MARCH5依赖的NLRP3泛素化是线粒体NLRP3-NEK7复合物形成和NLRP3炎症小体激活所必需的

MARCH5-dependent NLRP3 ubiquitination is required for mitochondrial NLRP3-NEK7 complex formation and NLRP3 inflammasome activation.

作者信息Yeon-Ji Park, Niranjan Dodantenna, Yonghyeon Kim, Tae-Hwan Kim, Ho-Soo Lee, Young-Suk Yoo, June Heo, Jae-Ho Lee, Myung-Hee Kwon, Ho Chul Kang, Jong-Soo Lee, Hyeseong Cho
PMID37575012
期刊EMBO J
发布时间2023-10-04
DOI10.15252/embj.2023113481

实验完整度

包含体内动物模型(March5 cKO小鼠)、原代巨噬细胞及多种细胞系实验,并进行了机制验证(泛素化位点突变、免疫共沉淀、SDD-AGE等)和功能验证(IL-1β/IL-18分泌、ASC斑点等)。

主要模型

骨髓来源巨噬细胞(BMDMs) THP-1细胞 HEK293T细胞 March5条件敲除小鼠

重点核对

March5条件敲除(March5fl/fl;Lyz-Cre)小鼠 LPS浓度200 ng/ml,ATP浓度5 mM,尼日利亚霉素浓度15 μM 细菌感染模型:铜绿假单胞菌(1×10^7 CFU) NLRP3 K324R和K430R突变体 HA-ubiquitin K27 only (K27O) 和 K27R 突变体

摘要

NLRP3炎症小体在响应病原体和内源性损伤中起关键作用,线粒体深度参与炎症小体的激活。NLRP3炎症小体形成多蛋白复合物,其顺序组装对其激活至关重要。在这里,我们展示了NLRP3被线粒体相关的E3连接酶MARCH5泛素化。髓系细胞特异性March5条件敲除(March5 cKO)小鼠在LPS或铜绿假单胞菌攻击后未能分泌IL-1β和IL-18,并表现出降低的死亡率。来自March5 cKO小鼠的巨噬细胞在微生物感染后也未产生IL-1β和IL-18。机制上,MARCH5与NLRP3的NACHT结构域相互作用,并促进NLRP3 K324和K430残基上的K27连接的多聚泛素化。K324和K430残基上泛素化缺陷的NLRP3突变体不能与NEK7结合,也不能形成NLRP3寡聚体,导致ASC斑点形成失败和IL-1β产生减少。因此,线粒体上MARCH5依赖的NLRP3泛素化是NLRP3-NEK7复合物形成和NLRP3寡聚化所必需的。我们提出E3连接酶MARCH5是线粒体上NLRP3炎症小体激活的调节因子。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
MARCH5如何调控NLRP3炎症小体的激活?特别是MARCH5介导的NLRP3泛素化在NLRP3-NEK7复合物形成和NLRP3寡聚化中的作用是什么?
核心机制
MARCH5与NLRP3的NACHT结构域相互作用,通过K27连接的多聚泛素化修饰NLRP3的K324和K430残基,促进NEK7与NLRP3的结合,进而促进NLRP3寡聚化、ASC募集和炎症小体组装,最终导致caspase-1激活和IL-1β/IL-18分泌。
主要证据
March5 cKO小鼠在LPS或铜绿假单胞菌攻击后IL-1β和IL-18分泌减少且死亡率降低;March5缺陷的BMDMs和THP-1细胞在NLRP3刺激下IL-1β和caspase-1分泌减少;生化实验证明MARCH5与NLRP3结合并介导K27连接的泛素化;NLRP3 K324R/K430R突变体无法与NEK7结合或形成寡聚体。
研究意义
MARCH5是NLRP3炎症小体激活的关键调节因子,靶向MARCH5与NLRP3的相互作用或调节MARCH5活性可能为NLRP3相关炎症性疾病提供新的治疗策略。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

