自噬机制因子对HCV和SARS-CoV-2复制细胞器形成的贡献

Contribution of autophagy machinery factors to HCV and SARS-CoV-2 replication organelle formation.

作者信息Woan-Ing Twu, Ji-Young Lee, Heeyoung Kim, Vibhu Prasad, Berati Cerikan, Uta Haselmann, Keisuke Tabata, Ralf Bartenschlager
PMID34788596
期刊Cell Rep
发布时间2021-11-23
DOI10.1016/j.celrep.2021.110049

实验完整度

高

包含ATG5/ATG16L1敲除、药物抑制、siRNA敲低、PI3P生物传感器、透射电镜和关联光电镜等多层级验证。

主要模型

Huh7-Lunet/T7细胞 Huh7-Lunet/T7/ACE2细胞 A549/ACE2细胞 Calu-3细胞

重点核对

HCV使用JcR2a报告病毒(MOI 0.1),SARS-CoV-2使用Bavpat1/2020分离株(MOI 1) PIK-III浓度:HCV EC50约320 nM,SARS-CoV-2 EC50约170 nM ATG5和ATG16L1敲除通过CRISPR-Cas9在Huh7-Lunet/T7细胞中实现 siRNA敲低VPS34、Beclin 1、DFCP1使用Lipofectamine RNAiMAX,两次转染间隔24 h

摘要

Twu等人研究了自噬机制组分在HCV和SARS-CoV-2复制中的作用。常规巨自噬对这两种病毒的复制都不是必需的。然而,参与自噬体形成的因子,包括III类PI3K复合物的组分,有助于病毒复制。它们很可能促进膜性复制细胞器的形成。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
自噬机制因子是否以及如何参与HCV和SARS-CoV-2复制细胞器的形成?
核心机制
HCV和SARS-CoV-2利用自噬体形成早期的因子,特别是III类PI3K复合物产生PI3P,招募DFCP1,促进DMV形成,而常规巨自噬(ATG5-12/16L1依赖)并非必需。
主要证据
ATG5/ATG16L1敲除不影响病毒复制;PIK-III抑制或VPS34/Beclin 1敲低降低复制和DMV形成;PI3P传感器显示感染细胞中PI3P增加;DFCP1敲低降低复制和DMV形成。
研究意义
揭示了进化上不同的病毒趋同利用宿主自噬机制因子,可能为开发广谱抗病毒药物提供靶点。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

验证巨自噬非必需

确定ATG5-12/16L1依赖的巨自噬是否对HCV和SARS-CoV-2复制必需

在Huh7-Lunet/T7细胞中通过CRISPR-Cas9敲除ATG5和ATG16L1,验证自噬抑制,并检测病毒复制。

2

抑制III类PI3K活性

测试III类PI3K活性对HCV和SARS-CoV-2复制的影响

使用VPS34特异性抑制剂PIK-III处理感染细胞,或通过siRNA敲低VPS34/Beclin 1,测量病毒复制。

3

检测PI3P产生

确定HCV和SARS-CoV-2感染是否增强PI3P产生

使用GFP-DFCP1生物传感器稳定表达细胞,感染或表达病毒蛋白,通过荧光显微镜计数DFCP1斑点。

4

评估DMV形成

确定PI3P和DFCP1是否影响病毒蛋白诱导的DMV形成

在药物处理或DFCP1敲低后,利用透射电镜或关联光电镜计数DMV。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
Atg5 (D5F5U)兔单克隆抗体Cell Signaling Technology12994
Atg16L1 (D6D5)兔单克隆抗体Cell Signaling Technology8089
抗LC3多克隆抗体MBL InternationalPM036
抗PI4P纯化IgM抗体Echelon BiosciencesZ-P004
III类PI3激酶抗体 (VPS34)Cell Signaling Technology3811
Beclin-1抗体Cell Signaling Technology3738
SARS-CoV-2 N蛋白抗体Sino Biological40143-MM05
抗SARS Nsp3抗体Abcamab181620
小鼠单克隆抗NS5A抗体 (9E10)Gift from C. M. RiceN/A
抗HA单克隆抗体Sigma AldrichH3663
ZFYVE1 (DFCP1)多克隆抗体Thermo Fisher ScientificPA5-96710
GAPDH (D16H11) XP®兔单克隆抗体Cell Signaling Technology5174S
山羊抗小鼠HRP多克隆抗体Sigma AldrichA0168
山羊抗兔HRP多克隆抗体Sigma AldrichSAB3700852
Alexa Fluor® 488标记驴抗兔二抗Thermo Fisher ScientificA21206
Alexa Fluor® 488标记驴抗小鼠二抗Thermo Fisher ScientificA21202
Alexa Fluor® 568标记驴抗小鼠二抗Thermo Fisher ScientificAA10037
Alexa Fluor® 488标记山羊抗小鼠IgM二抗Thermo Fisher ScientificA21042
DAPIThermo Fisher ScientificD1306
达卡他韦MedChemExpressHY-10466
巴弗洛霉素A1Sigma AldrichB1793
PI4KA-G1Gift from V. LohmannN/A
PIK-IIICayman Chemical17002
瑞德西韦MedChemExpressHY-104077
Earle平衡盐溶液Sigma AldrichE2888
CellTiter-Glo®发光细胞活力检测试剂盒PromegaG7571
TransIT®-LT1转染试剂Mirus BiologyMIR2306
Lipofectamine® RNAiMAX转染试剂Thermo Fisher Scientific13778
Gateway LR Clonase II酶混合物Thermo Fisher Scientific11791100
In-Fusion® HD克隆试剂盒Clontech Laboratories639650
NucleoSpin RNA提取试剂盒Machery-Nagel740955
High-Capacity cDNA逆转录试剂盒Thermo Fisher Scientific4368814
iTaq Universal SYBR green预混液BioRad1725121

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
细胞培养
细胞系(Huh7-Lunet/T7,A549/ACE2等),培养基(DMEM cplt),抗生素(G418、zeocin),饥饿处理(EBSS 2 h)
阅读提示:STAR Methods, Cell lines and culture conditions
ATG敲除
sgRNA靶序列,筛选抗生素浓度(嘌呤霉素3 μg/ml),敲除验证(Western blot)
阅读提示:STAR Methods, Lentivirus production and establishment of stable cell lines; 图1C
药物处理
PIK-III浓度(HCV 1 μM;SARS-CoV-2 1 μM),处理时间(HCV 2 h;SARS-CoV-2 20 h),DMSO对照
阅读提示:图3, 图4; STAR Methods, SARS-CoV-2-replication assay
siRNA敲低
siRNA序列,转染试剂(Lipofectamine RNAiMAX),转染次数(两次),间隔(24 h)
阅读提示:STAR Methods, siRNA-based knockdown
病毒复制检测
HCV MOI 0.1,SARS-CoV-2 MOI 1,检测时间点(24 h),qRT-PCR引物序列(ORF1,HPRT)
阅读提示:图1, 图2; STAR Methods, HCV replication assay, qRT-PCR-based SARS-CoV-2-replication assay
DMV定量
TEM样品制备,分析面积(100 μm²),细胞数量(DMSO 13-15,PIK-III 46-49)
阅读提示:图4, 图6; STAR Methods, Transmission electron microscopy