通过PolD3的丝氨酸ADP-核糖基化调节Rad52依赖性复制叉恢复

Regulation of Rad52-dependent replication fork recovery through serine ADP-ribosylation of PolD3.

作者信息Frederick Richards, Marta J Llorca-Cardenosa, Jamie Langton, Sara C Buch-Larsen, Noor F Shamkhi, Abhishek Bharadwaj Sharma, Michael L Nielsen, Nicholas D Lakin
PMID37463936
发布时间2023-07-18
DOI10.1038/s41467-023-40071-w

实验完整度

高

包含细胞实验、蛋白质组学、功能验证和机制研究,使用多种细胞系和生化分析。

主要模型

U2OS细胞 parp1/2Δ U2OS细胞 BRCA1SMASh U2OS细胞 表达PolD3突变体的U2OS细胞

重点核对

BRCA1依赖的DSB修复验证:通过ASV耗尽BRCA1后,Rad51 foci形成减少和对博来霉素敏感性增加 PARP1/2在BIR中的作用:使用BIR-GFP报告系统,PARP抑制剂和parp1/2敲除降低I-Sce1诱导的GFP重组 Mre11在PARP激活和Rad52 foci形成中的作用:Mre11缺失或Mirin处理降低HU诱导的ADPr和Rad52 foci PolD3 S422对BIR和复制叉恢复的作用:S422A突变无法恢复BIR、复制叉重启和HU敏感性

摘要

尽管聚(ADP-核糖)聚合酶(PARPs)是基因组稳定性的关键调控因子,但位点特异性ADP-核糖基化如何调节DNA修复尚不清楚。在此,我们描述了PARP1和PARP2在调节Rad52依赖性复制叉修复中的新作用,以在同源重组功能失调时维持细胞活力,抑制复制相关的DNA损伤,并维持基因组稳定性。机制上,Mre11和ATM是复制应激诱导PARP活性所必需的,而PARP活性进而通过Rad52在停滞/损伤复制叉上的组装促进断裂诱导复制(BIR)。此外,通过定位复制应激诱导的ADP-核糖基化位点,我们发现PolD3是PARP1/PARP2的靶标,其位点特异性ADP-核糖基化是BIR活性、复制叉恢复和基因组稳定性所必需的。总的来说,这些数据确定了Mre11依赖性PARP激活和位点特异性ADP-核糖基化在调节BIR以维持DNA合成过程中基因组完整性中的关键作用。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
PARP1/PARP2如何通过位点特异性ADP-核糖基化调节Rad52依赖性复制叉恢复以维持基因组稳定性?
核心机制
复制应激时,Mre11和ATM激活PARP1/PARP2,催化PolD3 S422位点的丝氨酸ADP-核糖基化,促进Rad52在停滞/损伤复制叉上的组装,从而启动断裂诱导复制(BIR)以恢复复制叉。
主要证据
BIR-GFP报告系统显示PARP1/2和Rad52在同一通路;HU处理诱导Mre11依赖的ADPr和Rad52 foci;质谱鉴定PolD3 S422修饰,S422A突变降低PolD3染色质富集、BIR效率和复制叉重启。
研究意义
揭示PARP在BIR调节中的新机制,为靶向DNA损伤反应通路提供策略,有助于理解PARP抑制剂在BRCA缺陷细胞中的毒性机制。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

建立BRCA1可诱导缺失系统

构建可条件性耗尽BRCA1的细胞模型,以评估PARP1基因破坏与HR缺陷的合成致死性。

通过CRISPR-Cas9在U2OS细胞BRCA1基因插入SMASh降解子,并用ASV诱导BRCA1耗尽;随后敲除PARP1基因生成BRCA1SMAShparp1Δ细胞。

2

评估PARP1与Rad52在HR缺陷细胞中的遗传相互作用

确定PARP1和Rad52是否在同一通路中维持HR缺陷细胞的生存能力。

使用siRNA耗尽Rad52,通过克隆形成实验检测对ASV的敏感性。

3

检测PARP1/2对BIR活性的影响

测试PARP1/2是否调节Rad52依赖性BIR。

使用BIR-GFP报告系统,在U2OS和parp1/2Δ细胞中诱导I-Sce1切口,并用PARPi(PJ-34、veliparib)或Rad52抑制剂处理,检测GFP阳性细胞比例。

