DLK依赖性轴突线粒体分裂驱动轴突切断后的变性

DLK-dependent axonal mitochondrial fission drives degeneration after axotomy.

作者信息Jorge Gómez-Deza, Matthew Nebiyou, Mor R Alkaslasi, Francisco M Nadal-Nicolás, Preethi Somasundaram, Anastasia L Slavutsky, Wei Li, Michael E Ward, Trent A Watkins, Claire E Le Pichon
PMID39737939
发布时间2024-12-30
DOI10.1038/s41467-024-54982-9

实验完整度

包含人iPSC神经元体外模型、HEK293细胞异源系统、小鼠视神经挤压模型和患者数据(免疫荧光、Western blot、活体成像、质谱分析、电镜等)。

主要模型

人iPSC诱导的谷氨酸能神经元(i3Neurons) HEK-293A细胞 小鼠视网膜神经节细胞(RGC) 小鼠视神经挤压模型

重点核对

使用CRISPR/Cas9敲除DLK、SARM1,以及CRISPRi敲低DRP1的i3Neurons 激光轴突切断后,监测线粒体分裂、轴突变性指数(ADI)和神经元死亡 使用DLK抑制剂GNE3511、JNK抑制剂SP600125、DRP1抑制剂P110、BAX抑制剂BAI和激活剂BTSA1 免疫印迹检测pDRP1 S616、pDRP1 S637、总DRP1、p-cJun等蛋白水平 通过AAV递送saCas9和gRNA在体内敲低DRP1,评估视神经挤压后RGC存活

摘要

目前,对于一系列神经退行性疾病尚无有效治疗方法,这在很大程度上是因为基于细胞的模型无法重现疾病。在这里,我们开发了一个可重复的人iPSC模型,其中激光轴突切断导致逆行性轴突变性,进而导致神经元死亡。时间序列共聚焦成像显示,损伤会触发线粒体分裂的凋亡波,从损伤部位向胞体传播。我们证明这种凋亡波是由双亮氨酸拉链激酶(DLK)在轴突中局部启动的。我们发现线粒体分裂和由此产生的细胞死亡完全依赖于DLK下游的发动蛋白相关蛋白1(DRP1)的磷酸化,揭示了DLK驱动凋亡的一种机制。重要的是,我们表明CRISPR介导的Drp1耗竭可保护小鼠视网膜神经节神经元免受视神经挤压后的变性。我们的结果为研究人类神经元变性提供了一个平台,指出了损伤相关神经死亡的关键早期事件,并为治疗干预提供了潜在焦点。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
DLK信号通路在人类神经元轴突损伤后是否以及如何驱动轴突变性和神经元死亡?
核心机制
DLK通过JNK磷酸化DRP1(S616),促进DRP1与BAX在轴突线粒体上的相互作用,触发凋亡性线粒体分裂,形成从损伤部位向胞体传播的凋亡波,最终导致轴突变性和神经元死亡。
主要证据
在i3Neurons中,激光轴突切断后观察到DLK依赖的DRP1 S616磷酸化、线粒体分裂、轴突变性和细胞死亡;DLK KO、DRP1 KD和BAX抑制剂均能保护轴突变性和神经元死亡。在HEK293细胞中,DLK过表达足以诱导DRP1 S616磷酸化和线粒体碎片化。在体内,视神经挤压后DRP1敲低显著减少RGC凋亡并增加存活。
研究意义
本研究揭示了一种不依赖转录的、由DLK驱动的轴突凋亡级联反应,为理解神经损伤和神经退行性疾病中的轴突变性提供了新机制,并指出DLK-DRP1-BAX轴可作为治疗干预的潜在靶点。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

建立人iPSC神经元轴突变性模型

开发用于研究人类神经元损伤反应的可重复体外模型。

使用i3Neurons进行激光轴突切断,观察轴突变性和神经元死亡。

2

评估SARM1在轴突变性中的作用

确定近端轴突变性是否依赖于SARM1。

使用CRISPR/Cas9敲除SARM1,比较轴突变性指数(ADI)。

3

观察损伤后线粒体分裂的动态变化

表征轴突损伤后线粒体分裂的空间和时间动态。

转染mitoGFP标记线粒体,进行活细胞成像,分析线粒体长度和数量变化。

4

验证DLK和JNK信号在分裂中的作用

测试DLK及其下游JNK是否为轴突损伤诱导的线粒体分裂所必需。

使用DLK KO神经元、DLK抑制剂GNE3511和JNK抑制剂SP600125,分析线粒体分裂。

5

验证DLK对DRP1磷酸化的作用

确定DLK是否直接或间接磷酸化DRP1并影响其功能。

在HEK-293A细胞中过表达DLK,检测DRP1 S616磷酸化水平;进行体外激酶实验和磷酸化质谱分析。

6

验证在体内和体外降低DRP1或DLK的保护作用

在人类神经元和小鼠模型中,测试抑制DLK或DRP1是否能保护轴突和神经元免受损伤。

在i3Neurons中敲低DRP1或使用BAX抑制剂,评估轴突变性和神经元存活;在小鼠中进行视神经挤压,通过AAV递送Cas9/gRNA敲低DRP1,评估RGC存活。

