样本采集与制备
获取高质量的人体组织和肿瘤样本,用于蛋白质组分析。
从尸体捐献者、健康志愿者、流产胎儿和癌症患者中收集样本,采用FFPE和新鲜冷冻样本,通过标准化协议进行样本制备。
Spatial distribution of the proteome in the human body and in cancers
包含多层级验证:大规模DIA质谱样本分析、PRM靶向验证、外部数据库交叉验证、药物靶点关联分析,数据质量控制和统计模型完整。
人体组织样本 癌及癌旁组织样本 胎儿组织样本
样本类型:58种健康成人组织、25种肿瘤及其配对非肿瘤组织、22种胎儿组织 样本量:2856个样本,每个癌种约40例患者 数据采集:diaPASEF模式,DIA-NN处理,FDR<0.1% 差异表达统计:线性混合模型,Hedges' g ≥ 0.5,BH调整P<0.05
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
获取高质量的人体组织和肿瘤样本,用于蛋白质组分析。
从尸体捐献者、健康志愿者、流产胎儿和癌症患者中收集样本,采用FFPE和新鲜冷冻样本,通过标准化协议进行样本制备。
获得高覆盖、定量的蛋白质组数据。
使用Bruker timsTOF Pro质谱仪,采用DDA和diaPASEF模式进行数据采集。
确保蛋白质定量的准确性和可重复性。
使用DIA-NN进行DIA数据处理,基于联合诱饵库评估FDR,并进行质量控制。
鉴定组织特异性和富集蛋白。
对正常组织样本进行差异表达分析,分类组织富集蛋白,并比较与HPA等数据的一致性。
鉴定肿瘤中差异表达蛋白及其特异性。
对配对肿瘤和非肿瘤样本进行线性混合模型分析,获得差异表达蛋白,并检测肿瘤特异性和普遍上调蛋白。
识别潜在药物靶点和可重用的药物。
将差异表达蛋白映射到DrugBank、临床数据库和ProCan-DepMapSanger数据,评估药物敏感性。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 质谱分析 | timsTOF Pro质谱仪 | Bruker | -- |
| 样本制备 | 压力循环仪NEP2320-Enhanced | Pressure BioSciences | -- |
| LysC酶 | Hualishi Tech | -- | |
| 胰蛋白酶 | Hualishi Tech | -- | |
| C18离心柱 | The Nest Group | -- | |
| 样本分级 | UltiMate 3000 RSLCnano系统 | Thermo Fisher Scientific | -- |
| 样本制备 | High-Select Top14高丰度蛋白去除树脂 | Thermo Fisher Scientific | A36371 |
| Pierce蛋白质浓缩器PES | Thermo Fisher Scientific | 88512 | |
| 质谱分析 | nanoElute超高效液相色谱 | Bruker Daltonics | -- |
| 组织学 | HistoCore AUTOCUT切片机 | Leica Biosystems | -- |
| HistoCore SPECTRA染色工作站 | Leica Biosystems | -- | |
| Zeiss Axio Observer 3显微镜 | Zeiss | -- | |
| 血液处理 | 1×红细胞裂解液 | Invitrogen | 00-4333 |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 样本采集 | 尸检样本死后间隔<10小时;癌和癌旁配对;胎儿样本来源 阅读提示:Methods: Collection of tissue samples |
| 样本制备 | FFPE样本用量约1 mg;PCT裂解条件;酶解比例 阅读提示:Methods: Sample preparation for LC–MS |
| 质谱分析 | DIA窗口数量、梯度时间、流速、FDR阈值 阅读提示:Methods: LC–MS/MS analysis |
| 数据分析 | DIA-NN参数、过滤标准、归一化和缺失值填补 阅读提示:Methods: Analysis of DIA data by DIA-NN, Quality control and preprocessing |
| 差异表达分析 | 线性混合模型、covariates、效应量阈值 阅读提示:Methods: Differential expression analysis |