ZBP1被线粒体损伤激活,结合STAT3抑制Legumain产生并加剧肺炎克雷伯菌诱导的脓毒症中的巨噬细胞炎症

ZBP1 activated by mitochondrial damage binds to STAT3 to suppress Legumain production and exacerbate macrophage inflammation in Klebsiella pneumoniae-induced sepsis

作者信息Li-Ting Deng, Huan Yang, Xu-Fei Zhang, Ze-Xing Lin, Ni Kuang, Hai-Yang Jiang, Pei-Zhao Liu, Yang-Guang Li, Xuan-Heng Li, Wei-Zhen Li, Chu-Jun Ni, Ming-Jie Qiu, Yue Chao, Yu-Fei Pan, Yi-Yu Yang, Ye-Ting Zhu, Yun Zhao, Jian-An Ren, Xiu-Wen Wu
PMID42571453
发布时间2026
DOI10.1016/j.mmr.2026.100059

实验完整度

高

结合人类脓毒症队列转录组、小鼠KP感染与CLP模型、基因敲除小鼠、单细胞RNA测序、免疫共沉淀、质谱、ChIP及体内AAV过表达等多层级验证,具备功能与机制验证。

主要模型

小鼠KP感染模型 小鼠CLP脓毒症模型 骨髓来源巨噬细胞(BMDM) THP-1巨噬细胞 HEK-293T细胞

重点核对

ZBP1在脓毒症患者PBMC中的表达及与SOFA评分的相关性 KP感染及CLP模型中ZBP1的诱导及细胞定位 Zbp1敲除对小鼠存活率及炎症因子水平的影响 ZBP1与STAT3的相互作用及对STAT3磷酸化与核转位的影响 LGMN对巨噬细胞极化及上皮屏障功能的作用

摘要

背景 由肺炎克雷伯菌(KP)引起的严重细菌性脓毒症以炎症失调、多器官损伤和高死亡率为特征,但其关键分子驱动因素仍未完全阐明。本研究旨在阐明Z-DNA结合蛋白1(ZBP1)在KP诱导的脓毒症中调节炎症损伤的机制,并确定具有转化意义的潜在治疗靶点。 方法 为了研究巨噬细胞ZBP1在脓毒症中的作用,我们结合了人类脓毒症队列和鼠脓毒症及KP感染模型的转录组数据集,以及对感染组织的单细胞RNA测序。我们还建立了整体和髓系特异性Zbp1敲除(Zbp1fl/flLyz2-Cre+/-)小鼠,以及髓系特异性Lgmn(编码Legumain)敲除(Lgmnfl/flLyz2-Cre+/-, LgmnCKO)小鼠,以阐明依赖于巨噬细胞的免疫调节机制。此外,使用由F4/80启动子驱动的巨噬细胞靶向腺相关病毒9(AAV9)载体在体内过表达Lgmn。通过流式细胞术、免疫荧光和生存分析评估全身炎症、器官损伤和脓毒症严重程度。还评估了重组LGMN补充对巨噬细胞活化和屏障恢复的影响。 结果 ZBP1激活由I型干扰素(IFN-I)信号传导和线粒体损伤共同驱动。机制上,ZBP1与信号转导和转录激活因子3(STAT3)直接相互作用,抑制其磷酸化和核转位,从而抑制Lgmn的转录,Lgmn是与抗炎巨噬细胞极化和组织修复相关的基因。Zbp1的基因和髓系特异性缺失导致促炎细胞因子产生减少,并在KP和盲肠结扎穿刺(CLP)诱导的脓毒症模型中提高了存活率。相反,LgmnCKO加重了全身炎症、器官损伤和屏障功能障碍,而巨噬细胞靶向AAV9介导的Lgmn过表达或重组LGMN补充减轻了巨噬细胞炎症,恢复了上皮功能,并提高了存活率。 结论 这些发现揭示了一个以前未被认识的ZBP1-STAT3-LGMN信号轴,它有助于KP诱导的脓毒症中的免疫和炎症失调,并表明靶向ZBP1或恢复LGMN活性可能代表严重细菌感染的一种有前景的治疗策略。关键词:肺炎克雷伯菌(KP)、Z-DNA结合蛋白1(ZBP1)、信号转导和转录激活因子3(STAT3)、脓毒症、巨噬细胞、Legumain(LGMN)

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
ZBP1在肺炎克雷伯菌诱导的脓毒症中如何调控巨噬细胞炎症及器官损伤?
核心机制
KP感染通过IFN-I信号和线粒体损伤激活ZBP1,ZBP1与STAT3结合并抑制其磷酸化及核转位,从而下调LGMN转录,促进M1极化及炎症,加剧脓毒症。
主要证据
转录组分析、单细胞测序、基因敲除小鼠(Zbp1-/-、髓系特异性敲除)和LGMN相关模型(LgmnCKO、AAV9过表达)显示,Zbp1缺失减轻炎症并改善生存,LGMN缺失加重损伤,而补充LGMN则改善。
研究意义
作者提出靶向ZBP1或下游效应分子(如LGMN)可能为调节KP诱导脓毒症免疫反应及改善临床结局提供潜在治疗策略。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

