一氧化氮通过调控细胞血红素分配来调节吲哚胺双加氧酶和色氨酸双加氧酶的活性

Indoleamine dioxygenase and tryptophan dioxygenase activities are regulated through control of cell heme allocation by nitric oxide.

作者信息Pranjal Biswas, Dennis J Stuehr
PMID37116709
发布时间2023-06
DOI10.1016/j.jbc.2023.104753

实验完整度

研究包含多细胞系(HepG2、HEK293T、GlyA-CHO)的体外实验,涉及功能活性检测、放射性标记血红素测定、siRNA敲低与回补、抑制剂处理、巨噬细胞共培养等,明确验证了机制。

主要模型

HepG2细胞(天然表达TDO) HEK293T细胞(转染表达TDO或IDO1) GlyA-CHO细胞(转染表达TDO-FLAG或IDO1-FLAG) RAW264.7巨噬细胞(LPS激活产生NO)

重点核对

NOC-18浓度范围(0.1–100 μM) NOC-18处理时间(12小时) GAPDH敲低(siRNA)及回补(野生型HA-GAPDH或H53A突变体) Hsp90抑制剂radicicol(10 μM)预处理6小时 巨噬细胞共培养中RAW264.7细胞的汇合度(25%和100%)

摘要

吲哚胺-2,3-双加氧酶(IDO1)和色氨酸-2,3-双加氧酶(TDO)催化L-色氨酸转化为N-甲酰犬尿氨酸,因此在代谢、炎症和肿瘤免疫监视中发挥主要作用。由于它们的活性取决于其血红素含量,而血红素含量在生物环境中会动态变化,我们研究了哺乳动物细胞中一氧化氮(NO)如何影响它们的血红素水平。我们利用天然表达或通过转染表达TDO或IDO1的细胞,并测定其活性、血红素含量和表达水平随NO暴露的变化。我们发现NO具有双峰效应:低浓度NO的狭窄范围促进细胞将血红素分配给无血红素的TDO和IDO1群体,从而将其血红素含量和活性提高4至6倍,而超过此范围,NO暴露转为对其血红素含量和活性产生负面影响。NO不改变双加氧酶的蛋白表达水平,其双峰效应在NO由化学供体释放或由免疫刺激的巨噬细胞天然产生时均被观察到。NO驱动的血红素分配给IDO1和TDO需要GAPDH-血红素复合物的参与,且IDO1需要伴侣蛋白Hsp90的活性。因此,细胞可以通过NO对血红素分配的双峰控制来上调或下调其IDO1和TDO活性。该机制具有重要的生物医学意义,有助于解释动物中IDO1和TDO活性如何响应免疫刺激而上调或下调。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
NO如何影响哺乳动物细胞中IDO1和TDO的活性及其血红素含量?
核心机制
NO通过双峰方式调控细胞血红素分配:低浓度NO促进血红素装载到无血红素的IDO1和TDO上,高浓度NO导致已结合的血红素丢失,该过程依赖GAPDH-血红素复合物形成,IDO1还需Hsp90。
主要证据
在多种细胞系中,低浓度NO(0.1–5 μM NOC-18)使IDO1/TDO活性增加4-6倍,血红素含量增加约3倍;高浓度(50–100 μM)降低活性和血红素含量。siRNA敲低GAPDH或抑制Hsp90可阻断低浓度NO的效应。
研究意义
该机制解释了免疫刺激如何动态调节IDO1和TDO活性,并可能与肿瘤和自身免疫疾病中NO对免疫监视的影响有关。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

NO对IDO1和TDO活性的浓度依赖性双峰效应

确定不同浓度NO供体NOC-18对细胞中TDO和IDO1活性的影响

在HepG2(天然TDO)和HEK293T(转染TDO或IDO1)细胞中,用不同浓度(0, 0.1, 1, 5, 25, 50, 75, 100 μM)的NOC-18处理12小时,测定培养基中犬尿氨酸(Kyn)积累量

2

NO对IDO1和TDO血红素含量的影响

检测NO是否通过改变血红素含量来影响酶活性

在GlyA-CHO细胞中表达FLAG标签的TDO或IDO1,用14C-甘氨酸标记血红素,再用不同浓度NOC-18处理,免疫沉淀后测定14C-血红素计数和Kyn产量

