刺猬信号通路通过CCL20-CCR6轴促进肝细胞癌中单核细胞浸润

The Hedgehog Pathway Promotes Monocytes Infiltration Through CCL20-CCR6 Axis in Hepatocellular Carcinoma.

作者信息Pei-Han Chu, Yu-Fu Hsu, Chen-Yi Chang, Chuen-Miin Leu, Kuo-Hsin Chen, Chiung-Fang Chang, Ping-Hui Tseng
PMID40913253
发布时间2025-09
DOI10.1111/jcmm.70824

实验完整度

包含体外迁移实验、RNA-seq、荧光素酶报告基因实验、ChIP、CRISPR敲除、异种移植小鼠模型及临床样本分析等多个独立证据层级,且有明确的功能和机制验证。

主要模型

PLC5肝癌细胞系 Huh7肝癌细胞系 THP-1单核细胞系 PLC5异种移植小鼠模型(NOD-SCID小鼠)

重点核对

GLI1敲低或敲除的肝癌细胞系 CCL20敲低或敲除的肝癌细胞系 THP-1单核细胞迁移实验 NOD-SCID小鼠异种移植模型 TCGA数据库及Kaplan-Meier Plotter的生存分析

摘要

肝细胞癌(HCC)是全球主要的癌症之一,其发展与肿瘤微环境密切相关,尤其是纤维化和慢性炎症。本研究旨在探讨Hedgehog(Hh)信号通路(HCC进展中的关键信号通路)在HCC细胞与单核细胞(炎症的核心参与者)相互作用中的作用。使用transwell迁移实验,发现Hh通路的下游转录效应因子GLI1在HCC细胞中促进THP-1单核细胞的迁移。在HCC细胞中受Hh通路调控的细胞因子中,CCL20被确定为与THP-1细胞中的CCR6相互作用以促进迁移的关键因子。接下来,使用荧光素酶报告基因实验和染色质免疫沉淀,确认了CCL20启动子区域内的GLI1结合位点。在异种移植肿瘤小鼠模型中,GLI1或CCL20敲除的PLC5细胞中肿瘤生长和单核细胞浸润受到抑制。此外,在临床样本中,GLI1和CCL20的mRNA表达呈正相关,且CCL20高表达的患者总生存期较差。总的来说,我们的研究结果强调HCC中的Hh通路通过CCL20-CCR6轴促进单核细胞浸润,为未来的治疗策略提供了潜在见解。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
Hedgehog信号通路在HCC中是否通过调控炎症因子/趋化因子促进单核细胞浸润,从而影响肿瘤微环境和肿瘤进展?
核心机制
Hh通路激活后,转录因子GLI1直接结合CCL20启动子区域,上调CCL20表达,分泌的CCL20与其在单核细胞上的受体CCR6相互作用,促进单核细胞向肿瘤微环境浸润,从而促进肿瘤生长。
主要证据
Transwell迁移实验证明GLI1调控的CCL20促进THP-1迁移并依赖CCR6;荧光素酶报告基因和ChIP证明GLI1直接结合CCL20启动子;GLI1或CCL20敲除的PLC5异种移植肿瘤模型显示肿瘤生长和单核细胞/巨噬细胞浸润减少;临床样本显示GLI1与CCL20表达正相关,高表达CCL20与较差总生存相关。
研究意义
异常激活的Hh信号通路和CCL20-CCR6轴不仅可能作为HCC的生物标志物,还代表一个有前景的治疗靶点,以抑制肿瘤生长并改善患者预后。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

评估HCC细胞对单核细胞迁移的影响

研究HCC细胞是否通过分泌因子促进单核细胞迁移

收集PLC5或Huh7细胞的条件培养基,通过transwell迁移实验检测THP-1细胞迁移。

2

验证Hh通路在HCC细胞中调控炎症因子表达的作用

确定Hh通路是否调控HCC细胞中炎症因子/趋化因子的表达

在原发性HCC细胞中,用Hh抑制剂HPI-1处理进行RNA-seq分析,并通过qPCR验证Shh配体或GLI1敲低对CCL20、CSF2、IL6和IL17表达的影响。

