确认复制应激下新生DNA上H3K9me3的积累
验证多种复制应激源是否诱导新生DNA上的H3K9me3沉积。
使用ChromStretch检测HU、CPT、APH和顺铂处理后EdU标记的新生DNA上的H3K9me3信号。
Replication-stress-induced chromatin loops protect fork stability
结合体外细胞模型、单分子ChromStretch、基因组Rep-ChIC/Rep-Hi-C、DNA fibre、电镜及患者肿瘤突变分析,并进行功能验证(CTCF/G9a抑制)和机制验证。
MRC5人类成纤维细胞 HCT116 CTCF-mAID2-mClover细胞 RPE1-hTERT TP53−/−shBRCA2细胞 U2OS WT和TKO细胞 HAP1细胞
MRCC5细胞用1mM HU处理1小时,诱导超过94%的复制叉停滞 G9a抑制剂UNC0642在实验前2-4小时以1µM浓度添加 CTCF耗竭:HCT116 CTCF-mAID2-mClover细胞用5-Ph-IAA处理至少2小时 DNA纤维分析:依次用10µM EdU和250µM IdU标记,后续处理包括CTCF耗竭和G9a抑制 Fork-deg-seq:用100µM BrdU标记40分钟,然后用4mM HU处理3、5或8小时
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
验证多种复制应激源是否诱导新生DNA上的H3K9me3沉积。
使用ChromStretch检测HU、CPT、APH和顺铂处理后EdU标记的新生DNA上的H3K9me3信号。
定位全基因组范围内的复制应激诱导的H3K9me3富集位点。
开发Rep-ChIC方法,结合BrdU标记新生DNA和ChIC,对H3K9me3进行基因组定位。
检查H3K9me3积累是否驱动染色质高级结构的变化。
使用PLA和Rep-Hi-C分析,比较HU处理和未处理细胞中H3K9me3相关的相互作用和三维结构。
确定复制应激是否诱导特定染色质环的形成及其依赖因素。
通过Hi-C/Rep-Hi-C数据分析,识别HU特异性环,并通过3C-qPCR、DNA-FISH验证,测试CTCF和G9a的依赖性。
测试染色质环是否保护停滞复制叉免受核酸酶降解。
使用DNA纤维分析、Fork-deg-seq和电子显微镜检测在CTCF或G9a缺失条件下,停滞叉的降解情况。
探讨环保护缺陷是否与复制应激下的突变相关。
分析HU特异性环锚点与FANCD2、γH2AX、突变负担和脆性位点的重叠。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | DMEM培养基 | Invitrogen | -- |
| Ham's F10培养基 | Invitrogen | -- | |
| DMEM/F-12培养基 | Invitrogen | -- | |
| IMDM培养基 | -- | -- | |
| 胎牛血清 | Biowest | -- | |
| 青霉素-链霉素 | Sigma-Aldrich | -- | |
| 细胞处理 | 5-苯基吲哚-3-乙酸 | MedChemExpress | HY-134653 |
| UNC0642 | MedChemExpress | -- | |
| Mirin | Sigma-Aldrich | M9948 | |
| DNA2抑制剂 | Sigma-Aldrich | SML4192 | |
| 多西环素 | -- | -- | |
| 羟基脲 | -- | -- | |
| 喜树碱 | -- | -- | |
| 阿非迪霉素 | -- | -- | |
| 顺铂 | -- | -- | |
| DNA标记 | 5-溴-2'-脱氧尿苷 | -- | -- |
| 5-乙炔基-2'-脱氧尿苷 | -- | -- | |
| 5-氯-2'-脱氧尿苷 | MP Biomedicals | -- | |
| 5-碘-2'-脱氧尿苷 | Sigma-Aldrich | -- | |
| ChIC/Rep-ChIC | ChIC/CUT&RUN检测试剂盒 | Active Motif | 53180 |
| pAG-微球菌核酸酶 | -- | -- | |
| NEBNext多重寡核苷酸(Illumina) | New England Biolabs | -- | |
| 抗BrdU抗体 | BD Pharmingen | 555627 | |
| Hi-C/Rep-Hi-C | DpnII限制酶 | NEB | -- |
| HindIII限制酶 | NEB | -- | |
| 生物素-14-dATP | Jena Bioscience | -- | |
| 生物素-14-dUTP | Jena Bioscience | -- | |
| 链霉亲和素包被磁珠 | Invitrogen | -- | |
| Ampure XP磁珠 | Beckman Coulter | -- | |
| 蛋白G磁珠 | Invitrogen | -- | |
| Covaris超声破碎仪 | Covaris | -- | |
| Illumina NovaSeq 6000测序平台 | Illumina | -- | |
| Fork-deg-seq | 生物素-14-dATP(缺口填充) | Jena Bioscience | -- |
