生长抑素受体通过直接和旁分泌效应在小鼠胰岛内塑造胰岛素和胰高血糖素的输出

Somatostatin receptors shape insulin and glucagon output within the pancreatic islet in mice through direct and paracrine effects

作者信息Ryan G Hart, Jordan J Lee, Karen Zhai, Sharlene Lee, Rashita Chauhan, Aidean Hosseini, Austin D Nguyen, Mark O Huising
PMID42322376
发布时间2026-09
DOI10.1007/s00125-026-06769-4

实验完整度

包含活体成像(cAMP和Ca2+传感器)、细胞特异性受体拮抗剂、静态分泌实验、免疫荧光等多种独立证据层级,并进行了功能验证(分泌)和机制验证(信号通路)。

主要模型

小鼠胰岛(完整的和分散的) β-actin-Cre × GCaMP6s小鼠胰岛 β-actin-Cre × CAMPER小鼠胰岛 Ucn3-Cre × CAMPER小鼠胰岛

重点核对

α细胞SSTR2和β细胞SSTR3的表达模式 SST-14浓度(100 nmol/l)和拮抗剂浓度(500 nmol/l) 营养刺激组合(16.8 mmol/l葡萄糖和2 mmol/l氨基酸) β细胞对SST的敏感性受细胞间缝隙连接影响 GLP1R拮抗剂exendin 9-39对胰岛素分泌的取消作用

摘要

目的/假说:胰腺δ细胞分泌生长抑素(SST),其可抑制胰岛的α细胞和β细胞。通过控制胰岛素和胰高血糖素的释放,δ细胞在维持营养稳态中发挥重要作用。然而,一种抑制性激素如何同时抑制α细胞和β细胞(在血糖的反调控中通常被视为功能性拮抗剂)一直是一个生理学谜团。在此,我们通过评估α细胞特异性和β细胞特异性SST受体对细胞内在行为和激素释放的贡献来解开这个谜团。方法:使用组成性表达荧光传感器(报告α和β细胞中的cAMP和Ca2+)的小鼠胰岛,用模拟餐后状态(含葡萄糖和氨基酸)的刺激进行成像。该方法与细胞特异性SST受体拮抗剂相结合,以确定SST如何通过调节cAMP和Ca2+第二信使以及旁分泌相互作用来抑制α和β细胞的激素输出。结果:我们的结果支持并扩展了先前的观察,即SST受体2(SSTR2)是小鼠α细胞表达的唯一SST受体,而SST受体3(SSTR3)是β细胞表达的唯一受体。有趣的是,SSTR2和SSTR3在完整胰岛的α和β细胞内以不同方式调节下游cAMP和Ca2+信号级联。刺激SST受体可强效抑制α细胞和β细胞中的cAMP。相比之下,刺激SSTR2对α细胞Ca2+的抑制作用显著强于通过SSTR3对β细胞Ca2+的抑制。尽管β细胞上缺乏SSTR2,但在营养刺激期间阻断α细胞SSTR2会导致胰岛素释放显著增加,这是局部胰高血糖素释放的下游效应。结论/解释:我们的观察解答了δ细胞在餐后阶段作用的生理学谜团,我们证明了SST主要通过SSTR2抑制α细胞的cAMP和Ca2+,从而防止胰高血糖素释放。阻断SSTR2导致局部释放的胰高血糖素增加,加上SSTR3在强烈营养刺激下抑制β细胞钙的能力较弱,导致β细胞葡萄糖刺激的胰岛素分泌增强。我们得出结论,在营养刺激下,δ细胞的作用是通过调节胰高血糖素对胰岛素分泌的胰岛内旁分泌增强强度来调节胰岛素释放量,这种增强由β细胞胰高血糖素样肽-1受体介导。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
SST如何通过不同的SSTR亚型同时抑制α细胞和β细胞,以及这种抑制如何影响餐后胰岛素和胰高血糖素的分泌?
核心机制
SST主要通过α细胞SSTR2抑制α细胞cAMP和Ca2+,从而抑制胰高血糖素释放;β细胞SSTR3对Ca2+的抑制较弱,而对cAMP的抑制较强。阻断α细胞SSTR2导致胰高血糖素释放增加,进而通过β细胞GLP1R增强胰岛素分泌。
主要证据
使用GCaMP6s和CAMPER小鼠进行活体成像,显示SST对α细胞Ca2+的抑制作用强于β细胞,对cAMP的抑制作用相似;使用SSTR2和SSTR3拮抗剂显示SSTR2阻断增加α细胞和β细胞cAMP,且β细胞cAMP的增加在胰岛解离后消失;静态分泌实验显示SSTR2拮抗剂增加胰高血糖素和胰岛素分泌,且这种作用被GLP1R拮抗剂exendin 9-39取消。
研究意义
研究阐明了δ细胞在餐后通过SSTR2间接调节胰岛素分泌的机制,为理解胰岛内旁分泌调控提供了新视角。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