体内验证MARCH5对炎症反应和存活率的影响

确定MARCH5在细菌感染和内毒素诱导的脓毒性休克中是否影响小鼠的炎症反应和存活率。

使用March5fl/fl和March5 cKO小鼠,通过腹腔注射铜绿假单胞菌或LPS,监测存活率、体重变化,并检测血清、脾脏和腹腔液中的细胞因子水平。

2

细胞水平验证MARCH5对NLRP3炎症小体激活的特异性

确定MARCH5是否特异性调节NLRP3炎症小体,而非其他炎症小体。

从March5fl/fl和March5 cKO小鼠中分离BMDMs,用不同刺激物激活NLRP3、NLRC4、AIM2炎症小体,检测caspase-1、IL-1β分泌和LDH释放。

3

验证MARCH5对NLRP3炎症小体组装和激活的必要性

验证MARCH5是否对于NLRP3炎症小体的组装(ASC寡聚化和斑点形成)和caspase-1激活是必需的。

利用March5 cKO BMDMs和siRNA敲低MARCH5的THP-1细胞,检测IL-1β和caspase-1分泌,并检测ASC寡聚化和斑点形成。

4

鉴定MARCH5与NLRP3的相互作用结构域

确定MARCH5与NLRP3的具体结合区域。

通过免疫共沉淀实验,在HEK293T细胞中共表达MARCH5和NLRP3或其截短突变体,检测结合情况。

5

鉴定MARCH5介导的NLRP3泛素化类型和位点

确定MARCH5是否介导NLRP3的K27连接多聚泛素化,并识别具体的泛素化位点。

在HEK293T细胞中将NLRP3与不同的泛素突变体共表达,通过免疫沉淀和western blotting检测泛素化水平,并用UbPred预测和点突变验证泛素化位点。

6

验证MARCH5介导的泛素化对NEK7结合和NLRP3寡聚化的影响

确定MARCH5依赖性泛素化是否促进NEK7与NLRP3的结合以及NLRP3寡聚化。

在敲低MARCH5的THP-1细胞或iBMDMs中检测NEK7-NLRP3结合,并通过SDD-AGE、blue native PAGE和共聚焦显微镜检测NLRP3寡聚化。

7

验证NLRP3泛素化缺陷突变体对炎症小体激活的影响

确定NLRP3 K324和K430位点的泛素化对于炎症小体激活是否必需。

在HEK293T细胞中表达NLRP3野生型或泛素化缺陷突变体(K324R、K430R),与ASC共表达,检测ASC斑点形成、ASC寡聚化和IL-1β分泌。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
HEK293T细胞ATCCACS-4500
THP-1细胞ATCCTIB-202
L929细胞----
永生化骨髓来源巨噬细胞----
表达GFP-NLRP3的永生化骨髓来源巨噬细胞----
啮齿类柠檬酸杆菌ATCC51459
铜绿假单胞菌ATCCBAA-1744
pcDNA3.1载体InvitrogenV79020
pCMV3-C-FLAG-IL-1β质粒Sino BiologicalHG10139-CF
pCMV3-C-HA-NEK7质粒Sino BiologicalHG11534-CY
NLRP3抗体(Clone Cryo2-)AdipogenAG-20B-0014
NLRP3抗体Cell Signaling Technology15101
NLRP3抗体Abcamab4207
ASC抗体AdipogenAG-25B-0006
ASC抗体Santa Cruz Biotechnologysc-514414
ASC抗体Santa Cruz Biotechnologysc-22514-R
IL-1β抗体Cell Signaling Technology12242
IL-1β p20抗体AdipogenAF-401-NA
IL-1β抗体Santa Cruz Biotechnology12742
caspase-1抗体AdipogenAG-20B-0042
caspase-1抗体Cell Signaling Technology3866
caspase-1抗体Santa Cruz Biotechnologysc-56036
MAVS抗体Cell Signaling Technology83000
MAVS抗体Cell Signaling Technology3993
MARCH5抗体----
NEK7抗体Santa Cruz Biotechnologysc-393539
NEK7抗体Abcamab133514
FLAG抗体Sigma-AldrichF1804
c-Myc抗体Santa Cruz Biotechnologysc-40
HA抗体Santa Cruz Biotechnologysc-7392
Tubulin抗体Santa Cruz Biotechnologysc-73242
GAPDH抗体Cell Signaling Technology5174
山羊抗小鼠IgG (H+L)-HRP偶联物Bio-Rad170516
山羊抗兔IgG (H+L)-HRP偶联物Bio-Rad1706515
驴抗山羊IgG (H+L)-HRP偶联物Bio-Rad642005
靶向人MARCH5的siRNABioneer--
靶向小鼠March5的siRNABioneer--
靶向人MAVS的siRNABioneer57506
靶向小鼠Asc的siRNABioneer--
大肠杆菌O26:B6来源的脂多糖Sigma-AldrichL8274
三磷酸腺苷Sigma-AldrichA6419
尼日利亚霉素Invivogentlrl-nig
鞭毛蛋白FLA-STInvivogentlrl-stfla
聚肌胞苷酸Invivogentlrl-pic
聚脱氧腺苷-胸苷酸Invivogentlrl-patn-1
重组人MARCH5 GST蛋白AbnovaH00054708-P0
抗FLAG M2亲和凝胶Sigma-AldrichA2220
DSS(双琥珀酰亚胺辛二酸酯)InvitrogenA39267
LDH-Glo™细胞毒性检测试剂盒PromegaJ2380
Caspase-Glo® 1炎症小体检测试剂盒PromegaG9951l
Lipofectamine 2000转染试剂Invitrogen11668-019
小鼠IL-1β ELISA检测试剂盒Biolegend432616
小鼠caspase-1 ELISA检测试剂盒Novus BiologicalsNBP2-75014
小鼠TNF-α ELISA检测试剂盒BD OptEIA555268
小鼠IL-6 ELISA检测试剂盒BD OptEIA555240
人IL-1β ELISA检测试剂盒Invitrogen88-7261-22
小鼠IL-18 ELISA检测试剂盒MBLB002-5
聚乙烯亚胺(PEI)Polysciences--