| 链霉亲和素磁珠 | Invitrogen | -- | |
| Illumina NovaSeq 6000测序平台 | Illumina | -- | |
| TrAEL-seq | CleanCut琼脂糖 | -- | -- |
| NlaIII限制酶 | NEB | R0125 | |
| scEdU-seq | CellTrace Yellow染料 | Invitrogen | C34567 |
| CellTrace Far Red染料 | Invitrogen | C34572 | |
| Dynabeads MyOne链霉亲和素C1磁珠 | Invitrogen | 65002 | |
| Illumina NextSeq 2000测序平台 | Illumina | -- | |
| 3C-qPCR | HindIII限制酶 | NEB | -- |
| EM | 三甲基补骨脂素 | Thermo Fisher Scientific | J63226-03 |
| PvuII-HF限制酶 | NEB | R3151 | |
| 苄基二甲基烷基氯化铵 | Sigma-Aldrich | 8219440100 | |
| FEI TALOS透射电子显微镜 | FEI | -- | |
| DNA FISH | 核糖核酸酶A | -- | -- |
| uniFISH试剂 | -- | -- | |
| Western blot | NuPAGE Bis-Tris凝胶 | Novex, Life Technologies | -- |
| PVDF膜 | Immobilon, Millipore | -- | |
| 抗CTCF抗体 | -- | -- | |
| 抗GFP抗体 | Roche | 11814460001 | |
| 抗α-微管蛋白抗体 | Sigma-Aldrich | T6074 | |
| Odyssey CLx红外扫描仪 | LI-COR Biosciences | -- | |
| DNA纤维分析 | 叠氮-PEG3-生物素 | Jena Bioscience | CLK-1167-25 |
| 抗生物素抗体 | Bethyl Laboratories | A150-109A | |
| Metafer玻片扫描仪 | MetaSystems | -- | |
| ChromStretch | 抗H3K9me3抗体 | Abcam | ab317790 |
| 抗H3抗体 | Abcam | ab1791 | |
| Leica ST5共聚焦显微镜 | Leica | -- | |
| PLA | Duolink原位试剂 | Sigma-Aldrich | -- |
| 吡啶甲基叠氮-PEG4-生物素 | Jena Bioscience | -- | |
| Duolink原位PLA探针抗兔PLUS | Sigma-Aldrich | -- | |
| 抗小鼠MINUS探针 | Sigma-Aldrich | -- | |
| Duolink原位PLA连接混合液 | Sigma-Aldrich | -- | |
| Duolink原位PLA扩增混合液(红色) | Sigma-Aldrich | -- | |
| MOWIOL 4-88封片剂 | Sigma-Aldrich | -- | |
| Zeiss Axio Imager Z2显微镜 | Zeiss | -- | |
| 显微镜 | FlowJo软件 | BD | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 细胞培养和处理 | 确认细胞系、培养基、血清浓度、处理药物及其剂量(如HU浓度、UNC0642浓度、5-Ph-IAA浓度)、处理时间 阅读提示:参见Methods部分‘Cell culture, treatments and thymidine analogue incorporation’ |
| 复制应激诱导和H3K9me3检测 | 确认HU或APH处理浓度和时间(如1mM HU 1h),EdU或BrdU标记浓度和时间 阅读提示:参见主要文本图1和Extended Data Fig. 1,以及Methods中的‘Chromatin fibre analysis’和‘ChIC/Rep-ChIC’ |
| Hi-C/Rep-Hi-C | 确认BrdU脉冲标记浓度和时间(100µM 20分钟),HU处理浓度和时间(4mM 1小时),使用的限制酶(DpnII或HindIII),以及测序深度和数据处理参数(MAPQ>30) 阅读提示:参见Methods中的‘Hi-C/Rep-Hi-C’部分和Supplementary Table 1 |
| Fork-deg-seq | 确认BrdU标记时间(40分钟),HU处理浓度和时间(4mM,3-8小时),以及gap-filling和生物素标记步骤 阅读提示:参见Methods中的‘Fork-deg-seq’部分 |
| DNA纤维分析 | 确认脉冲标记顺序和时间(EdU 10µM, CldU 30µM, IdU 250µM),以及后续处理(如HU浓度和时间) 阅读提示:参见Methods中的‘DNA fibre analysis’部分 |
| 电镜分析 | 确认HU处理浓度和时间(1mM 3小时),以及DNA提取和铺展的具体条件 阅读提示:参见Methods中的‘EM analysis’部分 |