全基因组CTCF结合位点鉴定
建立人类基因组中CTCF结合的全景图谱
整合771个CTCF ChIP-seq数据集,合并峰后获得688,429个非重叠结合位点,并定义占位评分和组成性位点。
Cancer-specific CTCF binding facilitates oncogenic transcriptional dysregulation
包含多层级验证:细胞系与患者样本的ChIP-seq、Hi-C、ATAC-seq、DNA甲基化及WGS分析;功能实验包括γ-分泌酶抑制剂处理和CTCF敲低验证NOTCH1与CTCF协同作用。
T-ALL细胞系(Jurkat、CUTLL1) T-ALL患者样本 正常CD4+ T细胞
γ-分泌酶抑制剂处理Jurkat细胞72小时并洗脱16小时 shRNA敲低CTCF(CUTLL1细胞) ChIP-seq、ATAC-seq、Hi-C、RNA-seq等测序深度和数据分析流程 统计阈值(如FDR≤0.05,fold change≥2)
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
建立人类基因组中CTCF结合的全景图谱
整合771个CTCF ChIP-seq数据集,合并峰后获得688,429个非重叠结合位点,并定义占位评分和组成性位点。
识别六种癌症中特异性获得或丢失的CTCF结合位点
对每种癌症,比较其样本与其他样本及相应正常组织的CTCF占位和结合水平,定义获得/丢失位点。
探究CTCF结合改变是否与染色质构象变化相关
对Jurkat、正常CD4+ T细胞及T-ALL患者样本进行原位Hi-C,比较获得/丢失位点与侧翼区域的接触频率差异。
评估CTCF结合改变对染色质域内基因表达的影响
基于CTCF ChIP-seq和RNA-seq数据,计算CTCF位点与基因对的R²,并分析丢失/获得位点邻近基因的表达变化。
研究DNA甲基化和序列突变对CTCF结合改变的影响
收集RRBS/WGBS数据进行差异甲基化分析,并利用WGS数据检测结合位点附近的突变。
寻找可能诱导CTCF获得的转录因子
通过BART分析在T-ALL中获得CTCF位点相关的染色质互作增强区域,预测富集的转录因子。
测试NOTCH1活性是否对T-ALL获得性CTCF结合是必需的
使用γ-分泌酶抑制剂处理Jurkat细胞,检测CTCF ChIP-seq和ATAC-seq的变化,并在洗脱后观察恢复。
测试CTCF是否是NOTCH1激活靶基因所必需的
在CUTLL1细胞中通过shRNA敲低CTCF,评估NOTCH1靶基因的表达变化。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | RPMI1640培养基 | Corning | -- |
| 胎牛血清 | Sigma-Aldrich | -- | |
| 青霉素-链霉素 | Gibco | -- | |
| GlutaMAX | Gibco | -- | |
| 支原体检测 | MycoAlert支原体检测试剂盒 | Lonza Walkersville | -- |
| Western blot | Actin抗体 | Millipore Sigma | clone |
| CTCF抗体 | Millipore Sigma | 07-729 | |
| Cleaved NOTCH1 (Val1744) 抗体 | Cell Signaling Technology | 4147 | |
| ChIP-seq | CTCF抗体 | Millipore Sigma | 07-729 |
| H3K27Ac抗体 | Cell Signaling Technology | 8173S | |
| H3K27me3抗体 | Cell Signaling Technology | 9733S | |
| H3K4me1抗体 | Millipore | 07-473 | |
| Hi-C | MboI限制性内切酶 | New England Biolabs | R0147M |
| 生物素标记的d-ATP | Jena Bioscience | NU-835-BIO14-S | |
| 链霉亲和素磁珠 | Thermo Fisher Scientific | 65001 | |
| NEBNext Ultra II DNA文库制备试剂盒 | New England Biolabs | -- | |
| Covaris E220超声破碎仪 | Covaris | -- | |
| Illumina HiSeq 2500测序仪 | Illumina | -- | |
| ChIP-seq | Dynabeads Protein G磁珠 | Thermo Fisher Scientific | -- |
| Bioruptor Pico超声破碎仪 | Diagenode | -- | |
| Qubit 3.0荧光计 | Thermo Fisher Scientific | -- | |
| KAPA HyperPrep文库制备试剂盒 | Roche | KK8505 | |
| Illumina NextSeq 500测序仪 | Illumina | -- | |
| RNA-seq | Aurum总RNA小量提取试剂盒 | Bio-Rad | -- |
| Agilent RNA 6000 Nano试剂盒 | Agilent | -- | |
| Agilent Bioanalyzer生物分析仪 | Agilent | -- | |
| TruSeq链式mRNA文库制备试剂盒 | Illumina | -- | |
| DNA甲基化 | AllPrep DNA/RNA微量提取试剂盒 | Qiagen | -- |
| MspI限制性内切酶 | New England Biolabs | -- | |
| SPRI磁珠 | MagBio Genomics | -- | |
| EZ DNA甲基化-闪电试剂盒 | Zymo Research | -- | |
| Pico甲基化测序文库制备试剂盒 | Zymo Research | -- | |
| NextSeq 500/550 V2高输出试剂盒 | Illumina | -- | |
| 全基因组测序 | 细胞裂解液 | Qiagen | -- |
| 蛋白沉淀液 | Qiagen | -- | |
| 免疫共沉淀 | Benzonase核酸酶 | 文中未明确说明 | -- |
| Dynabeads Protein G磁珠 | Thermo Fisher Scientific | -- | |
| NuPAGE LDS样品缓冲液 | Thermo Fisher Scientific | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 细胞培养 | 细胞系来源(CUTLL1、Jurkat)、培养基配方(RPMI1640+10%FBS等)、培养条件(37°C, 5% CO2)、支原体检测方法、传代次数限制(≤20代) 阅读提示:Methods - Experimental procedure - Patient xenografting and cell culture |
| ChIP-seq | 抗体(CTCF、H3K27Ac等)、细胞数量(50 million)、交联条件(1%甲醛10分钟)、超声片段长度(400 bp)、磁珠类型(Dynabeads Protein G)、文库制备试剂盒和测序平台 阅读提示:Methods - Experimental procedure - ChIP-seq profiling |
| Hi-C | 细胞数量(5 million)、限制性内切酶(MboI)、生物素标记d-ATP、连接条件、超声片段长度(400 bp)、链霉亲和素磁珠、文库制备试剂盒、测序平台(Illumina HiSeq 2500)、测序深度(400 million reads) 阅读提示:Methods - Experimental procedure - In situ Hi-C |
| γ-分泌酶抑制剂处理 | γSI浓度(文中未明确说明)、处理时间(72小时)、洗脱时间(16小时)、DMSO对照 阅读提示:Results 段落和Figure 6 legend |
| shRNA敲低 | shRNA序列(未提供)、转染方法(未明确)、敲低效率(未提供)、检测时间点(未明确) 阅读提示:Results 段落和Figure 6 legend |