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
小鼠模型
March5条件敲除小鼠的构建(March5fl/fl;Lyz-Cre),小鼠周龄(12-20周),性别(雄性)
阅读提示:详见Materials and Methods中的Mice部分
内毒素休克模型
LPS剂量(28 mg/kg),腹腔注射途径,监测时间(8天)
阅读提示:详见Materials and Methods中的LPS septic shock model部分
细菌感染模型
铜绿假单胞菌菌株(ATCC BAA-1744),剂量(1×10^7 CFU),腹腔注射,监测时间(10天)
阅读提示:详见Materials and Methods中的P. aeruginosa infection部分
细胞培养
BMDMs分离自12-20周龄小鼠,用20% L929条件培养基分化6天;THP-1细胞用100 nM PMA处理72小时分化
阅读提示:详见Materials and Methods中的Cell culture部分
炎症小体激活
LPS浓度(200 ng/ml)处理4小时,ATP浓度(5 mM)处理30-45分钟,尼日利亚霉素浓度(15 μM)处理30-60分钟
阅读提示:详见Materials and Methods中的Inflammasome activation部分
泛素化实验
MARCH5突变体(2KR、H43W),泛素突变体(K48R、K27O、K27R),NLRP3点突变体(K324R、K430R等)
阅读提示:详见Materials and Methods中的In vivo ubiquitination assay部分及图5图注
免疫共沉淀
裂解缓冲液成分(50 mM Tris pH 7.8, 150 mM NaCl, 1% NP-40等),抗体(抗NLRP3、抗FLAG M2 beads),4°C孵育过夜
阅读提示:详见Materials and Methods中的Immunoprecipitation部分
ASC寡聚化检测
DSS浓度(2 mM),交联时间(30分钟),Triton X-100不溶组分分离条件
阅读提示:详见Materials and Methods中的ASC oligomer cross-linking部分
SDD-AGE
1%琼脂糖凝胶,电泳条件(80V,1小时30分钟,4°C),样品缓冲液成分
阅读提示:详见Materials and Methods中的SDD-AGE部分
2D-PAGE
Blue-native PAGE条件,第二维SDS-PAGE条件
阅读提示:详见Materials and Methods中的2D-PAGE部分
统计设计
至少三次独立实验,数据表示为均值±SEM或均值±SD,t检验或Mantel-Cox检验
阅读提示:详见Materials and Methods中的Statistical analysis部分