7

研究BAX在轴突变性和细胞死亡中的角色

确定BAX是否为DLK下游驱动轴突变性和神经元死亡的效应分子。

使用BAX抑制剂和激活剂,并检测BAX-DRP1相互作用(ddRFP系统)及线粒体定位。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
AccutaseLife TechnologiesA1110501
Knockout DMEM/F12培养基Life Technologies Corporation12660012
N2补充剂Life Technologies17502048
GlutaMAXThermofisher Scientific35050061
MEM非必需氨基酸Thermofisher Scientific11140050
Y-27632Tocris1254
多西环素Clontech631311
多聚-L-鸟氨酸SigmaP3655-10MG
BrainPhys培养基STEMCELL Technologies05790
B27 Plus补充剂ThermoFisher ScientificA3582801
BDNFPeproTech450-02
NT-3PeproTech450-03
小鼠层粘连蛋白Invitrogen23017015
Lenti-X HEK-293T细胞Takara Bio632180
Lipofectamine 3000转染试剂ThermoFisherL3000008
Opti-MEM I减血清培养基GIBCO31985070
ViralBoostAlstemVB100
Lenti-X浓缩液Takara Bio631231
EYFP-DRP1Addgene45160
In-fusion克隆Takara Bio638945
µ-Dish 35 mm培养皿Ibidi81156或81166
Hybernate E培养基GibcoA1247601
GNE3511Sigma5331680001
SP600125SelleckchemS1460
P110Tocris6897
BAPTA-AMTocris2787
BTSA1(BAX激活剂)SigmaSML2243
BAI1(BAX抑制剂)MedchemexpressHY-103269
βIII微管蛋白抗体Thermo Fischer2G10
pDRP1 S616抗体CST3455S
DLK抗体Cell Signaling TechnologyGF-23-1
TOM20抗体Santa CruzSC-17764
Fluo-4 AMThermoFischerF14201
DMEM培养基Gibco11995065
胎牛血清Gibco10437028
胰蛋白酶-EDTA(0.25%)ThermoFischer25200056
Lipofectamine 2000转染试剂Invitrogen11668030
RIPA裂解液Invitrogen89901
蛋白酶抑制剂Sigma11836153001
PhosStop磷酸酶抑制剂Sigma4906845001
BCA蛋白定量试剂盒ThermoFisher23225
4–20% Mini-PROTEAN® TGX™预制蛋白胶Biorad4561095
Clarity Western ECL底物Biorad1705061
ChemiDoc MP成像系统Biorad--
抗DRP1抗体Santa Cruz Biotechnologysc-101270
抗β肌动蛋白抗体SigmaA1978
抗p-cJun S63抗体CST9261
抗pDRP1 S637抗体CST4867S
德国玻璃盖玻片Electron Microscopy Sciences72290-04
ProLong Glass抗淬灭剂InvitrogenP36980
Seahorse分析仪96孔板Agilent103774-100
Seahorse XFe 96分析仪Agilent--
谷胱甘肽-琼脂糖珠SigmaGE17-0756-01
SpinX离心柱SigmaCLS8162-24EA
活性JNK1Signal chem biotechM33-10G
DLKSignal chem biotechM20-11G
DRP1Novus biochemicalH00010059
ATF2Signal chem biotechA10-55G
Orbitrap Lumos质谱仪Thermo Scientific--
Easy-Spray离子源Thermo Scientific--
ES902 Easy-Spray色谱柱Thermo Scientific--
Ultimate 3000高效液相色谱仪Thermo Scientific--
JEOL-1400透射电子显微镜JEOL--
AMT BioSprint 29相机AMT--
Aurion超小金标记F(ab′)2片段Electron Microscopy Sciences--
Aurion R-Gent SE-EM银增强溶液Electron Microscopy Sciences--
Pelco BioWave Pro微波炉Ted Pella, Inc.--
Embed-812树脂Electron Microscopy Sciences--
Leica EM UC7超薄切片机Leica--
Cas9-GFP----
gRNA表达质粒Sigma Aldrich--
嘌呤霉素InvitrogenA11113803
C57Bl/6J小鼠Jax000664
5%眼科聚维酮碘Henry Schein6900250
Opti-clear眼科洗眼液AkornNDC
0.5%丙美卡因滴眼液Henry Schein1365345
5微升Hamilton注射器Hamilton7803-5
Vannas剪刀World Precision Instruments501777
缝合镊Fine Science Tools1106307
Dumont镊子Fine Science Tools1125325
抗cleaved caspase 3抗体CST9661
Drop-n-Stain EverBrite™封片剂Biotium23008
抗RBPMS抗体GeneTexGTX118619
驴抗兔Alexa 649二抗Jackson ImmunoResearch706-495-148

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
i3Neuron分化
iPSC系(WTC11)、分化培养基成分、细胞因子浓度、培养时间
阅读提示:Methods: i3Neuron differentiation
激光轴突切断
激光功率、迭代次数、培养皿类型、成像时间序列
阅读提示:Methods: Laser Axotomies
线粒体分裂分析
mitoGFP标记、药物处理浓度(GNE3511、JNKi、P110、BAPTA-AM)、成像频率和持续时间
阅读提示:Methods: Mitochondrial fission after axotomy
DRP1磷酸化检测
Western blot抗体(pDRP1 S616)、轴突与胞体分离方法、损伤后时间点
阅读提示:Methods: Axon separation and axotomies; Western blotting
HEK293细胞实验
DLK构建体(WT、C127S、S302A)、转染时间、DRP1 S616磷酸化检测
阅读提示:Methods: HEK cell culture and transfection; Western blotting
小鼠视神经挤压实验
AAV构建体(saCas9、gRNA)、病毒滴度、注射体积和时机、挤压后时间点
阅读提示:Methods: Adeno-associated virus (AAV); Intravitreal injections; Intra-orbital optic nerve crush (ONC)
BAX功能和相互作用分析
BAX抑制剂浓度、BAX激活剂浓度、ddRFP构建体、荧光定量方法
阅读提示:Methods: Immunostaining of cells; Results: BAX mediates axon degeneration and cell death after axotomy