ADSCP5对瘢痕成纤维细胞胶原和α-SMA表达的影响
验证ADSCP5是否能抑制瘢痕成纤维细胞中胶原蛋白和肌成纤维细胞标志物的表达,并排除对增殖、凋亡和迁移的影响。
使用25 μM ADSCP5或乱序肽(Sc)处理人原代增生性瘢痕成纤维细胞,通过CCK-8、流式细胞术、划痕实验、Transwell实验、qPCR和Western blot检测细胞活力、凋亡、迁移以及COL1A1、COL1A2、COL3A1和ACTA2的mRNA和蛋白表达。
Adipose-derived stem cell peptide 5 alleviates hypertrophic scarring through targeting pyruvate carboxylase or p50 to coordinate PI3K/AKT/mTOR-autophagy and NF-κB/IL-6 signaling
包含体外细胞实验(成纤维细胞、巨噬细胞共培养、HUVEC)、功能验证(CCK-8等)、机制验证(pull-down、CETSA、SPR、拯救实验)及兔和猪体内瘢痕模型验证。
人原代增生性瘢痕成纤维细胞 RAW264.7巨噬细胞-成纤维细胞共培养 人脐静脉内皮细胞(HUVEC) 兔耳增生性瘢痕模型和巴马小型猪背部瘢痕模型
ADSCP5处理浓度为25 μM,处理时间24-48小时 兔耳瘢痕模型:200 μM ADSCP5局部皮下注射,每7天一次,共4次 猪背部瘢痕模型:200 μM ADSCP5皮内注射,每7天一次,共4次 NF-κB抑制剂BAY 11-7082(10 nM)和AKT激活剂SC79(40 μM)用于拯救实验 ROS清除剂NAC(1 mM)预处理2小时
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
验证ADSCP5是否能抑制瘢痕成纤维细胞中胶原蛋白和肌成纤维细胞标志物的表达,并排除对增殖、凋亡和迁移的影响。
使用25 μM ADSCP5或乱序肽(Sc)处理人原代增生性瘢痕成纤维细胞,通过CCK-8、流式细胞术、划痕实验、Transwell实验、qPCR和Western blot检测细胞活力、凋亡、迁移以及COL1A1、COL1A2、COL3A1和ACTA2的mRNA和蛋白表达。
通过RNA测序和生物信息学分析,确定ADSCP5处理后差异表达基因及相关信号通路。
对ADSCP5或Sc处理的瘢痕成纤维细胞进行RNA测序,鉴定DEGs,并进行KEGG和GSEA富集分析,随后用Western blot验证PI3K/AKT/mTOR和NF-κB通路蛋白变化。
明确ADSCP5的细胞内靶蛋白,并验证其结合能力。
通过pull-down结合质谱鉴定候选蛋白,分子对接预测结合模式,CETSA和SPR验证直接结合,免疫荧光共定位观察细胞定位,并检测PC和p50蛋白表达变化。
通过过表达PC或敲低p50,以及使用通路激活剂或抑制剂,验证ADSCP5的作用是否依赖于PC和p50以及相关通路。
过表达PC或敲低p50,或联合NF-κB抑制剂(BAY 11-7082)或AKT激活剂(SC79),观察对ADSCP5抑制胶原蛋白表达的影响。
探索ADSCP5对细胞氧化应激状态和自噬的影响。
用荧光探针检测ROS水平,JC-1染色检测线粒体膜电位,mCherry-EGFP-LC3B报告基因检测自噬流,Western blot检测自噬相关蛋白p62和LC3,并使用ROS清除剂NAC验证ROS的作用。
研究ADSCP5对瘢痕成纤维细胞代谢谱的影响,尤其是与PC相关的TCA循环。
对ADSCP5或Sc处理的细胞进行LC-MS/MS非靶向代谢组学分析,鉴定差异代谢物并富集代谢通路,重点关注TCA循环相关代谢物。
评估ADSCP5对巨噬细胞表型及其对成纤维细胞胶原表达的影响,以及对内皮细胞血管生成的影响。
ADSCP5处理RAW264.7细胞,qPCR检测M1/M2标志物,并收集条件培养基处理HSFs检测胶原表达;ADSCP5处理HUVEC进行管形成实验。
在兔耳增生性瘢痕模型中验证ADSCP5的药效。
在兔耳上制造全层皮肤缺损,14天后开始皮下注射ADSCP5或对照,每7天一次共4次,第42天取材,进行大体、组织学染色(HE、Masson)、免疫组化(CD34、VEGFA、CD68、CD206)分析。
在猪背部瘢痕模型中验证ADSCP5的药效和组织学改善。
在巴马小型猪背部制造全层皮肤缺损,14天后皮内注射ADSCP5或对照,每7天一次共4次,第42天取材,进行HE、Masson、天狼星红染色及免疫组化(p62、CD68)。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | 成纤维细胞培养基 | ScienCell | 2301 |
