 抗ANGPT2抗体 | Proteintech | 24613-1-AP | |
| 抗Tie2抗体 | Affinity | DF7500 | |
| 抗磷酸化Tie2抗体 | Bioss | bs-12262R | |
| 抗CD11b抗体 | Santa Cruz | sc-1186 | |
| 抗VEGFA抗体 | Proteintech | 19003-1-AP | |
| 抗IGF1抗体 | Abcam | ab106836 | |
| 抗CD31抗体 | Santa Cruz | sc-20071 | |
| 抗β-actin抗体 | Proteintech | 66009-1-Ig | |
| HRP标记山羊抗兔二抗 | Abcam | ab6721 | |
| HRP标记山羊抗小鼠二抗 | Abcam | ab6728 | |
| HRP标记兔抗山羊二抗 | Abcam | ab6741 | |
| 免疫荧光 | 抗CD31抗体 | Santa Cruz | sc-20071 |
| 抗ANGPT2抗体 | Santa Cruz | Sc-74403 | |
| 抗Tie2抗体 | Affinity | DF7500 | |
| 抗VEGFA抗体 | Biorbyt | orb153328 | |
| 抗IGF1抗体 | Abcam | ab106836 | |
| 488标记山羊抗兔二抗 | Abcam | ab150077 | |
| 594标记山羊抗小鼠二抗 | Abcam | ab150116 | |
| 647标记驴抗山羊二抗 | Abcam | ab150135 | |
| 647标记CD11b抗体 | Proteintech | CL647-65229 | |
| 含DAPI封片剂 | Abcam | -- | |
| 细胞转染 | miR-126-5p模拟物 | GenePharma | -- |
| miR-126-5p抑制剂 | GenePharma | -- | |
| 模拟物/抑制剂阴性对照 | GenePharma | -- | |
| pcDNA3.1-TRPS1过表达质粒 | Synbio Technologies | -- | |
| sh-TRPS1敲低质粒 | Synbio Technologies | -- | |
| DLR实验 | pGL基本载体 | Promega | -- |
| pGL-TK报告质粒 | Promega | -- | |
| 荧光素酶检测试剂II | Promega | -- | |
| Stop & Glo试剂 | Promega | -- | |
| RIP实验 | Imprint® RNA免疫沉淀试剂盒 | Sigma | -- |
| 抗AGO2抗体 | Proteintech | 67934-1-Ig | |
| 抗IgG抗体 | Proteintech | 30000-0-AP | |
| TRIzol试剂 | Sigma | -- | |
| ChIP实验 | 抗TRPS1抗体 | Proteintech | 21938-1-AP |
| 抗IgG抗体 | Proteintech | 30000-0-AP | |
| ProteinA+G琼脂糖/鲑鱼精DNA | Sigma | -- | |
| 动物实验 | 异氟烷 | RWD | -- |
| 微量注射器 | Hamilton | -- | |
| 脑立体定位仪 | RWD | -- | |
| 7.0 T磁共振成像系统(PharmaScan 70/16 US,ParaVision 6.0.1) | Bruker | -- | |
| 小动物监测系统(Model 1030) | SA Instruments, Inc. | -- | |
| 慢病毒(LV-ANGPT2,LV-sh-ANGPT2) | GenePharma | -- | |
| miR-126-5p激动剂 | GenePharma | -- | |
| miR-126-5p拮抗剂 | GenePharma | -- | |
| 透射电镜 | JEM-1400透射电子显微镜 | JEOL | -- |
| 扫描电镜 | SU8100扫描电子显微镜 | Hitachi | -- |
| 统计软件 | SPSS 23.0统计软件 | IBM Corporation | -- |
| GraphPad Prism 9.5统计软件 | GraphPad Software | -- | |
| 图像分析 | ImageJ软件 | -- | -- |
| 行为分析 | SMART 3.0行为分析软件 | Panlab | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 患者血液样本分析 | 患者分组、颈内静脉血采集时间点、TEMs比例检测方法(CD14+Tie2+细胞百分比) 阅读提示:Methods 中 'Patients and blood samples' 和 'Quantification of TEMs in blood' |
| HUVECs共培养 | HUVECs代数(3-6代)、共培养方式(直接/间接)、TEMs浓度(1×10^3, 2×10^3, 4×10^3)、缺氧条件(1% O2)、共培养时间(过夜) 阅读提示:Methods 中 'Cell culture' 和 'Cell coculture and subgrouping',以及 Table 2 |
| 细胞转染 | 转染试剂(Lipofectamine 3000)、miR-126-5p mimics/inhibitors浓度(50 nM)、质粒用量(0.1 μg)、转染时间(48 h) 阅读提示:Methods 中 'Cell transfection and subgrouping' |
| 裸鼠ICAO+EMS模型 | ICAO手术细节(结扎右侧ICA)、EMS手术步骤、细胞注射剂量(1×10^5, 2×10^5, 4×10^5)、注射体积(1 μL)、注射速率(0.1 μL/min) 阅读提示:Methods 中 'Nude mouse model of unilateral chronic cerebral ischaemia'、'Cell transplantation'、'EMS surgery for nude mice' |
| 大鼠2VO+EMS模型 | 2VO手术顺序(左CCA结扎,7天后右CCA)、EMS手术、agomir/antagomir剂量(20 μg)、慢病毒滴度(1×10^8 TU/mL)、注射体积(10 μL) 阅读提示:Methods 中 'Rat model of chronic cerebral ischaemia plus revascularization surgery' 和 'Lentivirus infection and miRNA transfection' |
| 分子机制验证 | DLR实验中报告质粒和miR-126-5p mimics浓度、RIP中抗AGO2和IgG用量、ChIP中抗TRPS1和IgG用量 阅读提示:Methods 中 'Dual-luciferase reporter (DLR) assay'、'RNA immunoprecipitation (RIP) assay'、'Chromatin immunoprecipitation (ChIP) assay' |