重组溶瘤痘苗病毒的构建与表征
构建编码全抗TIGIT单克隆抗体的重组VV并验证其表达和抗体结合能力。
通过同源重组将编码抗TIGIT抗体的基因插入VV的TK位点,经GPT筛选和空斑纯化获得重组病毒;感染多种肿瘤细胞检测α-TIGIT的分泌和结合活性。
Enhanced antitumor efficacy of a novel oncolytic vaccinia virus encoding a fully monoclonal antibody against T-cell immunoglobulin and ITIM domain (TIGIT).
包含体外病毒复制与溶瘤实验、皮下及腹水肿瘤模型、CD8+ T细胞耗竭实验、免疫记忆再挑战实验及流式、ELISA、qPCR等多层级验证。
4T1小鼠乳腺癌皮下模型 MC38小鼠结肠癌皮下模型 CT26小鼠结肠癌皮下模型 H22小鼠肝细胞癌腹水模型
重组病毒构建:VV-α-TIGIT通过同源重组插入全抗TIGIT单抗基因至TK位点,经GPT筛选和空斑纯化获得。 体内给药方案:皮下模型采用瘤内注射1×10^7 PFU病毒,每隔2天一次,共3次;腹水模型采用腹腔注射相同剂量和频率。 CD8+ T细胞耗竭:腹腔注射500ug抗小鼠CD8α InVivoMAb(Clone YTS 169.4)以验证CD8+ T细胞依赖性。 检测指标:通过荧光素酶活性定量α-TIGIT表达,通过TCID50测定病毒滴度,通过流式细胞术分析免疫细胞比例。
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
构建编码全抗TIGIT单克隆抗体的重组VV并验证其表达和抗体结合能力。
通过同源重组将编码抗TIGIT抗体的基因插入VV的TK位点,经GPT筛选和空斑纯化获得重组病毒;感染多种肿瘤细胞检测α-TIGIT的分泌和结合活性。
评估重组病毒的溶瘤活性和复制能力是否受外源基因影响。
使用MTT、CCK8和结晶紫染色法评估病毒对多种肿瘤细胞的杀伤作用;通过TCID50法测定病毒在不同时间点的复制曲线。
比较VV-α-TIGIT与对照病毒在皮下肿瘤模型中的治疗作用。
在4T1、MC38和CT26皮下瘤模型中,瘤内注射PBS、VV-Control或VV-α-TIGIT,监测肿瘤体积和生存期;并在CT26模型中检测CD8+ T细胞浸润、微血管密度和病毒分布。
评估VV-α-TIGIT在腹水模型中的治疗作用及对免疫细胞的影响。
在H22腹水瘤模型中,腹腔注射病毒,通过流式细胞术分析腹水中肿瘤细胞和淋巴细胞亚群,检测α-TIGIT水平、IFN-γ浓度和相关细胞因子mRNA表达。
证明VV-α-TIGIT的抗肿瘤活性依赖于CD8+ T细胞。
在H22腹水模型中,分别使用抗CD8α或抗NK1.1抗体耗竭相应细胞,观察对生存期和肿瘤细胞比例的影响。
评估治愈小鼠是否产生长期肿瘤特异性免疫记忆。
对VV-α-TIGIT治愈的H22小鼠,先后两次腹腔再接种H22细胞,一次皮下接种H22细胞,一次皮下接种MC38细胞,观察肿瘤形成和生存。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | 达尔伯克改良伊格尔培养基 | Gibco-Thermo Fisher Scientific | 11965092 |
| RPMI 1640培养基 | Gibco | 11875093 | |
| 胎牛血清 | Gibco | 16000044 | |
| 病毒构建 | jetPEI转染试剂 | Polyplus-transfection | 101-10N |
| 病毒筛选 | 霉酚酸 | Sangon Biotech | A600640 |
| 黄嘌呤 | Sangon Biotech | A601197 | |
| 次黄嘌呤 | Sangon Biotech | A500336 | |
| 抗体定量 | QUANTI-Luc荧光素酶底物 | InvivoGen | rep-qlc1 |
| 抗体结合检测 | 重组TIGIT蛋白 | Sino Biological | 50939-M38H |
