脂肪间充质干细胞肽5通过靶向丙酮酸羧化酶或p50协调PI3K/AKT/mTOR-自噬和NF-κB/IL-6信号传导减轻增生性瘢痕

Adipose-derived stem cell peptide 5 alleviates hypertrophic scarring through targeting pyruvate carboxylase or p50 to coordinate PI3K/AKT/mTOR-autophagy and NF-κB/IL-6 signaling

作者信息Ling Chen, Enyuan Zhang, Siqi Zeng, Qiyue Yan, Jingyun Li, Qian Li, Jun Li, Zezhang Zhu
PMID42445555
发布时间2026-06-05
DOI10.1093/burnst/tkag040

实验完整度

包含体外细胞实验(成纤维细胞、巨噬细胞共培养、HUVEC)、功能验证(CCK-8等)、机制验证(pull-down、CETSA、SPR、拯救实验)及兔和猪体内瘢痕模型验证。

主要模型

人原代增生性瘢痕成纤维细胞 RAW264.7巨噬细胞-成纤维细胞共培养 人脐静脉内皮细胞(HUVEC) 兔耳增生性瘢痕模型和巴马小型猪背部瘢痕模型

重点核对

ADSCP5处理浓度为25 μM,处理时间24-48小时 兔耳瘢痕模型:200 μM ADSCP5局部皮下注射,每7天一次,共4次 猪背部瘢痕模型:200 μM ADSCP5皮内注射,每7天一次,共4次 NF-κB抑制剂BAY 11-7082(10 nM)和AKT激活剂SC79(40 μM)用于拯救实验 ROS清除剂NAC(1 mM)预处理2小时

摘要

背景:增生性瘢痕是临床面临的主要挑战,治疗方法有限。脂肪间充质干细胞(ADSCs)在抑制病理性瘢痕形成中发挥重要作用,但其潜在机制仍不清楚。本研究旨在探讨来源于脂肪间充质干细胞条件培养基的新型肽——脂肪间充质干细胞肽5(ADSCP5)的功能、机制及治疗潜力。方法:我们采用了体外增生性瘢痕成纤维细胞、巨噬细胞-成纤维细胞共培养和人脐静脉内皮细胞(HUVEC)实验、RNA测序、通路分析、肽pull-down、分子对接、细胞热移位分析、表面等离子体共振、免疫荧光共定位分析、蛋白质印迹、拯救实验、活性氧(ROS)、自噬检测、线粒体膜电位检测和非靶向代谢组学。ADSCP5的疗效在兔和猪瘢痕模型中得到了验证。结果:在增生性瘢痕成纤维细胞中,ADSCP5显著下调胶原蛋白基因(COL1A1、COL1A2和COL3A1)和α-平滑肌肌动蛋白的表达,而不影响细胞增殖、凋亡或迁移。转录组学、富集和蛋白质印迹分析证实,ADSCP5降低了磷酸化p65(p-p65,NF-κB亚基)、p-PI3K、p-AKT和p-mTOR的蛋白水平。此外,ADSCP5降低了IL-6的转录。机制上,ADSCP5直接与丙酮酸羧化酶或NF-κB亚基p50结合。这种相互作用导致PC下调或p50上调,最终抑制胶原蛋白表达,这一发现通过拯救实验得以证实。此外,ADSCP5诱导ROS产生和自噬,改变整体代谢,并调节巨噬细胞-成纤维细胞串扰以抑制纤维化。它还表现出在HUVEC中的抗血管生成作用。在兔和猪瘢痕模型中,ADSCP5治疗有效减轻了胶原沉积和瘢痕增生,增加了巨噬细胞数量(CD68增加),减少了血管生成(VEGFA和CD34减少),促进了自噬(p62减少)。结论:总之,本研究证明ADSCP5通过直接结合PC和p50,抑制PI3K/AKT/mTOR和NF-κB通路,减少IL-6和胶原蛋白产生,促进ROS和自噬,并调节代谢、巨噬细胞和血管生成反应,从而减轻增生性瘢痕。这些发现将ADSCP5定位为增生性瘢痕预防和治疗的有前景的治疗药物。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
ADSCP5能否通过调节特定信号通路和细胞间相互作用来抑制增生性瘢痕形成,其机制是什么?
核心机制
ADSCP5直接结合丙酮酸羧化酶(PC)或NF-κB亚基p50,导致PC下调或p50上调,从而抑制PI3K/AKT/mTOR和NF-κB/IL-6信号通路,诱导ROS产生和自噬,并调节代谢、巨噬细胞和血管生成反应,最终减少胶原蛋白沉积。
主要证据
在体外,ADSCP5抑制胶原基因蛋白表达而不影响增殖、凋亡或迁移;分子实验证实与PC和p50直接结合;体内兔和猪模型中,ADSCP5减少胶原沉积和瘢痕增生。
研究意义
ADSCP5有望成为增生性瘢痕预防和治疗的治疗药物,为开发基于分泌组的新型抗纤维化策略提供理论基础。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

ADSCP5对瘢痕成纤维细胞胶原和α-SMA表达的影响

验证ADSCP5是否能抑制瘢痕成纤维细胞中胶原蛋白和肌成纤维细胞标志物的表达,并排除对增殖、凋亡和迁移的影响。

使用25 μM ADSCP5或乱序肽(Sc)处理人原代增生性瘢痕成纤维细胞,通过CCK-8、流式细胞术、划痕实验、Transwell实验、qPCR和Western blot检测细胞活力、凋亡、迁移以及COL1A1、COL1A2、COL3A1和ACTA2的mRNA和蛋白表达。

