验证巨自噬非必需
确定ATG5-12/16L1依赖的巨自噬是否对HCV和SARS-CoV-2复制必需
在Huh7-Lunet/T7细胞中通过CRISPR-Cas9敲除ATG5和ATG16L1,验证自噬抑制,并检测病毒复制。
Contribution of autophagy machinery factors to HCV and SARS-CoV-2 replication organelle formation.
包含ATG5/ATG16L1敲除、药物抑制、siRNA敲低、PI3P生物传感器、透射电镜和关联光电镜等多层级验证。
Huh7-Lunet/T7细胞 Huh7-Lunet/T7/ACE2细胞 A549/ACE2细胞 Calu-3细胞
HCV使用JcR2a报告病毒(MOI 0.1),SARS-CoV-2使用Bavpat1/2020分离株(MOI 1) PIK-III浓度:HCV EC50约320 nM,SARS-CoV-2 EC50约170 nM ATG5和ATG16L1敲除通过CRISPR-Cas9在Huh7-Lunet/T7细胞中实现 siRNA敲低VPS34、Beclin 1、DFCP1使用Lipofectamine RNAiMAX,两次转染间隔24 h
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
确定ATG5-12/16L1依赖的巨自噬是否对HCV和SARS-CoV-2复制必需
在Huh7-Lunet/T7细胞中通过CRISPR-Cas9敲除ATG5和ATG16L1,验证自噬抑制,并检测病毒复制。
测试III类PI3K活性对HCV和SARS-CoV-2复制的影响
使用VPS34特异性抑制剂PIK-III处理感染细胞,或通过siRNA敲低VPS34/Beclin 1,测量病毒复制。
确定HCV和SARS-CoV-2感染是否增强PI3P产生
使用GFP-DFCP1生物传感器稳定表达细胞,感染或表达病毒蛋白,通过荧光显微镜计数DFCP1斑点。
确定PI3P和DFCP1是否影响病毒蛋白诱导的DMV形成
在药物处理或DFCP1敲低后,利用透射电镜或关联光电镜计数DMV。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| Western blot | Atg5 (D5F5U)兔单克隆抗体 | Cell Signaling Technology | 12994 |
| Atg16L1 (D6D5)兔单克隆抗体 | Cell Signaling Technology | 8089 | |
| 抗LC3多克隆抗体 | MBL International | PM036 | |
| 免疫荧光 | 抗PI4P纯化IgM抗体 | Echelon Biosciences | Z-P004 |
| Western blot | III类PI3激酶抗体 (VPS34) | Cell Signaling Technology | 3811 |
| Beclin-1抗体 | Cell Signaling Technology | 3738 | |
| 免疫染色 | SARS-CoV-2 N蛋白抗体 | Sino Biological | 40143-MM05 |
| 免疫荧光 | 抗SARS Nsp3抗体 | Abcam | ab181620 |
| Western blot | 小鼠单克隆抗NS5A抗体 (9E10) | Gift from C. M. Rice | N/A |
| 抗HA单克隆抗体 | Sigma Aldrich | H3663 | |
| ZFYVE1 (DFCP1)多克隆抗体 | Thermo Fisher Scientific | PA5-96710 | |
| GAPDH (D16H11) XP®兔单克隆抗体 | Cell Signaling Technology | 5174S | |
| 山羊抗小鼠HRP多克隆抗体 | Sigma Aldrich | A0168 | |
| 山羊抗兔HRP多克隆抗体 | Sigma Aldrich | SAB3700852 | |
| 免疫荧光 | Alexa Fluor® 488标记驴抗兔二抗 | Thermo Fisher Scientific | A21206 |
| Alexa Fluor® 488标记驴抗小鼠二抗 | Thermo Fisher Scientific | A21202 | |
| Alexa Fluor® 568标记驴抗小鼠二抗 | Thermo Fisher Scientific | AA10037 | |
| Alexa Fluor® 488标记山羊抗小鼠IgM二抗 | Thermo Fisher Scientific | A21042 | |
| DAPI | Thermo Fisher Scientific | D1306 | |
| 药物处理 | 达卡他韦 | MedChemExpress | HY-10466 |
| 巴弗洛霉素A1 | Sigma Aldrich | B1793 | |
| PI4KA-G1 | Gift from V. Lohmann | N/A | |
| PIK-III | Cayman Chemical | 17002 | |
| 瑞德西韦 | MedChemExpress | HY-104077 | |
| 细胞培养 | Earle平衡盐溶液 | Sigma Aldrich | E2888 |
| 细胞活力检测 | CellTiter-Glo®发光细胞活力检测试剂盒 | Promega | G7571 |
| 质粒转染 | TransIT®-LT1转染试剂 | Mirus Biology | MIR2306 |
| siRNA转染 | Lipofectamine® RNAiMAX转染试剂 | Thermo Fisher Scientific | 13778 |
| 分子克隆 | Gateway LR Clonase II酶混合物 | Thermo Fisher Scientific | 11791100 |
| In-Fusion® HD克隆试剂盒 | Clontech Laboratories | 639650 | |
| RNA提取 | NucleoSpin RNA提取试剂盒 | Machery-Nagel | 740955 |
| cDNA合成 | High-Capacity cDNA逆转录试剂盒 | Thermo Fisher Scientific | 4368814 |
| qPCR | iTaq Universal SYBR green预混液 | BioRad | 1725121 |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 细胞培养 | 细胞系(Huh7-Lunet/T7,A549/ACE2等),培养基(DMEM cplt),抗生素(G418、zeocin),饥饿处理(EBSS 2 h) 阅读提示:STAR Methods, Cell lines and culture conditions |
| ATG敲除 | sgRNA靶序列,筛选抗生素浓度(嘌呤霉素3 μg/ml),敲除验证(Western blot) 阅读提示:STAR Methods, Lentivirus production and establishment of stable cell lines; 图1C |
| 药物处理 | PIK-III浓度(HCV 1 μM;SARS-CoV-2 1 μM),处理时间(HCV 2 h;SARS-CoV-2 20 h),DMSO对照 阅读提示:图3, 图4; STAR Methods, SARS-CoV-2-replication assay |
| siRNA敲低 | siRNA序列,转染试剂(Lipofectamine RNAiMAX),转染次数(两次),间隔(24 h) 阅读提示:STAR Methods, siRNA-based knockdown |
| 病毒复制检测 | HCV MOI 0.1,SARS-CoV-2 MOI 1,检测时间点(24 h),qRT-PCR引物序列(ORF1,HPRT) 阅读提示:图1, 图2; STAR Methods, HCV replication assay, qRT-PCR-based SARS-CoV-2-replication assay |
| DMV定量 | TEM样品制备,分析面积(100 μm²),细胞数量(DMSO 13-15,PIK-III 46-49) 阅读提示:图4, 图6; STAR Methods, Transmission electron microscopy |