| 细胞活力检测 | MTT试剂 | Solarbio | IM0280 |
| CCK-8溶液 | Beyotime | C0037 | |
| 结晶紫溶液 | Beyotime | C0121 | |
| 流式细胞术 | 小鼠PVR/CD155抗体(PE) | Biolegend | 131507 |
| 小鼠PD-L1抗体(PE) | Biolegend | 124308 | |
| 小鼠CD45抗体(APC) | BD | 559864 | |
| 小鼠CD3抗体(FITC或PE) | Biolegend | 100204 or 100206 | |
| 小鼠CD8抗体(PerCP-Cy5.5) | BD | 551162 | |
| 小鼠CD49b抗体(PerCP-Cy5.5) | Biolegend | 103520 | |
| 小鼠NK1.1抗体(FITC) | Ebioscience | 11-5941-82 | |
| 小鼠TIGIT抗体(PE) | Biolegend | 142104 | |
| ELISA | ELISA MAX标准试剂盒 | Biolegend | 430801 |
| qPCR | TRIzol试剂 | Invitrogen-Thermo Fisher Scientific | 15596026 |
| HiScript III第一链cDNA合成试剂盒 | Vazyme | R312 | |
| AceQ通用SYBR qPCR预混液 | Vazyme | Q511 | |
| ViiA 7实时荧光定量PCR仪 | Applied Biosystems-Thermo Fisher Scientific | -- | |
| 组织学 | 小鼠CD31抗体 | Abcam | ab182981 |
| 小鼠CD8抗体 | Abcam | ab217344 | |
| HRP标记的山羊抗兔二抗 | Abcam | ab205718 | |
| 流式细胞术 | FACS Caliber流式细胞仪 | BD Biosciences | -- |
| 细胞活力检测 | 酶标仪 | Molecular Devices | SpectraMax M3 |
| 细胞培养 | 磁力搅拌培养瓶 | Jetbiofil | TCB002002 |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 重组病毒构建 | 同源重组所用穿梭质粒、转染试剂、筛选药物(MPA、黄嘌呤、次黄嘌呤)的浓度,以及病毒纯化方法(GPT筛选和空斑纯化) 阅读提示:Methods 2.2 节 |
| 体外抗TIGIT表达和结合 | 感染MOI(1),感染时间(24小时),荧光素酶活性检测方法,ELISA中重组TIGIT蛋白包被浓度(10 μg/ml) 阅读提示:Methods 2.3 节,图1B-D |
| 体外溶瘤和复制 | MTT/CCK8检测的细胞密度、MOI、时间(48/72小时);复制测定MOI=0.1,时间点(24-96小时) 阅读提示:Methods 2.4-2.6 节,图2 |
| 皮下肿瘤模型 | 细胞接种数量(4T1: 2×10^5;MC38: 2×10^6;CT26: 5×10^5),病毒剂量(1×10^7 PFU),注射途径(瘤内)和频率(每2天一次共3次) 阅读提示:Methods 2.7 节,图4A, 5A, 5E |
| 腹水肿瘤模型 | H22细胞接种量(5×10^6),病毒给药途径(腹腔)和剂量(1×10^7 PFU),以及分析时间点 阅读提示:Methods 2.7 节,图6A, S5 |
| CD8+ T细胞和NK细胞耗竭 | 耗竭抗体(抗CD8α克隆YTS 169.4;抗NK1.1克隆PK136)的剂量(500 μg)和给药时间(肿瘤接种后3天) 阅读提示:Methods 2.7 节,图7A |
| 免疫记忆再挑战 | 再接种的H22和MC38细胞数量、接种途径(腹腔或皮下)和时间点 阅读提示:Methods 2.7 节,图8A |