3

免疫激活巨噬细胞产生NO的效果验证

验证生理性NO(由免疫刺激细胞产生)是否也能调节IDO1和TDO

将LPS激活的RAW264.7巨噬细胞置于transwell小室中,与表达TDO或IDO1的GlyA-CHO细胞共培养6小时,测定亚硝酸盐、Kyn和血红素含量

4

NO驱动血红素分配的时间动力学

研究低和高NO暴露对血红素掺入和丢失的时间依赖性

GlyA-CHO细胞表达IDO1或TDO后,用0、5、100 μM NOC-18处理,在不同时间点(0, 1, 2, 4, 6, 8, 12小时)测定Kyn和14C-血红素

5

GAPDH依赖性验证

确定NO驱动的血红素分配是否依赖GAPDH及其血红素结合能力

使用siRNA敲低GAPDH,并回补野生型HA-GAPDH或血红素结合缺陷的HA-GAPDH-H53A突变体,检测NO处理下的活性和血红素含量

6

Hsp90依赖性验证

确定NO驱动的血红素分配是否依赖Hsp90,并区分IDO1和TDO的差异

用Hsp90抑制剂radicicol(10 μM)预处理细胞6小时,再与不同浓度NOC-18共处理,检测活性和血红素含量

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
NOC-18Dojindo Molecular TechnologiesN379-12
Eagle基础必需培养基ATCC30-2003
胎牛血清Gibco--
杜尔贝科改良伊格尔培养基----
无甘氨酸DMEM/F-12培养基Caisson LabsDFP04
Lipofectamine 2000转染试剂Invitrogen11668019
靶向人GAPDH的siRNADharmaconD-001830-01-05
乱序siRNADharmaconD-001810-10-05
[14C]-甘氨酸ICN Biomedicals--
根赤壳菌素SigmaR2146
Ehrlich试剂Sigma109762
犬尿氨酸SigmaK8625
抗FLAG抗体SigmaF1804
蛋白G琼脂糖珠Millipore16-201
抗GAPDH抗体Santa Cruz Biotechnologysc-32233
抗TDO抗体Proteintech15880-1-AP
抗iNOS抗体R&D SystemsMAB9502
抗α-微管蛋白抗体Santa Cruz Biotechnologysc-5286
HRP标记的抗小鼠二抗Bio-Rad170-6516
HRP标记的抗兔二抗GE HealthcareNA9340
增强化学发光底物Thermo Scientific32106
PVDF膜Bio-Rad1620177
ChemiDoc成像系统Bio-Rad--
Transwell小室CorningCLS3450
脂多糖SigmaL2630
Griess试剂系统PromegaG2930
Bradford试剂Bio-Rad500-0006
蛋白酶抑制剂混合物Roche--
Triton X-100----
钼酸钠----
氧合血红蛋白----

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
NO供体处理
NOC-18浓度范围(0.1–100 μM)、处理时间(12小时)、培养基pH(7.0)和血清类型
阅读提示:Methods中的'Treatment of cells with NOC-18'
细胞培养
细胞系(HepG2、HEK293T、GlyA-CHO)、培养基添加剂(如10% FBS)、L-色氨酸浓度(2 mM)
阅读提示:Methods中的'Growth of HepG2 cells'和'Plasmids, transfection, and expression'
血红素标记
14C-甘氨酸浓度(2 μCi/ml)、标记时间(72小时)、环己酰亚胺使用(5 μg/ml, 12小时)
阅读提示:Methods中的'14C-labeled heme production'和'Plasmids, transfection'
GAPDH敲低与回补
siRNA浓度(100 nM)、敲低时间(72小时)、回补质粒(野生型或H53A突变体)
阅读提示:Methods中的'Transfection of siRNA and gene silencing'
巨噬细胞共培养
RAW264.7细胞汇合度(25%和100%)、LPS浓度(1 μg/ml)、激活时间(6小时)、共培养时间(6小时)
阅读提示:Methods中的'Transwell coculture experiment'