Foxq1-Wnt5a轴在无细胞基质上激活牙乳头干细胞促进牙本质生成:一项实验室研究

Foxq1-Wnt5a Axis Activation in Dental Papilla Stem Cells Promotes Odontogenesis on Acellular Matrix: A Laboratory Investigation

作者信息Jingjing Ke, Mengdan Zhang, Lixian Kong, Hauman Chung, Xiayi Wu, Tingting Ai, Jinxuan Zheng, Yi Li, Yang Cao, Junqi Ling, Lusai Xiang
PMID41947732
发布时间2026-08
DOI10.1111/iej.70160

实验完整度

包含体外细胞实验、离体牙胚培养、分子机制验证(SPR、Co-IP、双荧光素酶、ChIP)及体内皮下植入动物模型,多层级证据链。

主要模型

E14.5小鼠牙胚 E14.5牙乳头干细胞(DPSCs) 小鼠皮下植入模型(携带DPSCs的脱细胞牙本质支架)

重点核对

Foxq1在牙胚中的时空表达模式(E11.5至P11) Foxq1过表达或抑制对牙胚大小、牙本质面积和成牙本质细胞极性的影响(离体培养7天) WNT5A蛋白(100 ng/mL)对Foxq1抑制引起极性破坏的挽救作用 Foxq1与Wnt5a启动子结合的双荧光素酶报告基因和ChIP验证 体内实验中,Foxq1-OE或Wnt5a-OE DPSCs(1×10^6细胞)在脱细胞牙本质支架中8周后的再生效果

摘要

目的:管状牙本质结构的再生对其生物学功能至关重要,成牙本质细胞的极性对此至关重要,但其机制尚不清楚。基于比较成牙本质细胞和供体匹配成骨细胞的差异基因表达数据,我们假设Foxq1(胚胎发育中的关键调控因子)在极化成牙本质细胞分化中发挥重要作用。本研究旨在探讨Foxq1在成牙本质细胞极化和管状牙本质形成中的作用,并探讨其与Wnt5a信号的关系。方法:我们检测了Foxq1在胚胎至出生后阶段牙胚中的时空表达,并通过局部调控间充质中Foxq1水平研究其对牙齿发育的影响。从胚胎14.5天小鼠胚胎中分离牙乳头干细胞,评估成骨、成牙和极化标志物表达,并进行进一步体外研究。通过免疫共沉淀和表面等离子共振评估Foxq1与Wnt5a的蛋白-蛋白相互作用,通过双荧光素酶报告基因和染色质免疫沉淀评估蛋白-基因调控。这些发现随后在体内细胞接种支架皮下植入动物模型中得到验证。结果:Foxq1在牙间充质中表达,其过表达促进牙本质厚度和成牙本质细胞极化,而抑制则减少牙胚大小并破坏极性和牙本质形成。WNT5A蛋白逆转了Foxq1抑制引起的这些变化。我们证明Foxq1可以结合Wnt5a和Dspp的启动子区域。在体内,Foxq1+DPSCs和Wnt5a+DPSCs均促进了基于原始管状牙本质的新生管状牙本质样结构的再生。然而,在无法接触管状牙本质开口处,仅形成不规则“骨牙本质”。结论:Foxq1-Wnt5a信号轴的激活与脱细胞牙本质支架协同促进管状牙本质再生。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
Foxq1在成牙本质细胞极化和管状牙本质形成中发挥什么作用?其是否通过Wnt5a信号实现?
核心机制
Foxq1作为转录因子直接结合Wnt5a和Dspp启动子区域,激活Wnt5a表达,进而调控细胞极性相关基因(Ezr、Tjp1)表达,促进成牙本质细胞极化和管状牙本质形成。
主要证据
通过离体牙胚培养、DPSCs分化实验、SPR和Co-IP验证蛋白互作、双荧光素酶和ChIP验证启动子结合,以及体内皮下植入模型显示Foxq1-OE和Wnt5a-OE促进管状牙本质样结构再生。
研究意义
该研究揭示了Foxq1-Wnt5a轴在牙本质再生中的新机制,为功能性牙本质再生提供了新见解,具有治疗牙本质缺损的潜在临床应用价值。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

Foxq1时空表达谱分析

确定Foxq1在牙胚发育过程中的表达动态,评估其与成牙本质细胞分化的相关性。

通过ISH、IF和IHC检测E11.5至P11阶段牙胚中Foxq1的表达,并进行定量分析。

2

Foxq1功能获得与丧失实验(离体牙胚培养)

