收缩性驱动心肌细胞成熟及对纳米图案的响应

Contractility Drives Cardiomyocyte Maturation and the Response to Nanopatterns

作者信息Laura A Sherer, Abigail Nagle, Mary Papadaki, Seby Edassery, Tim McMillen, Dasom Yoo, Lauren D'Amico, Daniel Brambila-Diaz, Lucy Maynard, Mark Qiao, Jennifer Davis, Michael Regnier, Jonathan A Kirk
PMID42422954
期刊Circ Res
发布时间2026-07-09
DOI10.1161/CIRCRESAHA.126.328318

实验完整度

包含基因编辑细胞模型、体外分化成熟、成像、代谢、钙瞬变分析、质谱蛋白质组学、纳米图案干预等多个独立证据层级,并涉及功能验证(收缩缺失、代谢)和机制验证(蛋白表达、通路)。

主要模型

人iPSC来源心肌细胞(WT型) 人iPSC来源心肌细胞(D65A cTnC突变型) 纳米图案培养系统

重点核对

D65A突变纯合性需通过测序确认 细胞在第14天重新接种,第46天接种到纳米图案上,培养至第60天 纳米图案规格:沟槽高600 nm,宽400 nm,间距约800 nm D65A细胞未观察到自发收缩,WT细胞约第7天出现 质谱样品采集时间点:第5、7、14、30、60天,n=3次分化

摘要

背景:理解心肌细胞发育机制对于发挥诱导多能干细胞来源心肌细胞(iPSC-CMs)的潜力至关重要。虽然已知心肌细胞的发育依赖于内部和外部的机械信号,但需要进一步研究以理解不同信号的贡献以及它们如何整合在一起产生成体心肌细胞。在此,我们通过研究钙激活的收缩性在肌节形成和成熟中的作用及其对iPSC-CM对纳米图案响应的影响来弥补这一空白。方法:我们产生了具有纯合D65A心肌肌钙蛋白C(cTnC)替换的iPSC。这种工程化的cTnC不能在位点II结合钙,导致原肌球蛋白阻断强肌球蛋白与细肌丝结合并抑制肌节收缩。iPSC被分化为心肌细胞并在培养中成熟超过60天。通过成像、代谢分析和钙瞬变分析对细胞进行表征。在整个分化和成熟过程中通过质谱检查蛋白质组。我们还将部分成熟的心肌细胞重新接种到纳米图案化表面上,以研究外部机械信号如何影响收缩性与非收缩性细胞的成熟。结果:令人惊讶的是,我们发现D65A cTnC心肌细胞中形成了肌节,尽管这些肌节发育不良且紊乱。D65A心肌细胞还表现出显著的蛋白质组成熟缺陷和异常的钙瞬变。将非收缩性心肌细胞重新接种到纳米图案上改善了几项结构和蛋白质组成熟指标。相反,WT成熟并未从引入纳米图案中受益。结论:钙激活的收缩性对于肌节生成是可有可无的,但对于心肌细胞成熟至关重要。在非收缩性D65A cTnC心肌细胞中,纳米图案增强了成熟,表明外部机械信号可能部分补偿收缩性缺陷。然而,纳米图案并未促进WT成熟,提示成熟度可能降低纳米图案的功效。除了这些新发现外,这些编目iPSC-CM成熟的质谱数据集代表了心血管研究界的有用资源。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
钙激活的收缩性(内部机械信号)在心肌细胞肌节形成和成熟中的作用,以及外部机械信号(纳米图案)如何与内部信号整合影响成熟。
核心机制
钙激活的收缩性对于肌节形成不是必需的,但对于心肌细胞成熟至关重要;外部机械信号(纳米图案)可以部分补偿非收缩性细胞中缺失的收缩性,促进其成熟。
主要证据
D65A cTnC心肌细胞仍能形成肌节但发育不良且紊乱,表现出显著的蛋白质组成熟缺陷和异常的钙瞬变;在纳米图案上,D65A细胞的结构和氧化磷酸化蛋白表达改善,而WT细胞则未受益甚至下降。
研究意义
该研究提供了iPSC-CM成熟过程中的蛋白质组数据集,为心血管研究界提供了资源;同时揭示了内部和外部机械信号在心肌细胞成熟中的相互作用,可能对于优化iPSC-CM在临床中的应用具有重要意义。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

