转录适应在杜氏肌营养不良症中上调utrophin表达

Transcriptional adaptation upregulates utrophin in Duchenne muscular dystrophy

作者信息Lara Falcucci, Christopher M Dooley, Douglas Adamoski, Thomas Juan, Justin Martinez, Angelina M Georgieva, Kamel Mamchaoui, Cansu Cirzi, Didier Y R Stainier
PMID39939773
期刊Nature
发布时间2025-03
DOI10.1038/s41586-024-08539-x

实验完整度

高

包含细胞系实验(HEK293T等)、患者肌管样本、小鼠细胞系,并进行了功能验证(NMD阻断、DMD过表达)和机制验证(RNA-seq)。

主要模型

HEK293T细胞 HAP1细胞 HeLa细胞 DMD患者来源的肌管 C2C12小鼠骨骼肌细胞系

重点核对

使用1 µM TSA处理24小时以促进DMD E37包含 DMDPTC/+ HEK293T细胞系的建立 通过siRNA敲低UPF1和SMG6阻断NMD 使用剪接转换ASO(i52-5ss, i6-5ss, i51-5ss)处理肌管 通过转染活性核酶小基因(DMDT3H38-aHHR)诱导DMD mRNA降解

摘要

杜氏肌营养不良症(DMD)是一种由DMD基因突变引起的肌肉退行性疾病,该基因编码肌营养不良蛋白。Utrophin(UTRN)是DMD的遗传和功能旁系同源物,在某些DMD患者中表达上调。为进一步研究这种UTRN上调,我们首先通过在其一个选择性剪接外显子中引入提前终止密码子(PTC),开发了一种诱导型信使RNA(mRNA)降解系统。包含PTC的外显子触发DMD突变型mRNA的降解和UTRN的上调。值得注意的是,阻断无义介导的mRNA衰变可逆转UTRN上调,而过表达DMD则不会。此外,在野生型细胞中过表达DMD PTC小基因会导致UTRN上调,含有自切割核酶的野生型DMD小基因也是如此。为了将这些发现置于治疗背景下,我们使用剪接转换反义寡核苷酸(ASO)诱导DMD的移码外显子跳跃,旨在引入PTC。我们发现这些ASO可导致UTRN上调。此外,当使用ASO恢复来自DMDΔE52患者的肌管中DMD的阅读框(一种实际的DMD治疗)时,UTRN上调减少。总之,这些结果表明基于mRNA衰变的机制——称为转录适应——在DMD PTC患者的UTRN上调中发挥关键作用,并揭示了ASO以及核酶在通过转录适应诱导遗传补偿方面的未开发治疗应用。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
在携带移码或无义突变的DMD患者中,UTRN表达上调的分子机制是什么?
核心机制
DMD突变型mRNA的降解(通过NMD途径)通过转录适应机制触发UTRN的转录上调,这一过程不依赖于dystrophin蛋白的缺失。
主要证据
在DMDPTC/+ HEK293T细胞中诱导E37包含导致DMD mRNA降解和UTRN上调;阻断NMD会逆转UTRN上调而DMD过表达则无影响;患者肌管和ASO处理实验均证实UTRN上调与DMD mRNA衰变相关。
研究意义
该研究首次在人类细胞中证明了转录适应机制,并揭示了剪接转换ASO和核酶在通过转录适应诱导遗传补偿方面的未开发治疗应用,为DMD及其他遗传病的治疗提供了新思路。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

诱导DMD E37包含

验证通过改变转录延伸速率能否调控DMD外显子37(E37)的选择性剪接。

使用转录延伸抑制剂camptothecin(CPT)和促进剂trichostatin A(TSA)处理野生型HEK293T细胞,通过RT-PCR和qPCR检测E37包含水平。

2

构建DMDPTC/+细胞系

引入PTC突变以模拟DMD患者中的无义突变,用于研究DMD突变型mRNA的降解及其下游效应。

使用CRISPR-Cas9技术,通过引导RNA靶向DMD E37,在HEK293T细胞中引入20核苷酸缺失,产生杂合DMDPTC/+细胞系。

3

验证NMD和TA在UTRN上调中的作用

验证DMD突变型mRNA降解(通过NMD)是否是UTRN上调的必要条件,以及TA是否参与其中。

在DMDPTC/+细胞中敲低NMD关键因子UPF1和SMG6,检测DMD和UTRN的mRNA及pre-mRNA水平;同时过表达dystrophin蛋白,观察对UTRN上调的影响。

