诱导DMD E37包含
验证通过改变转录延伸速率能否调控DMD外显子37(E37)的选择性剪接。
使用转录延伸抑制剂camptothecin(CPT)和促进剂trichostatin A(TSA)处理野生型HEK293T细胞,通过RT-PCR和qPCR检测E37包含水平。
Transcriptional adaptation upregulates utrophin in Duchenne muscular dystrophy
包含细胞系实验(HEK293T等)、患者肌管样本、小鼠细胞系,并进行了功能验证(NMD阻断、DMD过表达)和机制验证(RNA-seq)。
HEK293T细胞 HAP1细胞 HeLa细胞 DMD患者来源的肌管 C2C12小鼠骨骼肌细胞系
使用1 µM TSA处理24小时以促进DMD E37包含 DMDPTC/+ HEK293T细胞系的建立 通过siRNA敲低UPF1和SMG6阻断NMD 使用剪接转换ASO(i52-5ss, i6-5ss, i51-5ss)处理肌管 通过转染活性核酶小基因(DMDT3H38-aHHR)诱导DMD mRNA降解
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
验证通过改变转录延伸速率能否调控DMD外显子37(E37)的选择性剪接。
使用转录延伸抑制剂camptothecin(CPT)和促进剂trichostatin A(TSA)处理野生型HEK293T细胞,通过RT-PCR和qPCR检测E37包含水平。
引入PTC突变以模拟DMD患者中的无义突变,用于研究DMD突变型mRNA的降解及其下游效应。
使用CRISPR-Cas9技术,通过引导RNA靶向DMD E37,在HEK293T细胞中引入20核苷酸缺失,产生杂合DMDPTC/+细胞系。
验证DMD突变型mRNA降解(通过NMD)是否是UTRN上调的必要条件,以及TA是否参与其中。
在DMDPTC/+细胞中敲低NMD关键因子UPF1和SMG6,检测DMD和UTRN的mRNA及pre-mRNA水平;同时过表达dystrophin蛋白,观察对UTRN上调的影响。
在野生型细胞中验证DMD突变型mRNA降解或核酶介导的RNA切割能否独立于dystrophin蛋白缺失而触发UTRN上调。
构建含有PTC(E338X, E1421X, Q1624X)的DMD小基因和含有自切割核酶(T3H38-HHR)的野生型DMD小基因,转染至野生型HEK293T、HAP1、HeLa细胞和肌管中,检测UTRN mRNA水平。
验证在DMD患者来源的肌管中,UTRN上调是否与DMD mRNA降解相关,并测试ASO和核酶小基因的治疗潜力。
检测来自不同DMD患者(E118X, ΔE51-54, ΔE52, R2905X)的肌管中DMD和UTRN的mRNA及pre-mRNA水平;使用ASO i51-5ss恢复DMDΔE52肌管的阅读框,并检测UTRN水平变化;转染活性核酶小基因(DMDT3H38-aHHR)观察UTRN表达。
探索剪接转换ASO通过诱导DMD移码外显子跳跃(引入PTC)能否触发TA并导致UTRN上调,包括在人类肌管和小鼠C2C12细胞中。
使用靶向DMD外显子6(i6-5ss)、52(i52-5ss)和51(i51-5ss)的剪接转换ASO处理野生型肌管,检测DMD mRNA降解和UTRN上调情况;并在C2C12细胞中靶向Dmd外显子22和52进行验证。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | DMEM培养基 | Gibco | -- |
| 胎牛血清 | Sigma | -- | |
| 青霉素-链霉素 | Gibco | -- | |
| IMDM培养基 | -- | -- | |
| 骨骼肌细胞生长培养基 | Promocell | -- | |
| 细胞分化 | 骨骼肌细胞分化培养基 | Promocell | -- |
| 马血清 | -- | -- | |
| 药物处理 | 喜树碱 | Sigma | C9911 |
| 曲古抑菌素A | Sigma | T8552 | |
| 转染 | Lipofectamine 3000转染试剂 | Thermo Fisher Scientific | -- |
| 质粒构建 | Gibson组装克隆试剂盒 | New England Biolabs | -- |
| HiFi克隆试剂盒 | New England Biolabs | -- | |
| RNA提取 | Trizol试剂 | Invitrogen | -- |
| 逆转录 | Superscript III逆转录酶 | Thermo Fisher Scientific | -- |
| MAXIMA cDNA合成试剂盒 | Thermo Fisher Scientific | K1671 | |
| PCR | Gotaq DNA聚合酶 | Promega | -- |
| DyNAmo ColorFlash SYBR Green PCR预混液 | Thermo Fisher Scientific | F-416 | |
| SYBR Safe核酸染料 | Invitrogen | -- | |
| qPCR | QuantStudio 7 Pro实时荧光定量PCR系统 | Thermo Fisher Scientific | A43185 |
| Western blot | RIPA裂解缓冲液 | Sigma | -- |
| Tris-醋酸蛋白凝胶 | -- | -- | |
| PVDF膜 | Bio-Rad | -- | |
| 抗dystrophin抗体 | Proteintech | 68120-1-Ig | |
| 抗utrophin抗体 | Proteintech | 29133-1-AP | |
| 抗H3K9ac抗体 | Proteintech | 29133-1-AP | |
| 抗微管蛋白抗体 | Sigma | T6557 | |
| 动物实验 | T3H38-HHR锤头状核酶 | -- | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| DMD E37包含诱导 | TSA浓度、处理时间 阅读提示:Methods: Cell culture and pharmacological treatments; Fig. 1a |
| DMDPTC/+细胞系构建 | 引导RNA序列、质粒、筛选浓度 阅读提示:Methods: Generation of DMDPTC/+ HEK293T cells |
| NMD阻断和DMD过表达 | siRNA浓度、转染时间、质粒类型 阅读提示:Methods: Cell culture and pharmacological treatments; Fig. 2 |
| 小基因和核酶介导的RNA降解 | 小基因类型(PTC或核酶)、转染剂量 阅读提示:Methods: Dystrophin expression plasmid; Fig. 3 |
| 患者肌管ASO实验 | ASO序列、浓度、转染效率 阅读提示:Methods: ASO and minigene transfections in skeletal muscle cells; Fig. 4 |
| C2C12小鼠细胞实验 | ASO序列、浓度、分化条件 阅读提示:Methods: C2C12 cell culture and differentiation; Extended Data Fig. 9 |