分离和表征年轻供体成纤维细胞的条件培养基组分
验证sEVs是否比可溶性组分或大EVs更有效地改善衰老标志物。
通过差速超速离心分离CM的SF、lEV和sEV组分,并用NTA和蛋白标志物(ALIX、TSG101)进行表征。
Small Extracellular Vesicles Have GST Activity and Ameliorate Senescence-Related Tissue Damage
包含体外细胞模型(人原代成纤维细胞、HGPS细胞)、体内小鼠模型(老年小鼠)及患者样本(HGPS患者来源),并进行GST活性、GSH/GSSG比值、ROS和脂质过氧化等机制验证。
人原代成纤维细胞(年轻、年老、HGPS供体) HFFF2细胞(iC/iRAS) C57BL/6老年小鼠
sEV-Ys处理浓度与时间(如20 μg sEV-Ys,腹腔注射,每周两次,持续3周) BSO浓度(20和40 μM)抑制GSH合成 GSTM2重组蛋白(rGSTM2)转染sEV的效率 4-HNE处理浓度(1.25, 2.5, 5 μM) 对照组设置(PBS、FBS 10%、sEV-Os)
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
验证sEVs是否比可溶性组分或大EVs更有效地改善衰老标志物。
通过差速超速离心分离CM的SF、lEV和sEV组分,并用NTA和蛋白标志物(ALIX、TSG101)进行表征。
确定sEV-Ys是否能改善年老供体细胞和HGPS细胞的衰老表型。
处理年老和HGPS成纤维细胞,检测BrdU掺入、p16、p21、SA-β-Gal和IL-8等标志物。
探讨sEV-Ys的改善效应能否传递到次级和三级衰老细胞。
用iCsEVs或RASsEVs处理iC/iRAS细胞,检测SASP和细胞周期抑制因子mRNA水平。
寻找sEV-Ys中可能介导其抗氧化功能的候选蛋白。
利用前期蛋白质组学数据,分析iCsEVs中富集的蛋白,并通过免疫印迹验证GSTM2富集。
证明sEV-Ys具有内在GST活性,并通过增加GSH/GSSG比例介导改善作用。
检测sEV-Ys和sEV-Os的GST活性,并用BSO抑制GSH合成,观察对细胞增殖和SA-β-Gal的影响。
确认GSTM2是否部分介导sEV-Ys的抗衰老作用。
过表达myc-Gstm2在iRAS细胞中,或将rGSTM2转染至sEV-Os,处理年老细胞,评估衰老标志物。
评估全身给予sEV-Ys是否能改善老年小鼠多组织的衰老标志物。
腹腔注射20 μg sEV-Ys两周或三周,通过SA-β-Gal染色、qPCR、ELISA等检测肝、肾、肺、BAT和血清中的衰老标志物。
确认sEV-Ys在体内是否通过相同的抗氧化机制发挥作用。
检测老年小鼠肝、肾、血清中的ROS水平、GST活性和GSH相关基因表达。
评估sEV-Ys是否能降低体内外的脂质过氧化。
测定肝、血清中MDA和4-HNE水平,并用4-HNE诱导细胞衰老验证sEV-Ys的保护作用。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | 杜尔贝科改良伊格尔培养基 | -- | -- |
| 胎牛血清 | -- | -- | |
| sEV分离 | Optiprep | -- | -- |
| qPCR | TRIzol试剂 | -- | -- |
| SYBR Green PCR预混液 | -- | -- | |
| Taqman探针 | -- | -- | |
| NTA | NanoSight LM10 | Malvern Instruments | -- |
| 细胞培养 | Lipofectamine2000 | -- | -- |
| 细胞处理 | 丁硫氨酸亚砜胺 | Sigma-Aldrich | -- |
| 4-羟基壬烯醛 | Cambridge Biosciences | -- | |
| ROS检测 | 2',7'-二氯二氢荧光素二乙酸酯 | Invitrogen | -- |
| GST活性测定 | CDNB | -- | -- |
| 还原型谷胱甘肽 | -- | -- | |
| GSH/GSSG测定 | NADPH | Sigma-Aldrich | 2646-71-1 |
| 谷胱甘肽还原酶 | Roche | -- | |
| MDA测定 | 脂质过氧化检测试剂盒 | Abcam | ab118970 |
| TBARS检测试剂盒 | Canvax | CA995 | |
| SA-β-Gal染色 | C12FDG | Sigma-Aldrich | F2756 |
| 半乳糖苷酶检测试剂盒 | Canvax | CA090 | |
| ELISA | IL-6 ELISA试剂盒 | Mab Tag GmbH | mIL-6-EIA-1 |
| GM-CSF ELISA试剂盒 | Mab Tag GmbH | mGMCSF-EIA-1 | |
| 蛋白质递送 | His标签重组GSTM2蛋白 | Sino Biological | 12042-H07E |
| sEV分离 | qEV柱 | IZON | SP5 |
| 蛋白质浓缩 | Amicon Ultra-0.5超滤管 | EMD Millipore | 10088753 |
| 免疫印迹 | PVDF膜 | -- | -- |
| SuperSignal West Pico PLUS化学发光底物 | -- | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 细胞培养 | 培养基、血清浓度、细胞系来源及代次 阅读提示:STAR★Methods: Experimental Model and Subject Details |
| sEV分离 | 超速离心转速和时间、sEV纯度、粒径和蛋白标志物 阅读提示:STAR★Methods: Differential Ultracentrifugation |
| 功能实验 | sEV处理浓度、时间、对照组设置(FBS 10%、sEV-Os) 阅读提示:Results: 图1和图2及其图注 |
| 机制验证 | GST活性测定方法、GSH/GSSG测定方法、BSO浓度和预处理时间 阅读提示:STAR★Methods: GST Activity, Determination of GSH and GSSG |
| 体内实验 | 小鼠品系、年龄、性别、给药途径、剂量、频率和持续时间 阅读提示:STAR★Methods: Mice Experiments |