临床样本及患者PBMC中ZBP1表达分析

评估ZBP1在脓毒症患者中的表达水平及其与疾病严重程度的关系。

从17名脓毒症患者和6名健康对照中采集外周血,分离PBMC,通过Western blot和RT-qPCR检测ZBP1表达,并与SOFA评分进行相关性分析。

2

小鼠脓毒症模型建立及表型分析

在KP感染和CLP模型中验证ZBP1的作用及其对存活、炎症和器官损伤的影响。

对WT、Zbp1-/-、Ripk3-/-、Mlkl-/-等基因型小鼠进行KP腹腔注射或CLP手术,记录生存率,检测血清TAT、ALT、AST、CK水平,进行组织病理学评估。

3

巨噬细胞中ZBP1作用及机制初探

确定ZBP1在巨噬细胞中的功能及可能的下游机制。

使用髓系特异性Zbp1敲除小鼠,通过免疫荧光检测组织巨噬细胞浸润和表型,评估肠道屏障损伤和组织转录组,寻找差异表达基因。

4

ZBP1激活机制研究

明确KP感染中ZBP1激活的上游信号。

利用WT、Sting-/-、Ifnar1-/-、Ripk3-/-小鼠来源的BMDM,检测KP感染后ZBP1表达;通过透射电镜、Seahorse等评估线粒体损伤;检测Z-DNA积累和线粒体ROS。

5

LGMN的鉴定及功能验证

揭示ZBP1下游效应分子LGMN的表达调节及对巨噬细胞炎症和屏障功能的作用。

通过转录组鉴定Lgmn为ZBP1下游上调基因。使用重组LGMN、抑制剂RR-11a、Lgmn敲除小鼠和AAV9过表达,检测巨噬细胞极化、TEER和体内炎症及器官损伤。

6

ZBP1与STAT3相互作用及对Lgmn转录的调控

确定ZBP1调控LGMN表达的分子机制。

通过免疫共沉淀、LC-MS/MS鉴定ZBP1相互作用蛋白,验证ZBP1与STAT3结合。检测STAT3磷酸化和核转位,以及STAT3对Lgmn启动子的调控。

7

体内LGMN功能验证及治疗潜力评估

在体内证实LGMN在KP脓毒症中的保护作用。

使用LgmnCKO小鼠和AAV9过表达LGMN的小鼠,评估KP感染后生存率、血清损伤标志物、组织病理和肠道屏障完整性。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
RIPA裂解液BeyotimeP0013B
蛋白酶抑制剂Med Chem ExpressHY-K0010
磷酸酶抑制剂Med Chem ExpressHY-K0021
PVDF膜Millipore--
二抗 (7074或7076)Cell Signaling Technology7074/7076
TANON 5200化学发光成像系统TANON--
Lipofectamine 3000转染试剂InvitrogenL3000150
Neon转染系统Thermo Fisher Scientific--
pCMV3-GFP-Puro-c6×His-Lgmn质粒Corues Biotechnology--
ZBP1-Flag等质粒General Biosystems--
AAV9-F4/80-MCS-3Flag-T2A-ZsGreenGeneral BiolVA063-AAV9-F4/80-MCS-3Flag-T2A-ZsGreen
Lymphoprep™分离液STEMCELL Technologies07801
SepMate™管STEMCELL Technologies85415
NTUH-K2044菌株----
ATCC-700603菌株----
Stattic----
重组LGMN蛋白----
RR-11a----
MitoSOX----

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
临床样本分析
脓毒症患者与健康对照的样本量、采集时间、ZBP1表达检测方法
阅读提示:Methods 2.1 Human blood samples and human peripheral blood mononuclear cells isolation
小鼠脓毒症模型
小鼠品系、周龄、性别、KP菌株、感染剂量、给药方式、观察时间
阅读提示:Methods 2.2 Animals and treatments; 2.3 Bacteria preparation
ZBP1激活机制
BMDM感染MOI、时间、IFN信号通路相关基因敲除小鼠品系、线粒体损伤检测方法
阅读提示:Methods 2.5, 3.3节
ZBP1与STAT3相互作用
免疫共沉淀条件、STAT3抑制剂浓度、转染细胞类型、ZBP1截短突变体
阅读提示:Methods 2.6, 3.6节
LGMN功能验证
重组LGMN浓度、RR-11a浓度、AAV9注射剂量、LgmnCKO小鼠来源、TEER测量细节
阅读提示:Methods 2.7, 3.5节