ACE2作为气道细胞中甲型流感病毒TMPRSS2催化蛋白水解激活的新型调节因子

ACE2 acts as a novel regulator of TMPRSS2-catalyzed proteolytic activation of influenza A virus in airway cells.

作者信息Miriam Ruth Heindl, Anna-Lena Rupp, Marie Schwerdtner, Dorothea Bestle, Anne Harbig, Amy De Rocher, Luna C Schmacke, Bart Staker, Torsten Steinmetzer, David A Stein, Hong M Moulton, Eva Böttcher-Friebertshäuser
PMID38470058
期刊J Virol
发布时间2024-04-16
DOI10.1128/jvi.00102-24

实验完整度

高

包含蛋白酶活性动力学测定、PPMO敲低实验、病毒复制动力学、蛋白切割分析、免疫共沉淀及ACE2缺失细胞回补实验,涵盖体外酶活和细胞模型,并有机制验证。

主要模型

Calu-3人气道上皮细胞 Caco-2人结直肠腺癌细胞 HEK293人胚肾细胞 表达TMPRSS2和ACE2的重组蛋白体系

重点核对

ACE2敲低PPMO的种类和浓度(25 µM,处理24小时) 感染病毒株(H1N1pdm、H3N2、H7N7、MERS-CoV)及MOI(低MOI 0.001和MOI 1) TMPRSS2和ACE2重组蛋白浓度(TMPRSS2 0.12 nM,ACE2 0.8 µU) ACE2抑制剂DX600使用浓度(10 µM) 病毒滴度检测方法(空斑法和TCID50)及时间点(24、48、72小时)

摘要

跨膜丝氨酸蛋白酶2(TMPRSS2)激活多种呼吸道病毒(包括甲型流感病毒(IAV)、副流感病毒和多种冠状病毒)的外部结构蛋白,以促进膜融合。既往研究表明,TMPRSS2与羧肽酶血管紧张素转换酶2(ACE2)相互作用,ACE2是某些冠状病毒的进入受体。在此,通过蛋白酶活性测定,我们确定ACE2以非催化方式增强TMPRSS2的酶活性。此外,我们证明在Calu-3人气道细胞中,ACE2敲低抑制TMPRSS2介导的IAV血凝素(HA)切割,并将病毒滴度降低100至1000倍。在ACE2缺陷细胞中瞬时表达ACE2可增强TMPRSS2介导的HA切割和IAV复制。ACE2敲低也降低了MERS-CoV的滴度,并阻止了Calu-3细胞中TMPRSS2对S蛋白的切割。相反,通常由弗林蛋白酶切割的具有多碱性HA切割位点的IAV的蛋白水解激活和多周期复制不受ACE2敲低的影响。免疫共沉淀分析揭示,ACE2-TMPRSS2相互作用需要TMPRSS2的酶活性和ACE2的羧肽酶结构域。总之,我们的数据确定ACE2是TMPRSS2活性的新辅因子或稳定剂,也是参与人气道细胞中IAV蛋白水解激活和传播的新型宿主细胞因子。此外,我们的数据表明ACE2参与TMPRSS2催化的其他呼吸道病毒(包括MERS-CoV)的激活。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
ACE2是否以及如何影响TMPRSS2介导的呼吸道病毒蛋白的蛋白水解激活?
核心机制
ACE2以非催化方式增强或稳定TMPRSS2的酶活性,通过与TMPRSS2的相互作用(需要TMPRSS2的酶活性和ACE2的蛋白酶结构域)促进IAV HA和MERS-CoV S的切割。
主要证据
基于蛋白酶活性测定、Calu-3细胞中PPMO敲低ACE2、Caco-2细胞中ACE2过表达、以及免疫共沉淀等实验,显示ACE2敲低显著降低TMPRSS2介导的HA切割及病毒滴度,而过表达ACE2则增强病毒复制。
研究意义
ACE2是新的TMPRSS2辅因子或稳定剂,参与IAV等呼吸道病毒的蛋白水解激活和传播,有助于阐明TMPRSS2的生理功能,并可能为广谱抗病毒药物开发提供新靶点。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

评估ACE2对TMPRSS2酶活性的影响

确定ACE2是否能改变TMPRSS2的蛋白水解活性。

使用重组人TMPRSS2和ACE2蛋白,在荧光底物存在下进行活性测定,并在不同温度(RT和37°C)及有无DX600(ACE2抑制剂)条件下监测荧光变化。

2

在人气道细胞中敲低ACE2并评估其对IAV复制和HA切割的影响

验证在细胞水平ACE2是否参与TMPRSS2介导的IAV激活。

使用PPMO特异性敲低Calu-3细胞中ACE2表达,感染H1N1pdm或H3N2(低MOI用于生长动力学,MOI 1用于HA切割)后,通过空斑实验分析病毒滴度,并通过western blot检测HA切割水平。同时使用H7N7(多碱性切割位点)作为对照。

