编码抗TIGIT单链抗体片段的重组溶瘤痘苗病毒诱导有效的抗肿瘤免疫并与PD-1或LAG-3阻断协同作用

An engineered oncolytic vaccinia virus encoding a single-chain variable fragment against TIGIT induces effective antitumor immunity and synergizes with PD-1 or LAG-3 blockade

作者信息Shuguang Zuo, Min Wei, Tiancheng Xu, Lingkai Kong, Bohao He, Shiqun Wang, Shibing Wang, Junhua Wu, Jie Dong, Jiwu Wei
PMID34949694
发布时间2021-12
DOI10.1136/jitc-2021-002843

实验完整度

包含体外病毒构建、功能验证,多种皮下及腹水肿瘤模型,免疫细胞分析,抗体耗竭实验,联合治疗及记忆免疫评估。

主要模型

CT26 皮下移植瘤模型(BALB/c小鼠) MC38 皮下移植瘤模型(C57BL/6小鼠) H22 腹水瘤模型(BALB/c和C57BL/6小鼠) 4T1 皮下移植瘤模型(BALB/c小鼠)

重点核对

病毒构建中scFv-TIGIT基因片段的序列及同源重组验证 病毒复制能力及溶瘤活性的体外验证(MOI、时间点) 体内实验中肿瘤接种细胞数、给药途径(瘤内/腹腔)、病毒剂量和给药方案 CD8+T细胞和NK细胞耗竭抗体的使用及耗竭效果验证 联合治疗中抗PD-1和抗LAG-3抗体的剂量、给药时机和频次

摘要

背景:溶瘤病毒除了直接裂解肿瘤外,还通过招募和激活肿瘤微环境中的免疫细胞来诱导抗肿瘤免疫。然而,溶瘤病毒诱导的免疫细胞激活总是伴随着这些细胞中免疫检查点的高水平表达,这可能降低溶瘤病毒的功效。本研究旨在通过免疫检查点阻断武装溶瘤痘苗病毒(VV)以增强其抗肿瘤疗效。方法:通过与亲本VV同源重组,产生了编码靶向T细胞免疫球蛋白和ITIM结构域(TIGIT)的单链抗体片段(scFv)的工程化VV-scFv-TIGIT。在几种皮下和腹水肿瘤模型中探索了VV-scFv-TIGIT的抗肿瘤功效。还研究了VV-scFv-TIGIT与程序性细胞死亡1(PD-1)或淋巴细胞活化基因3(LAG-3)阻断联合的抗肿瘤功效。结果:VV-scFv-TIGIT在肿瘤细胞中有效复制并裂解它们,并促使感染的肿瘤细胞分泌功能性scFv-TIGIT。与对照VV相比,在几种小鼠皮下肿瘤模型中瘤内注射VV-scFv-TIGIT显示出优越的抗肿瘤功效,伴随更多T细胞浸润和更高程度的CD8+T细胞活化。在小鼠恶性腹水模型中腹腔注射VV-scFv-TIGIT也显著改善了T细胞浸润和CD8+T细胞活化,导致超过90%的荷瘤小鼠被治愈。此外,VV-scFv-TIGIT诱导的抗肿瘤免疫反应依赖于CD8+T细胞,这些细胞介导了长期的免疫记忆和对同一肿瘤的系统性抗肿瘤免疫。最后,额外联合PD-1或LAG-3阻断进一步增强了VV-scFv-TIGIT的抗肿瘤功效,提高了荷瘤小鼠的完全缓解率。结论:使用工程化的VV-scFv-TIGIT进行溶瘤病毒治疗是一种有效的癌症免疫治疗策略。给予VV-scFv-TIGIT导致抑制性肿瘤微环境从“冷”到“热”状态的深刻重塑。VV-scFv-TIGIT还与PD-1或LAG-3阻断协同作用,实现对VV或免疫检查点阻断单药治疗反应不佳的肿瘤的完全缓解。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
本研究旨在探讨通过基因工程将靶向TIGIT的单链抗体片段(scFv-TIGIT)武装到溶瘤痘苗病毒(VV)中,能否增强其抗肿瘤免疫疗效,并评估与PD-1或LAG-3阻断联合治疗的效果。
核心机制
VV-scFv-TIGIT通过瘤内或腹腔注射,在肿瘤局部表达并分泌scFv-TIGIT,阻断TIGIT与其配体PVR的结合,从而解除免疫抑制,促进CD8+T细胞浸润和活化,将“冷”肿瘤微环境重塑为“热”状态,并诱导长期的肿瘤特异性免疫记忆和系统性抗肿瘤免疫。
主要证据
体外实验证明VV-scFv-TIGIT能够复制并裂解肿瘤细胞,分泌的scFv-TIGIT能结合TIGIT并阻断PVR结合。体内实验表明,在多个皮下和腹水肿瘤模型中,VV-scFv-TIGIT显著抑制肿瘤生长、延长生存期,增加CD8+T细胞浸润和活化(如CD107A、IFN-γ、TNF-α、granzyme B表达升高)。CD8+T细胞耗竭完全消除了其抗肿瘤效果,而NK细胞耗竭无显著影响。联合PD-1或LAG-3阻断进一步提高完全缓解率。
研究意义
本研究首次证明将抗TIGIT的scFv武装到溶瘤VV上能显著增强其抗肿瘤免疫疗效,且与PD-1或LAG-3阻断具有协同作用,为溶瘤病毒联合免疫检查点阻断的癌症免疫治疗策略提供了新的思路和实验依据。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

