利用低体积微流控芯片和颗粒扩散测量法进行生物分子相互作用分析定量

Biomolecular Interaction Analysis Quantification with a Low-Volume Microfluidic Chip and Particle Diffusometry.

作者信息Hui Ma, Aiswarya A Ramanujam, Jacqueline C Linnes, Tamara L Kinzer-Ursem
PMID38575144
期刊Anal Chem
发布时间2024-04-16
DOI10.1021/acs.analchem.3c04840

实验完整度

包含芯片设计、COMSOL模拟(混合器、液滴捕获)、实验验证、动力学测量(PD和BLI)及结果对比,多层级验证。

主要模型

低体积微流控芯片(空气/水两相液滴流) 蛋白-颗粒复合物(100 nm荧光颗粒与30 nm非荧光颗粒) HIV p24抗体-抗原结合体系

重点核对

芯片通道高度:142 μm 混合器平均流速:1.41 m/s(体积流量6 mL/min) 混合器Dean数:88,E=0.0003(模拟) PD实验使用4种抗原颗粒浓度:5.8, 11.65, 23.3, 38.8 nM BLI实验使用抗原加载浓度16 nM,抗体浓度系列稀释(20, 6.67, 2.2, 0.73, 0.25, 0.1, 0)

摘要

微流控技术广泛应用于生物分子分析和疾病诊断检测中。虽然此类检测中直接使用的样本体积通常仅为飞升至微升,但注射器和管道中供应的溶液“死体积”可能要大得多,甚至达到毫升,这增加了总体试剂用量并显著提高了分析成本。为降低难度和成本,我们设计了一种使用低体积溶液进行分析的新型芯片,并将其用于获取蛋白质-蛋白质相互作用测量的实时数据。该芯片利用空气/水两相液滴流、毫秒级片上快速混合以及液滴捕获方法,最终仅需2微升试剂溶液。相互作用通过颗粒扩散测量法进行分析,这是一种非侵入性、精确的光学检测方法,用于分析溶液中微粒的扩散特性。在此,我们展示了通过荧光显微镜成像并通过颗粒扩散测量法分析的人类免疫缺陷病毒p24抗体-抗原蛋白结合动力学的片上表征。测得的kon和koff分别为1 × 10^6 M^-1 s^-1和3.3 × 10^-4 s^-1,与通过生物层干涉法和先前计算的p24抗体结合动力学独立测量的结果一致。这种新型微流控芯片和蛋白质-蛋白质相互作用分析方法也可应用于其他需要低体积溶液进行精确测量、分析和检测的领域。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
如何设计一种低体积、低成本的微流控芯片,结合颗粒扩散测量法,实现蛋白质-蛋白质相互作用动力学的实时测量?
核心机制
利用空气/水两相流和蛇形通道中的Dean涡实现毫秒级快速混合,然后通过液滴捕获使反应溶液静止,通过测量颗粒扩散系数的变化来反映结合导致的体积增加,从而计算结合动力学。
主要证据
COMSOL模拟和实验验证混合效率(E=0.0083),液滴捕获模型与实验一致;PD测量HIV p24抗体-抗原结合动力学,kon和koff分别为1 ± 0.097 × 10^6 M^-1 s^-1和3.3 ± 3.9 × 10^-4 s^-1(Lineweaver-Burk图),与BLI结果(1.75 ± 2.9 × 10^6 M^-1 s^-1和3.44 ± 3.91 × 10^-4 s^-1)及文献值一致。
研究意义
该方法仅需2 μL试剂和标准荧光显微镜,可降低测量成本,可推广至疾病诊断、单细胞分析、DNA测序等领域。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

微流控混合器模拟与实验验证

验证蛇形通道混合器在Dean流条件下实现高效混合的能力。

利用COMSOL建立三维模型,模拟流体流动和物质传输,计算混合质量E;实验使用去离子水和荧光颗粒溶液,在不同流速下拍摄图像并定量混合效率。

2

液滴捕获机制模拟与实验验证

验证液滴捕获装置能有效固定反应液滴,以便进行静止状态的颗粒扩散测量。

利用COMSOL两相流模型模拟液滴进入捕获区的行为,并通过食物色素液滴实验验证捕获效果。

3

颗粒制备与蛋白偶联

制备用于PD检测的抗体偶联荧光颗粒和抗原偶联非荧光颗粒。

通过EDC/NHS化学将抗HIV p24单克隆抗体偶联到100 nm羧基改性荧光颗粒,将HIV p24抗原偶联到30 nm羧基改性非荧光颗粒,并用动态光散射确认偶联。

4

颗粒扩散测量法(PD)动力学测量

测量HIV p24抗体-抗原结合动力学参数kon和koff。

将抗体偶联颗粒和抗原偶联颗粒通过芯片混合,记录荧光图像,应用PD算法分析扩散系数随时间变化,拟合得到结合动力学常数。

5

生物层干涉法(BLI)验证实验

使用黄金标准方法BLI独立测量相同的抗体-抗原结合动力学,以验证PD结果。

使用Octet RED384仪器,将His标记的p24抗原捕获到Anti-Penta-HIS传感器,然后结合不同浓度的抗体,记录结合和解离曲线,拟合得到动力学常数。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

微流控设计与模拟
混合效率实验表征
蛋白质偶联

产品清单

实验环节名称品牌货号
ARseal 90880Adhesive Research--
VSL350Universal Laser Systems--
zf14-188Zeon Zeonor--
PEEK管(1569)IDEX Health & Science--
PDMS(SYLGARD 184)Dow Silicones Corporation--
BD-309628----
P-658、P-232、P-248XIDEX Health & Science--
LEGATO 210KD Scientific--
Axio ObserverZeiss--
Axiocam 503 monoZeiss--
T8872Thermo Fisher--
MAB247PBBI solutions--
L5155Millipore Sigma--
40252-V08ESino Biological--
EDC(22980)Thermo Fisher--
NHS(24500)Thermo Fisher--
β-巯基乙醇(M7154)Millipore Sigma--
UFC503024Millipore Sigma--
R100Thermo Scientific--
810Scotch--
Octet RED384Forte bio--
Anti-Penta-HIS(HIS1K)生物传感器Forte Bio18-5120
96孔黑色平底聚丙烯微孔板Greiner Bio-One655209
动力学缓冲液(KB)Forte Bio18-1092

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
混合器模拟
通道高度:142 μm;平均流速:1.41 m/s(Q=6 mL/min);接触角设定
阅读提示:Methods中的微流控混合器模拟部分
混合器实验
流速:0.2 mL/min和6 mL/min;荧光颗粒稀释比:1:400;图像数量:1200张
阅读提示:Methods中的实验混合分析部分
颗粒制备
EDC/NHS浓度和用量;偶联时间:2小时;蛋白量:5 μg
阅读提示:Methods中的样品制备部分
PD测量
抗体颗粒浓度:4 pM;抗原颗粒浓度系列:5.8, 11.65, 23.3, 38.8 nM;图像采集参数:40×物镜,40 fps
阅读提示:Results中的结合动力学数据部分
BLI实验
抗原加载浓度:16 nM;抗体浓度系列:20, 6.67, 2.2, 0.73, 0.25, 0.1, 0;结合、解离时间;温度:30 °C
阅读提示:Methods中的BLI实验部分