通过CRISPR-Cas9生成D65A cTnC iPSC细胞系

消除钙激活的肌节收缩,从而研究收缩性在心肌细胞发育中的作用。

使用CRISPR-Cas9在iPSC中引入TNNC1基因的D65A纯合突变,并通过测序确认。

2

分化和成熟心肌细胞

获得足够数量的WT和D65A cTnC心肌细胞用于后续分析。

iPSC通过双相Wnt调节方案分化为心肌细胞,并在培养中成熟至第60天。

3

结构和收缩功能表征

评估肌节形成、组织结构和收缩行为的差异。

通过免疫荧光染色(α-肌动蛋白、肌联蛋白等)、透射电子显微镜和活细胞成像观察肌节结构和收缩性。

4

钙瞬变分析

评估收缩性缺失对心肌细胞钙处理的影响。

使用Fura-2-AM负载细胞,通过IonOptix系统测量钙瞬变。

5

蛋白质组学分析

比较WT和D65A cTnC心肌细胞在成熟过程中的蛋白质表达变化,并评估纳米图案的影响。

在不同时间点收集细胞,进行质谱分析,并进行主成分分析和基因本体论富集分析。

6

纳米图案对成熟的影响

测试外部机械信号(纳米图案)是否能补偿收缩性的缺失并影响心肌细胞成熟。

将WT和D65A cTnC心肌细胞在第46天重新接种到纳米图案或平表面上,在第60天分析结构和蛋白质表达。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
基质胶----
mTeSR-1培养基----
Y-27632 ROCK抑制剂Selleck Chemicals--
CHIR99021Cayman--
RPMI 1640培养基Gibco--
牛血清白蛋白Sigma--
L-抗坏血酸Sigma--
Wnt-C59Selleck Chemicals--
含胰岛素的B27添加剂----
0.25%胰蛋白酶----
Versene----
胎牛血清----
无葡萄糖DMEM----
L-乳酸钠----
基质胶包被的培养板----
纳米图案表面CuriBioANFS-CS25
鬼笔环肽-488Thermo--
肌节α-肌动蛋白抗体Sigmaab137346
纽蛋白抗体SigmaV9131
心肌肌钙蛋白C抗体AbcamAb137130
心肌肌钙蛋白T抗体Abcamab8295
Ki-67抗体Cell Signaling9949
极光激酶B抗体Abcamab2254
AlexaFluor标记的二抗Life Technologies--
Hoechst 33342Thermo Scientific--
Mowliol封片剂----
Fura-2-AMThermo Scientific--
TrypLE Express酶----
胰蛋白酶/LysC----
Sep-Pak tC18 1 cc真空柱WatersWAT036820
Vanquish Neo超高效液相色谱系统Thermo Fisher--
c18 PepMap色谱柱Thermo FisherP/N 160454
Orbitrap Eclipse Tribrid质谱仪Thermo Fisher Scientific--
Seahorse XF细胞线粒体压力测试----
Proteome Discoverer 2.5Thermo Fisher--
Prism 11----

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
细胞分化
iPSC细胞系来源和代数;Matrigel包被浓度;Y-27632浓度(10 μM);CHIR99021浓度(分化前1 μM,分化第0天5 μM);Wnt-C59浓度(2 μM);RBA培养基成分;心肌细胞维持培养基(RPMI 1640 + B27含胰岛素);第14天细胞消化时间和酶比例;重新接种密度(428,500 cells/cm²);代谢纯化期间无葡萄糖DMEM中乳酸钠浓度(4 mM)
阅读提示:方法部分“iPSC-心肌细胞生成和成熟方案”
成像分析
细胞接种密度(3,000 cells/cm²);固定前处理(25 μM blebbistatin 30分钟);固定剂浓度和时间(4% PFA 15分钟);封闭液成分;一抗浓度和孵育时间;二抗浓度;核染色Hoechst 33342浓度(10 μM);成像设备(Nikon A1R共聚焦显微镜)
阅读提示:方法部分“成像和图像分析”
钙瞬变分析
Fura-2-AM浓度(0.2 μM);Tyrode缓冲液钙浓度(1.8 mM);装载时间(15分钟);冲洗时间(15分钟);刺激频率(0.5 Hz);分析软件(IonWizard)
阅读提示:方法部分“钙瞬变分析”
蛋白质组学分析
样本采集时间点(第5、7、14、30、60天);生物学重复(n=3分化);细胞裂解液成分;蛋白定量方法(BSA比色法);还原和烷基化条件(DTT和IAA浓度和时间);酶解条件(Trypsin/LysC,1:50 wt/wt,37°C 16-18小时);TFA终止浓度(0.15%);脱盐柱使用;质谱参数(梯度、仪器);数据分析软件(Proteome Discoverer 2.5)和搜索参数(FDR等)
阅读提示:方法部分“质谱和分析”
纳米图案处理
纳米图案规格(高600 nm,宽400 nm,间距约800 nm);重新接种密度(3,000 cells/cm²);培养时间(2周);纳米图案涂层(Matrigel)
阅读提示:方法部分“iPSC-心肌细胞生成和成熟方案”和“成像和图像分析”