体外细胞活力检测
确定TGF-β1和原儿茶醛的安全处理浓度
用不同浓度TGF-β1(0-20 ng/mL)和PCA(0-80 μM)处理NRK-52E细胞7天,通过CCK-8检测细胞活力
Anti-EMT and anti-fibrosis effects of protocatechuic aldehyde in renal proximal tubular cells and the unilateral ureteral obstruction animal model.
包含体外细胞实验(TGF-β1诱导EMT及PCA处理)和体内动物模型(UUO大鼠),并通过Western blot、免疫荧光、免疫组化、H&E等多方法验证功能与分子变化。
NRK-52E大鼠肾近端小管上皮细胞系 单侧输尿管梗阻(UUO)SD大鼠模型
TGF-β1诱导浓度:20 ng/mL,处理7天 PCA处理浓度:体外1和5 μM,体内50和100 mg/kg/天 动物分组:Sham、UUO、UUO+PCA50、UUO+PCA100,每组6只 体内处理时间:14天,口服灌胃 检测指标:EMT标志物(E-cadherin、vimentin、α-SMA)和纤维化标志物(collagen IV)的表达
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
确定TGF-β1和原儿茶醛的安全处理浓度
用不同浓度TGF-β1(0-20 ng/mL)和PCA(0-80 μM)处理NRK-52E细胞7天,通过CCK-8检测细胞活力
验证PCA是否抑制TGF-β1诱导的EMT和纤维化标志物表达
NRK-52E细胞分为对照组、TGF-β1组、TGF-β1+1 μM PCA组、TGF-β1+5 μM PCA组,处理7天后进行Western blot和免疫荧光检测
评估PCA对TGF-β1诱导的细胞迁移的影响
NRK-52E细胞划痕后,用无血清培养基培养16小时,测量迁移距离
评估PCA对UUO诱导的肾纤维化的体内效果
SD大鼠分为四组,进行UUO手术或假手术,术后每天口服PCA或溶剂,14天后取肾分析
评估UUO大鼠肾组织病理变化和EMT/纤维化标志物表达
肾组织经H&E、PAS、Masson染色和免疫组化染色,分析肾小管扩张、胶原沉积和标志物表达
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养与处理 | TGF-β1重组蛋白 | Sino Biological | 80116-R08H |
| 细胞培养 | 达尔伯克改良伊格尔培养基 | Gibco | -- |
| 胎牛血清 | Hyclone | -- | |
| 细胞培养与处理 | 原儿茶醛 | Merck Millipore | 820475 |
| Western blot | 抗GAPDH抗体 | Merck Millipore | MABT825 |
| 抗E-cadherin抗体 | BD Biosciences | 610182 | |
| 抗E-cadherin抗体 | ProteinTech Group | 20874-1-AP | |
| 抗vimentin抗体 | IReal Biotechnology | IR45-137 | |
| 抗α-SMA抗体 | IReal Biotechnology | IE47-146 | |
| 抗collagen IV抗体 | Abcam | ab6586 | |
| HRP标记的二抗 | Cell Signaling Technology | -- | |
| Amersham Imager 680成像系统 | Cytiva | -- | |
| 细胞活力检测 | CCK-8试剂盒 | MedChemExpress | -- |
| Western blot | RIPA裂解液 | Millipore | -- |
| PVDF膜 | Merck Millipore | -- | |
| 划痕愈合实验 | 尼康Ti-U显微镜 | NIKON | -- |
| 免疫荧光染色 | DAPI荧光封片剂 | SouthernBiotech | -- |
| 激光扫描共聚焦显微镜(FLUOVIEW FV1000) | Olympus | -- | |
| 免疫组化染色 | Dako Cytomation EnVision+ Dual Link System-HRP (DAB+)免疫组化检测系统 | Dako Cytomation Inc. | -- |
| 组织病理分析 | Axiovert 200M显微镜 | Zeiss | -- |
| 统计分析 | GraphPad Prism 6.0统计软件 | GraphPad Software | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 细胞活力检测 | TGF-β1诱导浓度(20 ng/mL)、PCA浓度(≤5 μM)、处理时间(7天)、细胞密度(8×10^2/孔) 阅读提示:Methods: Cell viability |
| 体外EMT诱导与PCA处理 | 细胞系(NRK-52E)、TGF-β1浓度(20 ng/mL)、PCA浓度(1和5 μM)、处理时间(7天)、检测指标(E-cadherin、vimentin、α-SMA、collagen IV) 阅读提示:Methods: Cell culture and treatment; Results: Effects of PCA on EMT induced by TGF-β1 in NRK-52E |
| 划痕愈合实验 | 细胞系(NRK-52E)、处理时间(TGF-β1和PCA处理7天,划痕后16小时)、划痕工具(1 mL移液管尖端)、无血清培养基 阅读提示:Methods: Wound healing; Results: Effects of PCA on EMT induced by TGF-β1 in NRK-52E |
| 动物模型 | 动物品系(雄性SD大鼠,约200g)、分组(Sham、UUO、UUO+PCA50、UUO+PCA100)、每组6只、UUO手术、PCA剂量(50、100 mg/kg/天)、给药方式(口服灌胃)、处理时间(14天) 阅读提示:Methods: Animal model; Results: Effects of PCA on rat renal tubulointerstitial changes and functions induced by UUO surgery |
| 组织病理和免疫组化分析 | 染色方法(H&E、PAS、Masson)、免疫组化指标(E-cadherin、vimentin、α-SMA、collagen IV)、定量软件(NIS-elements BR 4.0) 阅读提示:Methods: Immunohistochemical staining; Results: Effects of PCA on renal fibrosis and EMT changes in rats after UUO surgery |