钙锶硅酸盐的牙本质再生:体外成牙本质分化、抗菌活性、免疫调节及大鼠磨牙活髓切断术

Dentine Regeneration With Calcium Strontium Silicate: In Vitro Odontogenic Differentiation, Antimicrobial Activity, Immunomodulation and In Vivo Pulpotomy in Rat Molars

作者信息Mohamed Mahmoud Abdalla, Vidhyashree Rajasekar, Heba Ahmed, Mengyu Huang, Cynthia Kar Yung Yiu
PMID42003414
发布时间2026-09
DOI10.1111/iej.70165

实验完整度

体外实验涵盖细胞活力、迁移、成牙本质基因表达、抗菌和免疫调节;体内实验包括皮下植入炎症评估和大鼠磨牙活髓切断术,有功能验证和机制验证。

主要模型

人牙髓干细胞(HDPSCs) THP-1巨噬细胞 Sprague-Dawley大鼠皮下植入模型 Sprague-Dawley大鼠磨牙活髓切断术模型

重点核对

HDPSCs来源于健康无龋第三磨牙(n=5),患者年龄25-30岁,细胞培养条件:α-MEM+10% FBS+1%青链霉素,37°C,5% CO2 材料合成:溶胶-凝胶法,Ca:Sr:Si摩尔比3:1:1.04,烧结温度1450°C,5小时 细胞活力检测:CCK-8和活/死染色,细胞接种密度10000细胞/孔(96孔板)和3×10^4细胞/孔,材料提取物处理24小时 抗菌实验:变形链球菌UA159和嗜酸乳杆菌,菌液浓度10^7 CFU/mL,厌氧培养24小时,CFU计数 体内实验:SD大鼠(10-12周龄,500-550g),皮下植入和活髓切断术,分析时间点7、14、60天和30、60天

摘要

目的:本研究评估了钙锶硅酸盐(CSR)作为一种新型活髓治疗(VPT)生物材料的体内外性能,与硅酸钙(CS)和矿物三氧化物凝聚体(MTA)相比,评估其成牙本质分化、抗菌活性、免疫调节、炎症反应和牙本质再生潜力。方法:采用溶胶-凝胶法合成CSR。体外研究中,人牙髓干细胞(HDPSCs)通过CCK-8和RT-qPCR评估细胞活力、活/死染色、跨孔迁移实验和成牙本质基因表达(ALP、DSPP、DMP-1、RUNX2)。通过菌落形成单位(CFU)计数评估对变形链球菌和嗜酸乳杆菌的抗菌活性。通过RT-qPCR评估炎症细胞因子(IL-1β、TNF-α、IL-10)的免疫调节。体内研究中,对Sprague-Dawley大鼠进行皮下植入7、14和60天评估炎症反应,对大鼠上颌第一磨牙进行活髓切断术,并在30和60天后评估。使用显微CT成像和H&E染色分析结果。统计分析包括单因素方差分析和非参数检验(p<0.05)。结果:与CS和MTA相比,CSR显著增强了HDPSCs的活力、迁移和成牙本质基因表达(p<0.05)。它表现出优越的抗菌活性,CFU计数最低(p<0.05)。CSR上调抗炎细胞因子IL-10并降低促炎细胞因子。在体内,CSR在7、14和60天时表现出比CS和MTA更轻微的炎症(p<0.05),并在活髓切断术中形成一致的钙化桥,无牙髓坏死。结论:CSR表现出优越的生物相容性、再生潜力和抗菌性能,使其成为VPT中MTA的有前景的替代品,改善临床结果。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
钙锶硅酸盐(CSR)相比硅酸钙(CS)和MTA,在体外是否能促进HDPSCs成牙本质分化、抗菌、免疫调节,以及在体内是否能减轻炎症并促进牙本质桥形成?
核心机制
CSR通过锶离子模拟钙离子,触发细胞内信号级联(如MAPK/ERK通路),促进细胞存活和增殖;上调成牙本质基因(ALP、DSPP、DMP-1、RUNX2),并调节免疫反应,促进抗炎细胞因子IL-10表达,抑制促炎细胞因子IL-1β和TNF-α。
主要证据
体外RT-qPCR显示CSR显著上调成牙本质基因表达(p<0.05);CFU计数显示CSR对变形链球菌和嗜酸乳杆菌抗菌活性最强(p<0.05);THP-1巨噬细胞中CSR上调IL-10,下调IL-1β和TNF-α(p<0.05);体内皮下植入显示CSR炎症评分较低(p<0.05);大鼠磨牙活髓切断术后CSR形成连续钙化桥,牙本质桥厚度与MTA相当,且优于CS(p<0.05)。
研究意义
CSR是MTA的有前景的替代品,用于活髓治疗,可能改善临床结果。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

CSR材料的合成与表征

合成钙锶硅酸盐(CSR)并作为实验材料。

采用溶胶-凝胶法合成CSR,原料为正硅酸四乙酯、硝酸钙、硝酸锶,摩尔比Ca:Sr:Si=3:1:1.04,烧结温度1450°C,5小时。CS作为阴性对照,MTA作为阳性对照。