3

确定介导单核细胞迁移的关键趋化因子

在受Hh调控的因子中筛选对单核细胞迁移关键的因子

分别敲低CCL20、CSF2、IL6和IL17,并检测条件培养基对THP-1细胞迁移的影响。

4

验证CCL20受体的必要性

确认CCL20通过其受体CCR6发挥作用

在THP-1细胞中敲低CCR6,并观察对条件培养基诱导迁移的影响。

5

验证GLI1对CCL20的转录调控

证明转录因子GLI1直接调控CCL20表达

通过荧光素酶报告基因实验和ChIP分析,确定GLI1在CCL20启动子上的结合位点。

6

体内验证GLI1和CCL20对肿瘤生长及单核细胞浸润的影响

在体内模型中确认GLI1和CCL20对肿瘤发生及单核细胞浸润的作用

利用CRISPR/Cas9敲除GLI1或CCL20的PLC5细胞,进行NOD-SCID小鼠异种移植,检测肿瘤生长和单核/巨噬细胞标志物的免疫组化染色。

7

临床样本中GLI1和CCL20的关联分析

探讨GLI1和CCL20在临床HCC样本中的表达关系及预后意义

检测12例HCC患者肿瘤及配对癌旁组织中GLI1和CCL20 mRNA表达,并利用TCGA数据库(329例)和Kaplan-Meier Plotter(364例)进行相关性及生存分析。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
杜氏改良Eagle培养基Biological Industries--
胎牛血清ThermoFisher--
青霉素-链霉素溶液Biological Industries--
重组人Sonic Hedgehog/SHH蛋白(aa 1-197,His标签)Sino Biological10372-H08H1
HPI-1Cayman--
Transwell小室(8μm孔径)Jet Biofil--
T-pro NTRII转染试剂T-Pro Biotechnology--
聚凝胺Sigma--
嘌呤霉素EMD Millipore--
TRIzol试剂ThermoFisher--
iScript cDNA合成试剂盒Bio-Rad--
StepOnePlus实时荧光定量PCR系统Applied Biosystems--
TrueSeq链特异性mRNA文库制备试剂盒Illumina--
HiSeq 4000测序平台Illumina--
pRL-TK海肾荧光素酶载体Promega--
pGL3对照载体Promega--
抗F4/80抗体GeneTexGTX26640
抗CSF-1受体(CD115)抗体AbcamEPR23529-26
抗Ly-6C抗体Biolegend128002
Dynabeads蛋白G磁珠Invitrogen--
PX459载体AddgenePlasmid #62988
基质胶BD Biosciences--

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
细胞培养和条件培养基制备
细胞类型(PLC5、Huh7、THP-1);种子密度(5×10^5细胞/10cm皿);培养时间(24小时后更换培养基,再培养24小时);培养基成分(DMEM、10% FBS等);过滤(0.45μm滤膜)。
阅读提示:见2.3节
迁移实验
THP-1细胞数量(1×10^5);transwell孔径(8μm);孵育时间(12小时)。
阅读提示:见2.4节
慢病毒感染
MOI(10-25);polybrene浓度(10 μg/mL);嘌呤霉素筛选浓度(3 mg/mL)。
阅读提示:见2.5节
RT-qPCR
RNA提取方法(TRIzol);逆转录试剂盒;PCR参数(95°C 1min;45个循环:95°C 10s,60°C 5s,72°C 20s);内参基因(GAPDH)。
阅读提示:见2.6节
RNA-seq
RNA量(200-500 ng);文库制备试剂盒(TrueSeq Stranded mRNA Kit);测序平台(HiSeq 4000);差异表达分析软件(IPA)。
阅读提示:见2.7节
荧光素酶报告基因实验
细胞种植密度(6孔板3×10^5);转染量(5000 ng);处理(Shh配体,1 μg/mL,12小时);检测系统(Dual-Glo luciferase assay system)。
阅读提示:见2.8节
ChIP
交联浓度(1%甲醛,10分钟);交联终止(125 mM甘氨酸);裂解缓冲液成分;超声处理(Covaris S220);抗体(抗GLI1);IgG阴性对照;DNA纯化试剂盒(Qiagen)。
阅读提示:见2.9节
CRISPR/Cas9基因敲除
细胞系(PLC5);载体(PX459);转染试剂(T-pro NTRII);筛选药物(嘌呤霉素3 μg/mL);单克隆筛选方法;验证方法(Sanger测序和qPCR)。
阅读提示:见2.10节
异种移植肿瘤模型
小鼠品系(NOD/SCID,6周龄,雄性);细胞接种量(5×10^5细胞);接种体积(50 μL PBS + 50 μL Matrigel);肿瘤体积测量公式;伦理批准号(IACUC #1121112)。
阅读提示:见2.11节
临床样本分析
样本来源(TLCN和Far Eastern Memorial Hospital);患者特征(Stage I或II,HBV/HCV阴性,未接受化放疗,男性);样本量(12例);数据库(TCGA,329例;Kaplan-Meier Plotter,364例)。
阅读提示:见2.13节和3.6节
统计分析
统计软件(GraphPad Prism 8.3.0,SPSS 20.0);相关分析(Spearman);显著性阈值(p<0.05,p<0.01);数据表示(mean±SD)。
阅读提示:见2.14节