确认SSTR表达模式

验证α细胞和β细胞上SSTR亚型的表达差异

使用公开的RNA-seq数据、免疫荧光和细胞特异性Cre驱动的mGFP标记,确认SSTR2在α细胞表达,SSTR3在β细胞初级纤毛表达。

2

活体成像检测SST对Ca2+的抑制

测定SST对α和β细胞Ca2+的抑制作用

使用β-actin-Cre × GCaMP6s小鼠完整胰岛或分散细胞,在16.8 mmol/l葡萄糖和氨基酸混合物刺激下,灌流100 nmol/l SST-14,记录GCaMP6s荧光变化。

3

活体成像检测SST对cAMP的抑制

测定SST对α和β细胞cAMP的抑制作用

使用β-actin-Cre × CAMPER小鼠完整胰岛,在100 nmol/l GIP刺激下,灌流100 nmol/l SST-14,记录FRET变化。

4

使用SSTR拮抗剂验证受体特异性

验证SSTR2和SSTR3拮抗剂对Ca2+和cAMP抑制的缓解作用

在SST存在下,分别加入SSTR2拮抗剂(406-028-15)和SSTR3拮抗剂(SST-ODN-8),记录Ca2+和cAMP信号变化。

5

检测SSTR2介导的旁分泌效应

验证SSTR2拮抗剂对β细胞cAMP的缓解是否依赖α细胞旁分泌

将Ucn3-Cre × CAMPER小鼠胰岛解离,转染jRGECO1a,检测SSTR2拮抗剂对β细胞Ca2+和cAMP的影响。

6

静态分泌实验验证激素释放

验证SSTR2拮抗剂对胰高血糖素和胰岛素分泌的影响及GLP1R的作用

从同一批胰岛中测量胰高血糖素和胰岛素分泌,在高葡萄糖和氨基酸刺激下,加入SSTR2拮抗剂和/或GLP1R拮抗剂exendin 9-39。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

验证样本或模型特征
验证分子表达变化
验证机制链路
数据分析与统计

产品清单

实验环节名称品牌货号
RPMI培养基Gibco11879-020
胎牛血清GibcoA5256701
青霉素/链霉素Gibco15140122
胰蛋白酶Gibco25200056
生长抑素-14Bachem4033009
SSTR2拮抗剂406-028-15----
SSTR3拮抗剂SST-ODN-8----
毒蜥外泌肽9-39----
Lumit发光检测试剂盒Promega--
尼康Eclipse Ti2显微镜Nikon--
Mattek玻璃底培养皿MattekP35G-1.5-14-C
CellPose软件----

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
小鼠品系
C57BL/6NHsd小鼠;β-actin-Cre × GCaMP6s;β-actin-Cre × CAMPER;Ucn3-Cre × CAMPER
阅读提示:Methods: Mouse strains
胰岛分离与培养
RPMI培养基成分(含10% FBS、青霉素/链霉素、5.5 mmol/l葡萄糖);培养时间16-24 h
阅读提示:Methods: Islet isolation and dissociation
活体成像
灌流速度200 μl/min;刺激条件:16.8 mmol/l葡萄糖、2 mmol/l氨基酸混合物(各2 mmol/l)、100 nmol/l SST-14、100 nmol/l肾上腺素;细胞类型鉴定方法
阅读提示:Methods: Live imaging of second messenger levels; Results: 图2-7
拮抗剂处理
SSTR2拮抗剂(406-028-15)和SSTR3拮抗剂(SST-ODN-8)浓度均为500 nmol/l;处理时程
阅读提示:Methods: Live imaging of second messenger levels; Results: 图5-7
分泌实验
20个胰岛/孔;至少5个重复;刺激条件:高葡萄糖(16.8 mmol/l)和氨基酸混合物(2 mmol/l);SSTR2拮抗剂(500 nmol/l);exendin 9-39(500 nmol/l)
阅读提示:Methods: Static hormone secretion assays; Results: 图8