3

验证ACE2过表达对IAV复制的影响

验证ACE2缺乏时,补充ACE2是否能增强病毒复制。

在Caco-2细胞(不表达ACE2)中瞬时转染ACE2质粒或空载体,感染H1N1pdm(MOI 0.001)后,通过空斑实验测定病毒滴度,并通过western blot检测HA切割。

4

分析ACE2-TMPRSS2相互作用的结构域

确定ACE2和TMPRSS2中哪些结构域介导其相互作用。

在HEK293细胞中共表达野生型或突变型ACE2(缺失PD、CD、CD+TM等)和野生型或酶活性缺失型TMPRSS2(S441A、R255Q),通过免疫共沉淀和western blot分析相互作用和切割。

5

评估ACE2敲低对MERS-CoV复制和S蛋白切割的影响

探讨ACE2是否也参与其他TMPRSS2底物(如MERS-CoV S)的激活。

在Calu-3细胞中用PPMO敲低ACE2,感染MERS-CoV(MOI 0.001),通过TCID50测定病毒滴度,并通过western blot检测S蛋白切割情况。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

验证样本或模型特征
验证分子表达变化
数据分析与统计

产品清单

实验环节名称品牌货号
DMEM/F-12 Ham (1:1)培养基Gibco--
DMEM培养基----
胎牛血清----
青霉素----
链霉素----
谷氨酰胺----
TPCK处理的胰蛋白酶Sigma--
Q5定点突变试剂盒New England Biolabs--
PPMO ACE2-AUGGene Tools, LLC--
PPMO ACE2-UTRGene Tools, LLC--
PPMO ACE2-e5i5Gene Tools, LLC--
Scramble PPMOGene Tools, LLC--
重组人TMPRSS2----
重组人ACE2Abcamab273297
Boc-Gln-Ala-Arg-AMC----
DX600Cayman Chemical--
血管紧张素II转换酶2活性检测试剂盒Abcamab273297
抗ACE2抗体Abcamab108252
抗β-actin抗体Abcamab6276
抗H1N1pdm抗体Sino Biological11085-T62
抗H7抗体Sino Biological40103-RP01
抗H3抗体GeneTexGTX
抗HA标签抗体Sigma AldrichH6908
抗FLAG抗体Sigma AldrichF7425
CellLytic M细胞裂解试剂Sigma-Aldrich--
PVDF膜GE Healthcare--
ChemiDoc XRS+系统Bio-Rad--
Image Lab软件Bio-Rad--
Lipofectamine 2000转染试剂ThermoFisher--
NP40缓冲液----
Protein-A-Sepharose树脂Sigma-Aldrich--
Pierce BCA蛋白定量试剂盒ThermoFisher--
抗HA标签琼脂糖珠Sigma-Aldrich--
ANTI-FLAG M2亲和凝胶Sigma Aldrich--
CellTiter-Glo试剂盒----
ExpiSf9细胞Thermo Fisher Scientific--
镍亲和树脂----
Hiload 26/600 Superdex 75凝胶过滤柱Cytiva--
肠激酶New England Biolabs--
DH10 Bac细胞----

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
ACE2对TMPRSS2酶活性测定
重组TMPRSS2和ACE2的浓度及活性单位;底物浓度;DX600浓度;反应温度和时长
阅读提示:参见“Measurement of protease activities”部分,以及图2的图注
细胞培养和病毒感染
细胞系(Calu-3、Caco-2、HEK293)及培养条件;病毒株(H1N1pdm、H3N2、H7N7、MERS-CoV)及MOI;感染时间和孵育时间
阅读提示:参见“Cells and viruses”及“IAV infection of cells for multicycle viral replication and HA cleavage analysis”部分
PPMO敲低ACE2
PPMO序列和浓度;处理时间;敲低效率的验证方法(Western blot)
阅读提示:参见“PPMO”和“Knockdown of ACE2 expression in Calu-3 cells using PPMO”部分,以及图3A-B
病毒滴度检测
蚀斑实验或TCID50的详细步骤;取样时间点
阅读提示:参见“IAV infection of cells for multicycle viral replication and HA cleavage analysis”及“TCID50 titration”部分
蛋白切割分析
细胞裂解和蛋白提取方法;使用的抗体及稀释度;SDS-PAGE和转膜的具体条件
阅读提示:参见“SDS-PAGE and western blot analysis”部分及相应图注
免疫共沉淀
质粒共转染比例;裂解缓冲液成分;免疫沉淀所用琼脂糖种类;洗涤和洗脱条件
阅读提示:参见“Co-immunoprecipitation assay”部分及图5