疫苗株筛选与病毒制备
获得高繁殖力且遗传稳定的Delta变异株灭活疫苗候选株。
从输入病例样品中筛选Delta变异株,经纯化和连续传代评估遗传稳定性,确定最佳接种MOI和收获时间,然后用β-丙内酯灭活病毒,通过电镜和Western blot确认病毒颗粒和结构蛋白。
Delta (B.1.617.2) inactivated vaccine candidate elicited neutralizing antibodies to SARS-CoV-2 and circulating variants in rhesus macaques.
文献包含体外病毒灭活验证、小鼠/大鼠免疫原性实验、恒河猴攻毒保护实验以及多种毒性实验,涵盖体外和体内多个证据层级,并包含功能验证。
Vero细胞 BALB/c小鼠 SD大鼠 恒河猴 食蟹猴 豚鼠
疫苗株为Delta变异株(B.1.617.2),分离自2021年舟山输入病例样品 免疫程序:恒河猴为第0天和第28天肌内注射两剂,剂量分别为10 μg和20 μg 攻毒:第二次免疫后21天,以1×10^5 TCID50的Delta变异株经气管途径攻毒 中和抗体检测针对原型株、Delta、Omicron BA.2.3、BA.5.2.1和XBB.1.5,采用微量中和试验 肺部病毒载量通过实时PCR检测,病理分析评估肺部损伤
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
获得高繁殖力且遗传稳定的Delta变异株灭活疫苗候选株。
从输入病例样品中筛选Delta变异株,经纯化和连续传代评估遗传稳定性,确定最佳接种MOI和收获时间,然后用β-丙内酯灭活病毒,通过电镜和Western blot确认病毒颗粒和结构蛋白。
评估不同剂量和免疫程序下疫苗的免疫原性及交叉中和抗体水平。
BALB/c小鼠和SD大鼠分别按D0/D14或D0/D28免疫程序接种不同剂量(5、10、20 μg)疫苗,检测血清特异性IgG抗体和针对原型株及变异株的中和抗体。
评估Delta灭活疫苗对恒河猴感染Delta变异株的保护效果。
恒河猴随机分为三组,于第0天和第28天免疫两次,第二次免疫后21天以Delta变异株经气管攻毒,观察临床体征、病毒载量和肺部病理变化。
评估疫苗的急性毒性、重复给药毒性和致敏性。
在SD大鼠中进行单次给药毒性实验,在食蟹猴中进行重复给药毒性实验,在豚鼠中进行全身主动过敏反应实验。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 病毒灭活 | β-丙内酯 | -- | -- |
| 细胞培养 | Vero细胞 | -- | -- |
| 免疫检测 | SARS-CoV-2 S特异性IgG抗体 | -- | -- |
| 中和抗体 | -- | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 疫苗制备 | 疫苗株为Delta变异株(B.1.617.2),来源及传代信息;病毒接种MOI和收获时间;灭活剂β-丙内酯的比例和处理条件;灭活验证方法 阅读提示:见Methods部分“Vaccine virus stability and inactivation verification”及图S2 |
| 动物免疫 | 动物品系、性别、数量和体重;免疫剂量、佐剂种类和浓度;免疫程序(D0/D14或D0/D28);采血时间点 阅读提示:见Methods部分“Immunogenicity in mice and rats”及图S3 |
| 恒河猴攻毒保护实验 | 恒河猴分组、剂量(10 μg和20 μg)、免疫时间(D0/D28);攻毒病毒株、剂量(1×10^5 TCID50)、攻毒途径(气管)、攻毒时间(第二次免疫后21天);检测指标和方法(咽喉拭子病毒载量、肺部病毒RNA、病理) 阅读提示:见Methods部分“Rhesus macaque challenge”及图1E-K |
| 安全性评估 | 毒性实验的动物模型、剂量、给药途径、给药方案;过敏反应的致敏和刺激剂量及时间 阅读提示:见Methods部分“Toxicity”和“Allergenicity” |