CoVariant蛋白质微阵列的制备和质量控制
开发并验证包含野生型和八种变异株刺突蛋白胞外域的微阵列,确保蛋白固定、重复性和功能性。
将野生型和变异株刺突蛋白胞外域及对照蛋白打印在醛基包被的玻片上,通过抗His、抗刺突和ACE2染色验证固定、重复性和功能。
Development of SARS-CoV-2 variant protein microarray for profiling humoral immunity in vaccinated subjects.
包含蛋白质微阵列平台开发与质量控制、体外功能验证、患者血清样本分析及与cPass方法的对比验证,涵盖多个独立证据层级。
SARS-CoV-2刺突蛋白胞外域(野生型及8种变异株) 人血清样本(未接种、部分或完全接种者) 嵌合抗刺突单克隆抗体
疫苗类型和剂量:mRNA-1273或AZD1222,一剂或两剂 疫苗接种后采血时间:第一剂后至少20天,第二剂后至少7天 血清稀释倍数:50倍 替代中和活性计算:抑制ACE2结合率 = 1-(有抗体ACE2/无抗体ACE2)×100% 对比验证:与GenScript cPass试剂盒比较,r方为0.973
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
开发并验证包含野生型和八种变异株刺突蛋白胞外域的微阵列,确保蛋白固定、重复性和功能性。
将野生型和变异株刺突蛋白胞外域及对照蛋白打印在醛基包被的玻片上,通过抗His、抗刺突和ACE2染色验证固定、重复性和功能。
验证CoVariant阵列能否同时定量抗体和ACE2结合,并评估抗刺突抗体的广谱中和活性。
使用嵌合抗刺突单克隆抗体进行剂量反应实验,同时检测抗体结合和ACE2抑制,计算IC50。
评估不同疫苗接种状态(AZD1222或mRNA-1273)下针对多种变异株的体液免疫反应。
收集血清样本,在CoVariant阵列上检测IgG、IgA、IgM水平和替代中和活性,并进行相关性分析。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 微阵列制备 | SmartArrayer 136 | CapitalBio | -- |
| 膜分离试剂盒 | ThermoFisher | 89842 | |
| 微阵列质控 | SuperBlock封闭缓冲液 | ThermoFisher | 37537 |
| 647标记兔抗His标签抗体 | Jackson Lab | 300-605-240 | |
| 抗刺突抗体 | Sino Biological | 40150-D001 | |
| Cy3标记抗人IgG抗体 | Jackson Laboratory | 109-165-003 | |
| 生物素化ACE2 | Sino Biological | 10108-H08H–B | |
| Cy5标记链霉亲和素 | Jackson Lab | 016-170-084 | |
| 微阵列扫描 | SpinScan扫描仪 | Caduceus Biotechnology | -- |
| 血清采集 | 肝素钠BD真空采血管 | Becton Drive Vacutainer | -- |
| 血清分析 | Cy3标记抗人IgG抗体 | Jackson Laboratory | 109-165-008 |
| Cy3标记抗人IgA抗体 | Jackson Laboratory | 109-165-011 | |
| Cy3标记抗人IgM抗体 | Jackson Laboratory | 109-165-043 | |
| 数据分析 | GenePix Pro软件 | -- | -- |
| GraphPad Prism软件 | GraphPad | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 蛋白质微阵列制备 | 蛋白种类、浓度、打印缓冲液、玻片类型、打印仪器及参数 阅读提示:Methods 5.1节和表S1 |
| 质控检测 | 抗体浓度(抗His、抗刺突、ACE2)、孵育时间、洗涤条件 阅读提示:Methods 5.2节 |
| 抗体中和试验 | 抗刺突抗体的系列稀释、ACE2浓度、孵育时间、荧光标记 阅读提示:Methods 5.3节和2.2节 |
| 血清样本分析 | 疫苗接种类型和剂量、采血时间、血清稀释倍数、抗体检测浓度、孵育时间 阅读提示:Methods 5.4节和5.5节 |
| 数据分析 | 信号处理、归一化方法、竞争计算、统计方法、异常值剔除标准 阅读提示:Methods 5.6节 |