2

转录组学和通路分析揭示潜在靶点

通过RNA测序和生物信息学分析,确定ADSCP5处理后差异表达基因及相关信号通路。

对ADSCP5或Sc处理的瘢痕成纤维细胞进行RNA测序,鉴定DEGs,并进行KEGG和GSEA富集分析,随后用Western blot验证PI3K/AKT/mTOR和NF-κB通路蛋白变化。

3

鉴定ADSCP5直接结合蛋白PC和p50

明确ADSCP5的细胞内靶蛋白,并验证其结合能力。

通过pull-down结合质谱鉴定候选蛋白,分子对接预测结合模式,CETSA和SPR验证直接结合,免疫荧光共定位观察细胞定位,并检测PC和p50蛋白表达变化。

4

功能验证与靶点拯救实验

通过过表达PC或敲低p50,以及使用通路激活剂或抑制剂,验证ADSCP5的作用是否依赖于PC和p50以及相关通路。

过表达PC或敲低p50,或联合NF-κB抑制剂(BAY 11-7082)或AKT激活剂(SC79),观察对ADSCP5抑制胶原蛋白表达的影响。

5

ADSCP5诱导ROS产生、线粒体膜电位降低和自噬

探索ADSCP5对细胞氧化应激状态和自噬的影响。

用荧光探针检测ROS水平,JC-1染色检测线粒体膜电位,mCherry-EGFP-LC3B报告基因检测自噬流,Western blot检测自噬相关蛋白p62和LC3,并使用ROS清除剂NAC验证ROS的作用。

6

非靶向代谢组学分析

研究ADSCP5对瘢痕成纤维细胞代谢谱的影响,尤其是与PC相关的TCA循环。

对ADSCP5或Sc处理的细胞进行LC-MS/MS非靶向代谢组学分析,鉴定差异代谢物并富集代谢通路,重点关注TCA循环相关代谢物。

7

巨噬细胞-成纤维细胞共培养和HUVEC管形成实验

评估ADSCP5对巨噬细胞表型及其对成纤维细胞胶原表达的影响,以及对内皮细胞血管生成的影响。

ADSCP5处理RAW264.7细胞,qPCR检测M1/M2标志物,并收集条件培养基处理HSFs检测胶原表达;ADSCP5处理HUVEC进行管形成实验。

8

兔耳瘢痕模型的药效评价

在兔耳增生性瘢痕模型中验证ADSCP5的药效。

在兔耳上制造全层皮肤缺损,14天后开始皮下注射ADSCP5或对照,每7天一次共4次,第42天取材,进行大体、组织学染色(HE、Masson)、免疫组化(CD34、VEGFA、CD68、CD206)分析。

9

猪背部瘢痕模型的药效评价

在猪背部瘢痕模型中验证ADSCP5的药效和组织学改善。

在巴马小型猪背部制造全层皮肤缺损,14天后皮内注射ADSCP5或对照,每7天一次共4次,第42天取材,进行HE、Masson、天狼星红染色及免疫组化(p62、CD68)。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
成纤维细胞培养基ScienCell2301
DMEM培养基----
胎牛血清----
青霉素-链霉素----
脂肪间充质干细胞肽5Shanghai Peptide Biotechnology Co., Ltd--
乱序对照肽Shanghai Peptide Biotechnology Co., Ltd--
BAY 11-7082MCE--
SC79TargetMOIT2274
N-乙酰半胱氨酸MedChemExpressHY-B0215
RNA提取试剂盒VazymeRC112-1
cDNA合成试剂盒VazymeQ711-02
ABI Vii7----
RIPA裂解液BeyotimeP0013B
PVDF膜----
CCK-8试剂盒VazymeA311-01
Annexin V-FITC/PI凋亡检测试剂盒VazymeA211-01
流式细胞仪Beckman Coulter--
Transwell小室----
结晶紫----
Dynabeads M-280链霉亲和素磁珠Invitrogen11205D
Pierce银染试剂盒Thermo Fisher24600
OpenSPR系统Nicoya Lifesciences Inc.--
CM5传感芯片Cytiva--
Leica STELLARIS STED显微镜Leica--
基质胶Corning356234
活性氧检测试剂盒----
JC-1检测试剂盒BeyotimeC2006
mCherry-EGFP-LC3B报告质粒----
Lipo3000转染试剂----
riboFECT CP转染试剂盒RiboBio--
Q Exactive质谱仪Thermo Fisher--
异氟烷----

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
细胞处理
ADSCP5处理浓度25 μM,处理时间为24-48小时
阅读提示:Methods:Cell culture and treatment
拯救实验
NF-κB抑制剂BAY 11-7082浓度10 nM,AKT激活剂SC79浓度40 μM(DMSO配制),处理36小时;ROS清除剂NAC浓度1 mM,预处理2小时
阅读提示:Methods:Cell culture and treatment
兔耳瘢痕模型
兔品种(新西兰白兔)、性别(雄性)、体重(2.5 kg)、每耳6个1 cm直径全层缺损、ADSCP5剂量(200 μM,100 μl)、注射方式(皮下)、注射时间(D14起每7天一次共4次)、取材时间(D42)
阅读提示:Methods:Establishment of a hypertrophic scar model in rabbit ears;Figure 8 legend
猪背部瘢痕模型
猪品种(Bama小型猪)、性别(雌性)、体重(14 kg)、每侧6个3×3 cm全层创面、ADSCP5剂量(200 μM,100 μl)、注射方式(皮内)、注射时间(D14起每7天一次共4次)、取材时间(D42)
阅读提示:Methods:Establishment of a dorsal scar model in Bama mini-pigs;Figure 9 legend
统计分析方法
双组比较用非配对t检验,单因素多组用单因素方差分析(Tukey),双因素用双因素方差分析(Sidak或Tukey),P<0.05为有统计学意义
阅读提示:Methods:Statistical analysis