构建和表征重组溶瘤痘苗病毒VV-scFv-TIGIT

通过同源重组将编码scFv-TIGIT的基因插入VV基因组,并验证重组病毒能表达和分泌功能性scFv-TIGIT,且不影响病毒的复制和溶瘤能力。

将合成的scFv-TIGIT基因片段克隆至穿梭质粒pVV-Control,获得pVV-scFv-TIGIT。将pVV-scFv-TIGIT转染至感染WR-VV的HEK293细胞,经同源重组产生VV-scFv-TIGIT。通过Western blot检测分泌的scFv-TIGIT,ELISA和荧光素酶实验检测其结合和阻断活性,结晶紫染色和MTT/CCK8法及TCID50法检测溶瘤活性和复制能力。

2

皮下肿瘤模型中评估抗肿瘤疗效

评估瘤内注射VV-scFv-TIGIT对多种皮下肿瘤模型(4T1、CT26、H22、MC38)的肿瘤生长和生存期的影响,并与对照病毒和PBS比较。

在免疫活性小鼠(BALB/c或C57BL/6)右胁皮下接种肿瘤细胞,待肿瘤体积达到约50或100 mm3时,随机分组,瘤内注射VV-scFv-TIGIT、VV-Control或PBS。每2天测量肿瘤体积和体重,肿瘤体积达2000 mm3时处死小鼠。

3

肿瘤微环境中免疫细胞浸润和激活分析

分析瘤内注射后肿瘤微环境中免疫细胞亚群(特别是CD8+T细胞)的浸润和激活状态,以及免疫检查点分子的表达。

在CT26皮下模型中,治疗后获取肿瘤组织,制备单细胞悬液,通过流式细胞术检测CD45+、CD3+、CD4+、CD8+、NK、NKT细胞比例及CD8+T细胞上TIGIT、PD-1、TIM-3、LAG-3和CD107A的表达,并通过免疫组化验证CD8+T细胞浸润。

4

腹水肿瘤模型中评估抗肿瘤疗效和免疫重塑

评估腹腔注射VV-scFv-TIGIT对H22腹水瘤模型小鼠的治疗效果,并动态监测腹水中肿瘤细胞和免疫细胞的变化及细胞因子水平。

将H22细胞腹腔注射建立腹水模型,待腹水形成后随机分组,腹腔注射VV-scFv-TIGIT、VV-Control或PBS。通过腹腔穿刺获取腹水细胞,流式检测肿瘤细胞和免疫细胞比例,ELISA检测IFN-γ、IL-2、IL-6、IL-10水平,并绘制生存曲线。

5

CD8+T细胞和NK细胞耗竭实验

确定VV-scFv-TIGIT的抗肿瘤免疫是否依赖于CD8+T细胞或NK细胞。

在H22腹水模型中,分别腹腔注射抗CD8α或抗NK1.1抗体以耗竭CD8+T细胞或NK细胞,流式验证耗竭效果,然后观察VV-scFv-TIGIT治疗对肿瘤进展和生存的影响,并检测腹水中细胞因子水平。

6

免疫记忆和系统性抗肿瘤免疫评估

评估VV-scFv-TIGIT治疗痊愈的小鼠是否建立长期的肿瘤特异性免疫记忆,并能否产生针对远处皮下肿瘤的系统性抗肿瘤免疫。

将H22治疗痊愈的小鼠再次腹腔和皮下接种H22细胞,以及皮下接种无关肿瘤MC38,观察肿瘤形成和生存。同时,通过流式检测记忆T细胞亚群(CD62L、CD44),并分离脾细胞与H22细胞共培养,检测IFN-γ和IL-2产生。建立H22皮下和腹腔双肿瘤模型,腹腔注射VV-scFv-TIGIT,观察皮下肿瘤的消退。