验证Foxq1对牙胚发育、成牙本质细胞极性和牙本质形成的影响。

E14.5牙胚经慢病毒介导Foxq1过表达或抑制,培养7天后进行组织学分析和形态学定量。

3

DPSCs分离、鉴定与分化实验

验证DPSCs的干细胞特性,研究Foxq1对成牙/成骨分化和极性标志物的影响。

从E14.5牙胚分离DPSCs,通过流式细胞术鉴定表面标志物,并通过RT-qPCR、Western blot和染色评估成骨、成牙和极性标志物。

4

Foxq1-Wnt5a相互作用验证

确认Foxq1与Wnt5a的蛋白互作和转录调控关系。

通过IF共定位、Co-IP、SPR检测蛋白互作,通过双荧光素酶报告基因和ChIP验证Foxq1结合Wnt5a和Dspp启动子。

5

体内再生实验

验证Foxq1和Wnt5a在脱细胞牙本质支架上促进管状牙本质再生的能力。

将Foxq1-OE、Wnt5a-OE或对照DPSCs包埋于纤维蛋白原凝胶,接种到脱细胞人牙本质支架,皮下植入KM小鼠8周,通过micro-CT和组织学评估新生组织。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
MAXIscript Sp6/T7体外转录试剂盒Ambion Inc.--
抗FOXQ1多克隆抗体MyBioSource Inc.#MBS9408074
HRP-DAB染色试剂盒R&D--
抗波形蛋白抗体Cell Signaling Technology#5741
抗纤连蛋白抗体Abcam#ab2413
抗WNT5A抗体Abcam#ab64646
抗PARD3抗体Abcam#ab64646
抗TJP1抗体Invitrogen#61-7300
抗EZR抗体Abcam#ab76247
DAPIBeyotime Institute of Biotechnology--
分散酶IIGIBCO#1705041
重组小鼠WNT5A蛋白R&D Systems#645-WN-010
β-甘油磷酸Sigma-Aldrich--
L-抗坏血酸2-磷酸Sigma-Aldrich--
地塞米松Sigma-Aldrich--
胰岛素Sigma-Aldrich--
茜素红SSigma-Aldrich--
油红OCyagen Biosciences--
阿尔辛蓝Cyagen Biosciences--
聚凝胺Santa Cruz Biotechnology--
RIPA裂解液Thermo Fisher Scientific#89900
BCA蛋白定量试剂盒Cwbio--
SDS-PAGE凝胶GenScript Corp.--
PVDF膜Sigma-Aldrich--
抗ZO1抗体Cell Signaling Technology#13663
抗PARD3抗体Proteintech#11085-1-AP
抗EZR抗体Cell Signaling Technology3145
抗GAPDH抗体Servicebio#GB115002
RNA快速纯化试剂盒Shanghai YiShan Biotechnology Co. Ltd.--
PrimeScript逆转录试剂TaKaRa--
qPCR SYBR Green检测试剂Yeasen--
染色质免疫沉淀试剂盒Thermo Fisher Scientific#26156
抗FLAG抗体Sigma#F3165
抗WNT5A抗体Abcamab110073
蛋白A/G琼脂糖珠Santa Cruz Biotechnology--
纤维蛋白原BD Bioscience--
凝血酶----
PCL管----
μCT 50微型计算机断层扫描系统SCANCO Medical AG--

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
Foxq1时空表达分析
胚胎和出生后小鼠组织取材时间点:E11.5、E14.5、E17.5、P1、P3、P5、P7、P9、P11
阅读提示:Methods 2.2, 2.3; Figure 2
牙胚培养与处理
E14.5第一磨牙牙胚;慢病毒处理条件;培养时间7天;培养基成分(DMEM、10% FBS、100 μg/mL抗坏血酸、2 mM L-谷氨酰胺)
阅读提示:Methods 2.4; Figure 3
DPSCs分离、鉴定与分化
DPSCs来源:E14.5小鼠牙胚;流式检测的CD标志物;成骨、成脂、成软骨诱导及检测方法;成骨诱导培养基成分(2 mM β-甘油磷酸、100 μM L-抗坏血酸2-磷酸、10 nM地塞米松)
阅读提示:Methods 2.5, 2.6; Figure S1
Foxq1-Wnt5a相互作用验证
SPR实验参数(FOXQ1浓度20 μg/mL,WNT5A浓度0-100 nM);Co-IP使用的抗体和洗脱条件;双荧光素酶报告基因的启动子构建;ChIP的细胞数量和超声条件
阅读提示:Methods 2.10, 2.11, 2.12, 2.13; Figure 5
体内再生实验
DPSCs数量(1×10^6);Fg凝胶浓度(30-56 mg/mL);皮下植入时间8周;支架类型(脱细胞人牙本质);小鼠品系和年龄(KM小鼠,5周龄)
阅读提示:Methods 2.16; Figure 6