癌症特异性CTCF结合促进致癌转录失调

Cancer-specific CTCF binding facilitates oncogenic transcriptional dysregulation

作者信息Celestia Fang, Zhenjia Wang, Cuijuan Han, Stephanie L Safgren, Kathryn A Helmin, Emmalee R Adelman, Valentina Serafin, Giuseppe Basso, Kyle P Eagen, Alexandre Gaspar-Maia, Maria E Figueroa, Benjamin D Singer, Aakrosh Ratan, Panagiotis Ntziachristos, Chongzhi Zang
PMID32933554
发布时间2020-09-15
DOI10.1186/s13059-020-02152-7

实验完整度

高

包含多层级验证:细胞系与患者样本的ChIP-seq、Hi-C、ATAC-seq、DNA甲基化及WGS分析;功能实验包括γ-分泌酶抑制剂处理和CTCF敲低验证NOTCH1与CTCF协同作用。

主要模型

T-ALL细胞系(Jurkat、CUTLL1) T-ALL患者样本 正常CD4+ T细胞

重点核对

γ-分泌酶抑制剂处理Jurkat细胞72小时并洗脱16小时 shRNA敲低CTCF(CUTLL1细胞) ChIP-seq、ATAC-seq、Hi-C、RNA-seq等测序深度和数据分析流程 统计阈值(如FDR≤0.05,fold change≥2)

摘要

背景:三维基因组组织对基因调控至关重要,并且在癌症等疾病中可能出现功能异常。作为基因组组织的关键调控因子,CCCTC结合因子(CTCF)被表征为一种DNA结合蛋白,在维持染色质拓扑结构和诱导DNA环化中发挥重要功能。在基因组中众多的结合位点中,已有报道称一些CTCF占据改变的事件与生理或疾病效应相关。然而,迄今为止,尚未有对人类不同癌症中全基因组CTCF结合模式的全面调查。结果:为了解析CTCF结合的功能,我们系统地分析了人类组织和癌症中的700多个CTCF ChIP-seq谱,并在六种癌症类型中鉴定了癌症特异性的CTCF结合模式。我们表明,癌症特异性丢失和获得的CTCF结合事件与染色质相互作用改变相关,部分与DNA甲基化变化相关,而很少与序列突变相关。虽然丢失的结合主要发生在基因启动子附近,但大多数获得的CTCF结合事件表现出增强子活性,并由致癌转录因子诱导。我们在T细胞急性淋巴细胞白血病细胞系和患者样本中验证了这些发现,并表明致癌NOTCH1诱导特异性CTCF结合,它们协同激活靶基因的表达,表明转录凝聚现象。结论:特异性CTCF结合事件发生在人类癌症中。癌症特异性CTCF结合可由其他转录因子诱导,以调节致癌基因表达。我们的结果证实CTCF结合改变是癌症的一种功能性表观基因组特征。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
癌症中CTCF结合模式如何改变,以及这些改变是否与致癌转录调控相关?
核心机制
致癌转录因子(如NOTCH1)通过诱导染色质开放和增强子活性,促进癌症特异性CTCF结合,CTCF与NOTCH1协同激活靶基因表达,形成转录凝聚体。
主要证据
在T-ALL细胞系和患者样本中,通过ChIP-seq、Hi-C、ATAC-seq和功能实验(γ-分泌酶抑制剂处理、CTCF敲低)证明NOTCH1依赖的CTCF结合与染色质互作增强和靶基因激活相关。
研究意义
研究揭示癌症特异性CTCF结合是独立于突变和DNA甲基化的功能性表观基因组特征,为癌症表观遗传调控机制提供新视角。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