4

评估PARP1/2对复制应激下DNA损伤和基因组稳定性的影响

确定PARP1/2和Rad52是否通过同一机制抑制HU诱导的DNA损伤和基因组不稳定性。

用HU处理U2OS和parp1/2Δ细胞,并检测DNA断裂(脉冲场凝胶电泳)、有丝分裂桥和微核形成。

5

研究Mre11在PARP激活和Rad52组装中的作用

阐明Mre11依赖性PARP激活是否促进Rad52在停滞复制叉上的组装。

通过siRNA或Mirin处理耗尽或抑制Mre11,检测HU诱导的ADPr水平、Rad52 foci形成、BIR活性和对BRCA1缺失的敏感性。

6

绘制HU诱导的ADPr位点

系统鉴定复制应激诱导的ADPr位点,以找到调控BIR的关键底物。

使用Af1521 macrodomain亲和纯化结合定量质谱,比较HU处理前后ADPr位点。

7

验证PolD3 S422的ADPr及其功能

确认PolD3 S422的ADPr在BIR和复制叉恢复中的必要性。

表达siRNA抗性的PolD3WT或S422A突变体,检测HU诱导的ADPr、染色质富集、BIR效率、复制叉重启、HU敏感性和微核形成。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

验证样本或模型特征
验证分子表达变化
验证免疫效应
数据分析与统计

产品清单

实验环节名称品牌货号
DMEM培养基----
胎牛血清----
pSpCas9(BB)-2A-Puro (PX459) V2.0载体----
Q5®定点突变试剂盒NEBE0552S
POLD3 cDNASino BiologicalHG19572-UT
pLENTI-EF1α-N-FLAG-HA-PURO载体----
Dharmafect-1转染试剂Dharmacon--
pBIR-GFP质粒报告系统Addgene49807
pI-SCE1-GR-RFP载体Addgene17654
曲安奈德----
阿非迪霉素Cayman--
VE-821(ATR抑制剂)Sigma--
RO3306(CDK1抑制剂)Sigma--
EdU----
PVDF膜Millipore--
Immobilon Western化学发光HRP底物Millipore--
Odyssey® XF成像系统LI-COR Biosciences--
PAN-ADP-核糖结合试剂MerckMABE1016
PARG抑制剂 PDD 00017273Tocris--
anti-FLAG M2磁珠----
结晶紫Sigma--
蛋白酶K----
低熔点琼脂糖----
CHEF DR III变角系统Bio-Rad--
酿酒酵母标准品Bio-Rad1703605
溴化乙锭----
CldU(5-氯-2'-脱氧尿苷)----
IdU(5-碘-2'-脱氧尿苷)----
GST标记的Af1521宏结构域----
Orbitrap Fusion Lumos质谱仪ThermoFisher--

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
细胞培养与基因编辑
U2OS细胞培养条件(DMEM+10%FBS,37°C,5%CO2);BRCA1SMASh细胞构建的CRISPR gRNA序列(CTAGGGGGTGTCGGTGATG)
阅读提示:Methods:Cell lines, cell culture, and genome editing
BIR-GFP报告分析
U2OS-BIR1和U2OS-BIR2克隆;I-Sce1诱导(pI-SCE1-GR-RFP)和TA处理;PARPi处理浓度和时间(PJ-34 20 µM,veliparib 10 µM,48小时)
阅读提示:Methods:BIR GFP plasmid reporter assay
ADPr检测
HU处理条件(2 mM,24小时);PARP抑制剂(PJ-34 20 µM)和PARG抑制剂(PDD 00017273 10 µM)的使用;PAN-ADP-ribose结合试剂(MABE1016)
阅读提示:Methods:Assessing ADP-ribosylation status of proteins by affinity purification or immunoprecipitation
Mre11功能分析
Mre11 siRNA序列(GAACCUGGUCCCAGAGGAGdTdT-3);Mirin(50 µM);HU处理(2 mM,24小时)
阅读提示:Methods:siRNA transfections; Results:Mre11-dependent activation of PARPs...
PolD3功能分析
PolD3S422A突变体;siRNA抗性PolD3表达;HU处理(2 mM,24小时);BIR、DNA纤维、克隆形成和微核检测条件
阅读提示:Methods:Cell lines...;Results:Site-specific ADPr of PolD3...