2

HDPSCs的分离与表征

验证所用人牙髓干细胞的间充质干细胞表型。

从健康无龋第三磨牙(n=5)分离HDPSCs,培养在α-MEM+10% FBS+1%青链霉素中,流式细胞术检测CD45、CD73、CD90、CD105表达。

3

CSR对HDPSCs活力与迁移的影响

评估CSR的生物相容性和促迁移能力。

使用CCK-8和活/死染色评估细胞活力;使用trans-well迁移实验评估细胞迁移。

4

CSR对HDPSCs成牙本质分化的影响

评估CSR促进成牙本质分化的能力。

HDPSCs用材料提取物处理7天,RT-qPCR检测ALP、DSPP、DMP-1、RUNX2基因表达。

5

CSR的抗菌活性评估

评估CSR对龋病相关菌的抗菌作用。

将变形链球菌和嗜酸乳杆菌菌液(10^7 CFU/mL)与材料孵育24小时,然后CFU计数。

6

CSR的免疫调节评估

评估CSR对巨噬细胞炎症因子表达的影响。

THP-1单核细胞经PMA诱导分化为巨噬细胞,LPS刺激后,用材料提取物处理24小时,RT-qPCR检测IL-1β、TNF-α、IL-10表达。

7

体内皮下植入炎症反应评估

评估CSR在体内的炎症反应和生物相容性。

将填充材料的聚乙烯管植入SD大鼠皮下,分别在7、14、60天取材,H&E染色评估炎症细胞。

8

大鼠磨牙活髓切断术及牙本质桥形成评估

评估CSR在体内促进牙本质桥形成和保留牙髓活力的能力。

对SD大鼠上颌第一磨牙进行活髓切断术,分别用CSR、CS、MTA覆盖,30和60天后micro-CT和H&E评估牙本质桥形成。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
正硅酸四乙酯Sigma-Aldrich--
硝酸VWR Prolabo Chemicals--
四水硝酸钙Sigma-Aldrich--
α-最小必需培养基GIBCO BRL--
胎牛血清----
青链霉素溶液ThermoFisher Scientific--
胰蛋白酶-EDTA----
CD45抗体Abcam--
CD73抗体Abcam--
CD90抗体Abcam--
CD105抗体Abcam--
CCK-8试剂盒Sigma-Aldrich--
活/死细胞检测试剂盒Gibco-InvitrogenL3224
Leica DMi8荧光显微镜Leica Microsystems--
Trans-well插入小室(8 μm多孔膜)----
结晶紫----
RNeasy提取试剂盒Qiagen--
SuperScript Vilo逆转录预混液Invitrogen--
ABI Prism 7000序列检测系统Applied Biosystems--
Takara SYBR绿Takara--
脑心浸液肉汤----
轻型唾液链球菌琼脂----
Rogosa琼脂----
RPMI 1640培养基Gibco--
佛波醇-12-十四酸酯-13-乙酸酯Sigma-Aldrich--
脂多糖invivoGen--
树脂改良玻璃离子水门汀(Fuji II LC)GC America--
Fiji(ImageJ)----

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
材料合成
合成CSR的溶胶-凝胶法:正硅酸四乙酯、硝酸钙、硝酸锶,摩尔比Ca:Sr:Si=3:1:1.04,烧结温度1450°C,时间5小时;CS的合成Ca:Si=3:1
阅读提示:Methods 2.1 Materials Synthesis and Grouping
细胞培养与处理
HDPSCs的来源、培养条件(α-MEM+10%FBS+1%青链霉素)、传代次数(P3-P5)、处理浓度与时间(24小时或7天)
阅读提示:Methods 2.2 HDPSCs Isolation and Characterization, 2.3-2.5
抗菌实验
细菌菌株(变形链球菌UA159、嗜酸乳杆菌ATCC 9224)、菌液浓度(10^7 CFU/mL)、厌氧条件(85% N2, 10% H2, 5% CO2)、孵育时间(24小时)、CFU计数方法
阅读提示:Methods 2.6-2.7
免疫调节实验
THP-1细胞分化条件(150 nM PMA处理24小时)、LPS刺激浓度(100 ng)、材料提取物处理时间(24小时)
阅读提示:Methods 2.8 Inflammatory Cytokines Gene Expression
动物实验
SD大鼠品系、年龄(10-12周龄)、体重(500-550g)、分组(每组12只)、皮下植入管尺寸(直径1.5mm,长10mm)、时间点(7,14,60天)
阅读提示:Methods 2.9-2.10
活髓切断术
大鼠麻醉(80mg/kg戊巴比妥+10mg/kg甲苯噻嗪)、样本量(每组20颗牙)、时间点(30,60天)、牙本质桥厚度测量方法
阅读提示:Methods 2.11
统计分析
统计方法(单因素方差分析和非参数检验)、显著性水平(p<0.05)
阅读提示:Methods 2.12