全基因组CTCF结合位点鉴定

建立人类基因组中CTCF结合的全景图谱

整合771个CTCF ChIP-seq数据集,合并峰后获得688,429个非重叠结合位点,并定义占位评分和组成性位点。

2

癌症特异性CTCF结合位点鉴定

识别六种癌症中特异性获得或丢失的CTCF结合位点

对每种癌症,比较其样本与其他样本及相应正常组织的CTCF占位和结合水平,定义获得/丢失位点。

3

癌症特异性CTCF结合与染色质互作关联分析

探究CTCF结合改变是否与染色质构象变化相关

对Jurkat、正常CD4+ T细胞及T-ALL患者样本进行原位Hi-C,比较获得/丢失位点与侧翼区域的接触频率差异。

4

癌症特异性CTCF结合与基因表达关联分析

评估CTCF结合改变对染色质域内基因表达的影响

基于CTCF ChIP-seq和RNA-seq数据,计算CTCF位点与基因对的R²,并分析丢失/获得位点邻近基因的表达变化。

5

DNA甲基化和突变分析

研究DNA甲基化和序列突变对CTCF结合改变的影响

收集RRBS/WGBS数据进行差异甲基化分析,并利用WGS数据检测结合位点附近的突变。

6

鉴定与癌症特异性CTCF获得相关的转录因子

寻找可能诱导CTCF获得的转录因子

通过BART分析在T-ALL中获得CTCF位点相关的染色质互作增强区域,预测富集的转录因子。

7

验证NOTCH1对CTCF结合的依赖性

测试NOTCH1活性是否对T-ALL获得性CTCF结合是必需的

使用γ-分泌酶抑制剂处理Jurkat细胞,检测CTCF ChIP-seq和ATAC-seq的变化,并在洗脱后观察恢复。

8

验证CTCF对NOTCH1靶基因激活的作用

测试CTCF是否是NOTCH1激活靶基因所必需的

在CUTLL1细胞中通过shRNA敲低CTCF,评估NOTCH1靶基因的表达变化。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
RPMI1640培养基Corning--
胎牛血清Sigma-Aldrich--
青霉素-链霉素Gibco--
GlutaMAXGibco--
MycoAlert支原体检测试剂盒Lonza Walkersville--
Actin抗体Millipore Sigmaclone
CTCF抗体Millipore Sigma07-729
Cleaved NOTCH1 (Val1744) 抗体Cell Signaling Technology4147
CTCF抗体Millipore Sigma07-729
H3K27Ac抗体Cell Signaling Technology8173S
H3K27me3抗体Cell Signaling Technology9733S
H3K4me1抗体Millipore07-473
MboI限制性内切酶New England BiolabsR0147M
生物素标记的d-ATPJena BioscienceNU-835-BIO14-S
链霉亲和素磁珠Thermo Fisher Scientific65001
NEBNext Ultra II DNA文库制备试剂盒New England Biolabs--
Covaris E220超声破碎仪Covaris--
Illumina HiSeq 2500测序仪Illumina--
Dynabeads Protein G磁珠Thermo Fisher Scientific--
Bioruptor Pico超声破碎仪Diagenode--
Qubit 3.0荧光计Thermo Fisher Scientific--
KAPA HyperPrep文库制备试剂盒RocheKK8505
Illumina NextSeq 500测序仪Illumina--
Aurum总RNA小量提取试剂盒Bio-Rad--
Agilent RNA 6000 Nano试剂盒Agilent--
Agilent Bioanalyzer生物分析仪Agilent--
TruSeq链式mRNA文库制备试剂盒Illumina--
AllPrep DNA/RNA微量提取试剂盒Qiagen--
MspI限制性内切酶New England Biolabs--
SPRI磁珠MagBio Genomics--
EZ DNA甲基化-闪电试剂盒Zymo Research--
Pico甲基化测序文库制备试剂盒Zymo Research--
NextSeq 500/550 V2高输出试剂盒Illumina--
细胞裂解液Qiagen--
蛋白沉淀液Qiagen--
Benzonase核酸酶文中未明确说明--
Dynabeads Protein G磁珠Thermo Fisher Scientific--
NuPAGE LDS样品缓冲液Thermo Fisher Scientific--

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
细胞培养
细胞系来源(CUTLL1、Jurkat)、培养基配方(RPMI1640+10%FBS等)、培养条件(37°C, 5% CO2)、支原体检测方法、传代次数限制(≤20代)
阅读提示:Methods - Experimental procedure - Patient xenografting and cell culture
ChIP-seq
抗体(CTCF、H3K27Ac等)、细胞数量(50 million)、交联条件(1%甲醛10分钟)、超声片段长度(400 bp)、磁珠类型(Dynabeads Protein G)、文库制备试剂盒和测序平台
阅读提示:Methods - Experimental procedure - ChIP-seq profiling
Hi-C
细胞数量(5 million)、限制性内切酶(MboI)、生物素标记d-ATP、连接条件、超声片段长度(400 bp)、链霉亲和素磁珠、文库制备试剂盒、测序平台(Illumina HiSeq 2500)、测序深度(400 million reads)
阅读提示:Methods - Experimental procedure - In situ Hi-C
γ-分泌酶抑制剂处理
γSI浓度(文中未明确说明)、处理时间(72小时)、洗脱时间(16小时)、DMSO对照
阅读提示:Results 段落和Figure 6 legend
shRNA敲低
shRNA序列(未提供)、转染方法(未明确)、敲低效率(未提供)、检测时间点(未明确)
阅读提示:Results 段落和Figure 6 legend