7

联合PD-1或LAG-3阻断治疗

评估VV-scFv-TIGIT与抗PD-1或抗LAG-3抗体联合使用是否能进一步增强抗肿瘤疗效。

在MC38和CT26皮下模型中,瘤内注射VV-scFv-TIGIT结合腹腔注射抗PD-1抗体(αPD-1)或抗LAG-3抗体(αLAG-3),监测肿瘤体积和生存期,并记录完全缓解和部分缓解。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
杜氏改良Eagle培养基Gibco11965092
RPMI 1640培养基Gibco11875093
胎牛血清Gibco16000044
无血清培养基BasalmediaH740KJ
jetPRIME转染试剂Polyplus-transfection114-15
黄嘌呤Sangon BiotechA601197
霉酚酸SangonA600640
次黄嘌呤SangonA500336
2×上样缓冲液BeyotimeP0015
PVDF膜Merck MilliporeK5MA6539B
小鼠抗HA标签抗体GenScriptA01244
HRP标记的山羊抗小鼠IgG (H+L)BeyotimeA0216
增强型化学发光试剂盒FDbioFD8000
Multiple Tag融合蛋白GenScriptM0101
重组小鼠TIGIT蛋白Sino Biological50939-M38H
QUANTI-Luc底物InvivoGenrep-qlc1
结晶紫溶液BeyotimeC0121
MTT溶液SolarbioIM0280
CCK-8溶液BeyotimeC0037
AceQ Universal SYBR qPCR预混液VazymeQ511
抗小鼠CD8α抗体BioXCellBP0117
抗小鼠NK1.1抗体BioXCellBP0036
抗小鼠PD-1抗体BioXCellBE0146
抗小鼠LAG-3抗体BioXCellBE0174
PE抗小鼠TIGIT抗体BioLegend142104
PE抗小鼠PD-1抗体BioLegend135206
PE抗小鼠TIM-3抗体BioLegend134004
PE抗小鼠LAG-3抗体BioLegend125208
FITC抗小鼠CD107a抗体BioLegend121606
PE抗小鼠/大鼠TNF-α抗体BioLegend506306
PE抗人/小鼠颗粒酶B抗体BioLegend396406
PE大鼠IgG2b同型对照BioLegend400607
FITC抗小鼠NK1.1抗体eBioscience11-5941-82
胶原酶IVSigma-AldrichC4-22-1G
70µm尼龙滤网JetbiofilCSS013070
1×破膜缓冲液eBioscience00-8333-56
IFN-γ ELISA检测试剂盒BioLegend430801
IL-2 ELISA检测试剂盒BioLegend431001
IL-6 ELISA检测试剂盒BioLegend431301
IL-10 ELISA检测试剂盒BioLegend431411
兔抗小鼠CD8α抗体Abcamab217344
HRP标记的山羊抗兔IgG二抗ServicebioG1213
DAB底物ServicebioG1212-2

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
病毒构建
scFv-TIGIT基因序列(VH和VL)来源(专利US20090258013A1);同源重组使用的病毒株(WR-VV);转染试剂jetPRIME;筛选药物浓度(黄嘌呤250 µg/mL、霉酚酸25 µg/mL、次黄嘌呤15 µg/mL)
阅读提示:Materials and methods: Construction of recombinant oncolytic VV; 图1A
体外溶瘤和复制
肿瘤细胞系(B16/F10, 4T1, MC38, CT26, H22);MOI范围(0, 0.1, 1, 5, 10);作用时间(72小时);检测方法(结晶紫、MTT、CCK8、TCID50、qPCR)
阅读提示:Materials and methods: Crystal violet staining, MTT assay, CCK8 assay, Viral replication; 图1G-I
皮下肿瘤模型
肿瘤细胞系和接种数量(文中未明确说明接种数量);肿瘤接种部位(右胁);治疗起始肿瘤体积(约50或100 mm3);给药途径(瘤内);病毒剂量和处理方案(文中未明确说明病毒剂量和注射次数);肿瘤体积测量频率(每2天)
阅读提示:Materials and methods: Animal experiments; 图2A, B
腹水肿瘤模型
H22细胞接种数量(文中未明确说明);治疗起始时间(腹水形成后);给药途径(腹腔);病毒剂量和处理方案(文中未明确说明);腹水采集方法(穿刺);流式分析时间点(第二次治疗后2天)
阅读提示:Materials and methods: Animal experiments; 图4A, B
免疫细胞分析
抗体克隆和荧光标记(如CD45-APC, CD3-FITC/PE, CD4-FITC/PE, CD8-PerCP-Cy5.5, CD49b-PE, TIGIT-PE, PD-1-PE, TIM-3-PE, LAG-3-PE, CD107a-FITC, TNF-α-PE, granzyme B-PE, CD62L-FITC, CD44-PE);染色时间(15分钟,RT);固定(4% PFA);破膜缓冲液;流式细胞仪(FACS Calibur)
阅读提示:Materials and methods: Extracellular and intracellular staining and flow cytometry
细胞因子检测
ELISA试剂盒(IFN-γ, IL-2, IL-6, IL-10);样品处理(离心600g 5min);检测方法遵循制造方案
阅读提示:Materials and methods: Measurement of cytokines
耗竭实验
耗竭抗体(抗CD8α YTS 169.4,抗NK1.1 PK136)剂量(500 µg/只);注射途径(腹腔);耗竭验证(流式)
阅读提示:Materials and methods: Animal experiments; 图5A-C
联合治疗
抗PD-1抗体剂量(200 µg/只)、给药计划(从病毒治疗开始每2天一次,共6-7次);抗LAG-3抗体剂量(200 µg/只)、给药计划(首次病毒注射后2天开始,每4天一次,共3次)
阅读提示:Materials and methods: Animal experiments; 图7A, E
统计方法
使用的软件(Prism 8.2.1);组间比较方法(方差分析);生存分析(Kaplan-Meier和Log-Rank检验);显著性水平(p<0.05)
阅读提示:Materials and methods: Statistical analyses