4

通过小基因验证TA触发UTRN上调

在野生型细胞中验证DMD突变型mRNA降解或核酶介导的RNA切割能否独立于dystrophin蛋白缺失而触发UTRN上调。

构建含有PTC(E338X, E1421X, Q1624X)的DMD小基因和含有自切割核酶(T3H38-HHR)的野生型DMD小基因,转染至野生型HEK293T、HAP1、HeLa细胞和肌管中,检测UTRN mRNA水平。

5

在患者肌管中验证UTRN上调

验证在DMD患者来源的肌管中,UTRN上调是否与DMD mRNA降解相关,并测试ASO和核酶小基因的治疗潜力。

检测来自不同DMD患者(E118X, ΔE51-54, ΔE52, R2905X)的肌管中DMD和UTRN的mRNA及pre-mRNA水平;使用ASO i51-5ss恢复DMDΔE52肌管的阅读框,并检测UTRN水平变化;转染活性核酶小基因(DMDT3H38-aHHR)观察UTRN表达。

6

评估剪接转换ASO诱导UTRN上调

探索剪接转换ASO通过诱导DMD移码外显子跳跃(引入PTC)能否触发TA并导致UTRN上调,包括在人类肌管和小鼠C2C12细胞中。

使用靶向DMD外显子6(i6-5ss)、52(i52-5ss)和51(i51-5ss)的剪接转换ASO处理野生型肌管,检测DMD mRNA降解和UTRN上调情况;并在C2C12细胞中靶向Dmd外显子22和52进行验证。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
DMEM培养基Gibco--
胎牛血清Sigma--
青霉素-链霉素Gibco--
IMDM培养基----
骨骼肌细胞生长培养基Promocell--
骨骼肌细胞分化培养基Promocell--
马血清----
喜树碱SigmaC9911
曲古抑菌素ASigmaT8552
Lipofectamine 3000转染试剂Thermo Fisher Scientific--
Gibson组装克隆试剂盒New England Biolabs--
HiFi克隆试剂盒New England Biolabs--
Trizol试剂Invitrogen--
Superscript III逆转录酶Thermo Fisher Scientific--
MAXIMA cDNA合成试剂盒Thermo Fisher ScientificK1671
Gotaq DNA聚合酶Promega--
DyNAmo ColorFlash SYBR Green PCR预混液Thermo Fisher ScientificF-416
SYBR Safe核酸染料Invitrogen--
QuantStudio 7 Pro实时荧光定量PCR系统Thermo Fisher ScientificA43185
RIPA裂解缓冲液Sigma--
Tris-醋酸蛋白凝胶----
PVDF膜Bio-Rad--
抗dystrophin抗体Proteintech68120-1-Ig
抗utrophin抗体Proteintech29133-1-AP
抗H3K9ac抗体Proteintech29133-1-AP
抗微管蛋白抗体SigmaT6557
T3H38-HHR锤头状核酶----

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
DMD E37包含诱导
TSA浓度、处理时间
阅读提示:Methods: Cell culture and pharmacological treatments; Fig. 1a
DMDPTC/+细胞系构建
引导RNA序列、质粒、筛选浓度
阅读提示:Methods: Generation of DMDPTC/+ HEK293T cells
NMD阻断和DMD过表达
siRNA浓度、转染时间、质粒类型
阅读提示:Methods: Cell culture and pharmacological treatments; Fig. 2
小基因和核酶介导的RNA降解
小基因类型(PTC或核酶)、转染剂量
阅读提示:Methods: Dystrophin expression plasmid; Fig. 3
患者肌管ASO实验
ASO序列、浓度、转染效率
阅读提示:Methods: ASO and minigene transfections in skeletal muscle cells; Fig. 4
C2C12小鼠细胞实验
ASO序列、浓度、分化条件
阅读提示:Methods: C2C12 cell culture and differentiation; Extended Data Fig. 9