| DMEM培养基 | -- | -- | |
| 胎牛血清 | -- | -- | |
| 青霉素-链霉素 | -- | -- | |
| 细胞处理 | 脂肪间充质干细胞肽5 | Shanghai Peptide Biotechnology Co., Ltd | -- |
| 乱序对照肽 | Shanghai Peptide Biotechnology Co., Ltd | -- | |
| BAY 11-7082 | MCE | -- | |
| SC79 | TargetMOI | T2274 | |
| N-乙酰半胱氨酸 | MedChemExpress | HY-B0215 | |
| RNA提取和qPCR | RNA提取试剂盒 | Vazyme | RC112-1 |
| cDNA合成试剂盒 | Vazyme | Q711-02 | |
| ABI Vii7 | -- | -- | |
| 蛋白质印迹 | RIPA裂解液 | Beyotime | P0013B |
| PVDF膜 | -- | -- | |
| 细胞增殖检测 | CCK-8试剂盒 | Vazyme | A311-01 |
| 细胞凋亡检测 | Annexin V-FITC/PI凋亡检测试剂盒 | Vazyme | A211-01 |
| 流式细胞术 | 流式细胞仪 | Beckman Coulter | -- |
| 细胞迁移 | Transwell小室 | -- | -- |
| 结晶紫 | -- | -- | |
| Pull-down实验 | Dynabeads M-280链霉亲和素磁珠 | Invitrogen | 11205D |
| Pierce银染试剂盒 | Thermo Fisher | 24600 | |
| 表面等离子体共振 | OpenSPR系统 | Nicoya Lifesciences Inc. | -- |
| CM5传感芯片 | Cytiva | -- | |
| 免疫荧光 | Leica STELLARIS STED显微镜 | Leica | -- |
| 管形成实验 | 基质胶 | Corning | 356234 |
| ROS检测 | 活性氧检测试剂盒 | -- | -- |
| 线粒体膜电位检测 | JC-1检测试剂盒 | Beyotime | C2006 |
| 自噬流分析 | mCherry-EGFP-LC3B报告质粒 | -- | -- |
| 质粒转染 | Lipo3000转染试剂 | -- | -- |
| siRNA转染 | riboFECT CP转染试剂盒 | RiboBio | -- |
| 代谢组学 | Q Exactive质谱仪 | Thermo Fisher | -- |
| 动物实验 | 异氟烷 | -- | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 细胞处理 | ADSCP5处理浓度25 μM,处理时间为24-48小时 阅读提示:Methods:Cell culture and treatment |
| 拯救实验 | NF-κB抑制剂BAY 11-7082浓度10 nM,AKT激活剂SC79浓度40 μM(DMSO配制),处理36小时;ROS清除剂NAC浓度1 mM,预处理2小时 阅读提示:Methods:Cell culture and treatment |
| 兔耳瘢痕模型 | 兔品种(新西兰白兔)、性别(雄性)、体重(2.5 kg)、每耳6个1 cm直径全层缺损、ADSCP5剂量(200 μM,100 μl)、注射方式(皮下)、注射时间(D14起每7天一次共4次)、取材时间(D42) 阅读提示:Methods:Establishment of a hypertrophic scar model in rabbit ears;Figure 8 legend |
| 猪背部瘢痕模型 | 猪品种(Bama小型猪)、性别(雌性)、体重(14 kg)、每侧6个3×3 cm全层创面、ADSCP5剂量(200 μM,100 μl)、注射方式(皮内)、注射时间(D14起每7天一次共4次)、取材时间(D42) 阅读提示:Methods:Establishment of a dorsal scar model in Bama mini-pigs;Figure 9 legend |
| 统计分析方法 | 双组比较用非配对t检验,单因素多组用单因素方差分析(Tukey),双因素用双因素方差分析(Sidak或Tukey),P<0.05为有统计学意义 阅读提示:Methods:Statistical analysis |