DPSCs的分离与鉴定
获取具有三向分化潜能的DPSCs并验证其干细胞特性。
从健康供体第三磨牙中分离DPSCs,通过流式细胞术检测间充质干细胞标志物,并通过诱导分化实验(成骨、成脂、成软骨)验证其多向分化能力。
OTUB1 Promotes Odontogenesis in Dental Pulp Stem Cells by Mediating TPM1 Deubiquitination and Activating Autophagy
包含体外细胞功能实验(过表达、敲低)、体内大鼠牙髓损伤模型、蛋白质组学、Co-IP、泛素化实验及自噬抑制等证据。
人牙髓干细胞(DPSCs) 大鼠牙髓损伤模型
DPSCs的分离与培养方法(酶消化法) OTUB1过表达和敲低的转染效率 OTUB1/TPM1相互作用的Co-IP验证 自噬抑制剂3-MA和CQ的处理条件 大鼠牙髓损伤模型的建立方法
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
获取具有三向分化潜能的DPSCs并验证其干细胞特性。
从健康供体第三磨牙中分离DPSCs,通过流式细胞术检测间充质干细胞标志物,并通过诱导分化实验(成骨、成脂、成软骨)验证其多向分化能力。
验证OTUB1对DPSCs成牙本质分化的影响。
通过慢病毒介导OTUB1过表达或siRNA敲低,检测成牙本质相关标志物(DSPP、DMP1、RUNX2、OSX)的表达、ALP活性和矿化结节形成。
筛选并验证OTUB1的底物蛋白。
通过蛋白质组学分析OTUB1敲低后差异表达蛋白,结合LC-MS/MS鉴定相互作用蛋白,并通过Co-IP、泛素化实验和蛋白质半衰期实验验证TPM1为OTUB1的直接底物。
验证OTUB1通过TPM1激活自噬进而促进成牙本质分化。
通过透射电镜观察自噬小体,检测自噬相关蛋白表达,并使用自噬抑制剂3-MA和CQ考察对OTUB1过表达促分化效应的逆转作用。
在体内验证OTUB1对牙本质再生的促进作用。
建立大鼠牙髓损伤模型,将OTUB1过表达或对照慢病毒颗粒浸渍的明胶海绵植入缺损处,2周后通过HE染色和免疫组化检测修复性牙本质形成和TPM1、DMP1表达。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | α-MEM培养基 | -- | -- |
| 胎牛血清 | -- | -- | |
| 青霉素/链霉素 | -- | -- | |
| 细胞分离 | I型胶原酶 | Sigma | -- |
| 分散酶 | Sigma | -- | |
| 成牙本质诱导 | 地塞米松 | Sigma | -- |
| 抗坏血酸 | Sigma | -- | |
| β-甘油磷酸 | Sigma | -- | |
| 染色 | 茜素红S | Oricell | -- |
| 氯化十六烷基吡啶 | -- | -- | |
| 转染 | Kileafbio CP转染试剂盒 | Kileafbio | -- |
| 聚凝胺 | -- | -- | |
| RNA提取 | TRIzol试剂 | -- | -- |
| RT-qPCR | PrimeScript逆转录试剂盒 | Vazyme | -- |
| ChamQ通用SYBR Green qPCR预混液 | Vazyme | -- | |
| qTOWER3/G PCR仪 | -- | -- | |
| Western blotting | RIPA裂解液 | Beyotime | -- |
| PMSF蛋白酶抑制剂 | -- | -- | |
| BCA蛋白定量试剂盒 | Beyotime | -- | |
| PVDF膜 | -- | -- | |
| 抗OTUB1抗体 | Abcam | -- | |
| 抗TPM1抗体 | Proteintech | -- | |
| 抗ACTA2抗体 | Proteintech | -- | |
| 抗ATP5F1B抗体 | Proteintech | -- | |
| 抗MDH2抗体 | Proteintech | -- | |
| 抗RUNX2抗体 | Proteintech | -- | |
| 抗OSX抗体 | Proteintech | -- | |
| 抗DMP1抗体 | Affinity | -- | |
| 抗DSPP抗体 | Santa Cruz Biotechnology | -- | |
| 抗GAPDH抗体 | Proteintech | -- | |
| Co-IP | rProtein A/G MagPoly磁珠 | ACE Biotechnology | -- |
| ALP染色 | NBT/BCIP底物 | Jiancheng | -- |
| ALP活性测定 | ALP活性检测试剂盒 | Beyotime | -- |
| 免疫荧光 | Triton X-100 | Beyotime | -- |
| 正常山羊血清 | -- | -- | |
| 荧光素偶联二抗 | Invitrogen | -- | |
| 蛋白质组学 | Thermo Scientific Vanquish Neo超高效液相色谱系统 | Thermo Scientific | -- |
| ES906色谱柱(150毫米) | -- | -- | |
| 动物实验 | 明胶海绵 | -- | -- |
| 玻璃离子水门汀 | -- | -- | |
| 自噬抑制 | 3-甲基腺嘌呤 | -- | -- |
| 氯喹 | -- | -- | |
| 自噬诱导 | 雷帕霉素 | -- | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 细胞分离与培养 | 细胞来源(健康年轻供体第三磨牙)、消化酶浓度(3 mg/mL I型胶原酶、4 mg/mL dispase)、消化时间(20分钟)、培养基(α-MEM含10% FBS和1%青霉素/链霉素)、培养条件(37°C、5% CO₂)、传代比例(1:3) 阅读提示:Materials and Methods: Cell isolation and culture |
| 成牙本质分化 | 诱导培养基成分(10 nM地塞米松、100 μM抗坏血酸、2 mM β-甘油磷酸)、诱导时间(14天)、染色方法(ARS) 阅读提示:Materials and Methods: Trilineage differentiation of DPSCs |
| 转染与感染 | siRNA序列(靶向OTUB1和TPM1)、转染试剂(Kileafbio CP)、慢病毒(OTUB1过表达和NC)、polybrene浓度(10 μg/mL) 阅读提示:Materials and Methods: Cell transfection and lentivirus infection |
| 蛋白质相互作用 | Co-IP抗体(OTUB1、TPM1)、磁珠(rProtein A/G MagPoly)、裂解液(0.3% Lysis/Wash Buffer) 阅读提示:Materials and Methods: Western blotting and co-immunoprecipitation (CO-IP) |
| 泛素化实验 | OTUB1敲低后检测TPM1多聚泛素化水平 阅读提示:Results: Figure 4I |
| 蛋白质半衰期测定 | CHX浓度、处理时间点(0、2、4、6小时) 阅读提示:Materials and Methods: Protein half-life assay |
| 自噬检测 | 自噬抑制剂3-MA和CQ的浓度和溶剂、TEM观察自噬小体 阅读提示:Results: Figure 6, Figure S2, Figure S3 |
| 动物实验 | 大鼠品系(SD)、年龄(5周)、性别(雌性)、手术方法(1 mm直径磨钻暴露牙髓)、载体(明胶海绵)、封闭(玻璃离子水门汀)、观察时间(2周) 阅读提示:Materials and Methods: Animal experiment |