实验模型建立
构建内皮特异性LATS1/2敲除小鼠模型,评估LATS1/2在血管稳态中的作用。
通过Cdh5-cre/ERT2小鼠与Lats1fl/flLats2fl/fl小鼠杂交,他莫昔芬诱导内皮特异性敲除LATS1/2。
LATS1/2-CD38 Metabolic Rewiring Links Senescence to Intraplaque Thrombosis
文献包含体内动物模型(PLCL)、体外细胞实验、空间多组学(IMC/COMET)、代谢通量分析及药理学干预等多层级验证,明确功能与机制验证。
Lats1+/−/Lats2−/−-EKO小鼠 HUVECs 人主动脉斑块样本
LATS1/2敲除方式:他莫昔芬诱导的内皮特异性敲除(Cdh5-cre/ERT2) CD38抑制剂78c的浓度和处理时间(体内30 mg/kg/天,体外1 μM) d-flow模型:部分颈动脉结扎(PLCL)2周或4周 代谢示踪实验:13C-葡萄糖和13C-谷氨酰胺的标记和检测 线粒体复合物V反向激活的验证:寡霉素A和BTB06584处理
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
构建内皮特异性LATS1/2敲除小鼠模型,评估LATS1/2在血管稳态中的作用。
通过Cdh5-cre/ERT2小鼠与Lats1fl/flLats2fl/fl小鼠杂交,他莫昔芬诱导内皮特异性敲除LATS1/2。
评估LATS1/2缺失对血管通透性、生存率和自发血栓形成的影响。
观察小鼠水肿、生存率、肺部和动脉病变,并通过Evans Blue外渗、组织学染色和免疫荧光分析。
建立可控的disturbed flow模型,比较LATS1/2缺失对斑块形成和组成的影响。
对小鼠进行部分左侧颈动脉结扎(PLCL),分析斑块大小、细胞组成和血栓成分。
在体外模拟disturbed flow条件,验证LATS1/2缺失对内皮细胞功能的影响。
使用HUVECs,通过siRNA敲低LATS1/2,在流动腔中暴露于disturbed flow,检测NAD+、ATP、mtROS、衰老和增殖标志物。
通过空间蛋白质组学和代谢组学分析,鉴定LATS1/2缺失内皮细胞的分子和代谢特征。
使用IMC、COMET™和空间质谱成像技术分析小鼠和人斑块样本。
评估disturbed flow和LATS1/2缺失对内皮细胞代谢通量的影响。
从PLCL小鼠分离内皮细胞,进行13C-葡萄糖和13C-谷氨酰胺示踪,通过LC-MS分析代谢中间体。
验证LATS1/2缺失诱导的线粒体复合物V反向模式及其对衰老表型的影响。
测量ATP水平、线粒体膜电位(TMRM)、复合物V活性、SDH活性、氧消耗率(OCR),并使用寡霉素A和BTB06584处理。
评估CD38抑制对斑块内血栓和新生血管形成的影响。
在PLCL前给予CD38抑制剂78c或抗CD38抗体,分析斑块大小、内皮细胞数量、血小板沉积和TF表达。
验证LATS1/2-CD38-SUOX轴在人类动脉粥样硬化斑块中的相关性。
使用IMC/COMET™和空间代谢组学分析人类主动脉组织和斑块样本。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 动物模型构建 | 小鼠品系:Cdh5-cre/ERT2; Lats1fl/flLats2fl/fl(C57BL/6背景);他莫昔芬给药剂量(75 mg/kg,腹腔注射,连续5天) 阅读提示:Methods 'Results' 部分及图1A图注 |
| PLCL模型 | 手术方法、术后观察时间(2周或4周)、是否使用AAV-PCSK9及高脂饮食 阅读提示:Methods 'Results' 部分及图2A图注 |
| 体外细胞实验 | HUVECs培养条件、siRNA转染试剂及浓度、d-flow暴露时间(24小时) 阅读提示:Methods 'In vitro experiments'(如有)及图3D图注 |
| CD38抑制实验 | CD38抑制剂78c的浓度(体内30 mg/kg/天,体外1 μM)及处理时间 阅读提示:Methods 'CD38 inhibition'(如有)及图3L、图7A图注 |
| 代谢示踪实验 | 13C-葡萄糖和13C-谷氨酰胺的浓度、孵育时间(24小时)、LC-MS分析条件 阅读提示:Methods 'Metabolomics'(如有)及图6A图注 |
| 线粒体功能分析 | 寡霉素A浓度(100 ng/ml,1小时)、BTB06584浓度(200 nM)、TMRM染色条件 阅读提示:Methods 'Mitochondrial function'(如有)及图6G-I图注 |