构建 ABC 增强子-基因图谱
预测 131 种生物样本中的增强子-基因连接
使用 ABC 模型,结合染色质可及性(ATAC-seq 或 DNase-seq)和 H3K27ac ChIP-seq 数据,计算每个候选元件与基因的 ABC 评分,并定义增强子-基因连接。
Genome-wide enhancer maps link risk variants to disease genes
包含基于131种生物样本的ABC图谱构建、CRISPRi-FlowFISH功能验证、CRISPRi-qPCR验证、THP1细胞线粒体膜电位测定及GWAS变异富集分析等多层级实验验证。
THP1 细胞系(单核细胞样) BJAB 细胞系(B 细胞样) Jurkat 细胞系(T 细胞样) GM12878 细胞系(淋巴母细胞样) 原代免疫细胞(单核吞噬细胞、T 细胞亚群、树突状细胞等)
CRISPRi 实验中使用的 gRNA 靶向序列和阴性对照 LPS 刺激条件(浓度和时间) 细胞系种类(THP1、BJAB、Jurkat、GM12878 等) ABC 模型预测的增强子-基因连接评分阈值(ABC score ≥0.015) 线粒体膜电位检测使用 MitoTracker Red 和 MitoTracker Green
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
预测 131 种生物样本中的增强子-基因连接
使用 ABC 模型,结合染色质可及性(ATAC-seq 或 DNase-seq)和 H3K27ac ChIP-seq 数据,计算每个候选元件与基因的 ABC 评分,并定义增强子-基因连接。
验证 ABC 预测的增强子-基因连接是否与实验扰动结果一致
将 ABC 预测与 CRISPRi-FlowFISH 实验数据进行比较,计算精确率-召回率曲线下面积(AUPRC)。
评估与疾病相关的遗传变异在 ABC 增强子中的富集程度
对 72 种疾病和复杂性状的精细映射变异(PIP ≥ 10%)与 ABC 增强子进行重叠分析,计算富集倍数。
将非编码 GWAS 信号连接到候选靶基因
对于每个 trait,将精细映射变异与富集生物样本中的 ABC 增强子取交集,并将每个可信集分配给具有最高 ABC 分数的基因(ABC-Max)。
验证预测的 PPIF 增强子是否调节 PPIF 表达以及线粒体功能
在 PPIF 周围 712 Kb 区域内,使用 CRISPRi-FlowFISH 扰动所有可及元件,鉴定调节 PPIF 表达的增强子;随后在 THP1 细胞中用 CRISPRi 靶向 PPIF 增强子或启动子,检测 MitoTracker Red 信号变化。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | RPMI-1640 培养基 | Thermo Fisher Scientific | -- |
| 胎牛血清(热灭活) | Thermo Fisher Scientific | -- | |
| 细胞刺激 | 脂多糖(大肠杆菌 K12) | Invivogen | -- |
| 佛波醇 12-十四酸酯 13-乙酸酯 | Sigma | -- | |
| 抗 CD40 抗体 | Invitrogen | -- | |
| 抗 IgM 抗体 | Sigma | -- | |
| 抗 CD3 抗体 | Biolegend | -- | |
| ATAC-seq | 细胞核分离 EZ 裂解缓冲液 | SIGMA | -- |
| 转座酶 TDE1 | Illumina | 15028212 | |
| SPRI 磁珠 | Agencourt | A63881 | |
| NEBNext HiFi 2x PCR 预混液 | NEB | M0541 | |
| ChIP-seq | 甲醛 | Thermo Scientific | 28906 |
| H3K27ac 抗体 | Active Motif | 39685 | |
| 蛋白 A 磁珠 | Invitrogen | 10008D | |
| 蛋白 G 磁珠 | Life Technologies | 10004D | |
| 蛋白酶 K | Invitrogen | 25530-049 | |
| 核糖核酸酶 A | Roche | 111199150001 | |
| Agencourt Ampure XP SPRI 磁珠 | Beckman Coulter | A63880 | |
| KAPA 文库制备试剂盒 | KAPA Biosystems | KK8202 | |
| CRISPRi-FlowFISH | PrimeFlow 分析 | ThermoFisher | 88-18005-210 |
| KRAB-dCas9-IRES-BFP 载体 | Addgene | 85449 | |
| qPCR 验证 | SYBR Green I 预混液 | Roche | -- |
| 线粒体膜电位检测 | MitoTracker Red 染料 | Thermo Fisher | M7512 |
| MitoTracker Green 染料 | Thermo Fisher | M7514 |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 细胞系与培养 | 细胞系种类(THP1, BJAB, Jurkat, GM12878, U937),培养基(RPMI-1640),FBS 浓度(10% 或 15%),补充剂(L-谷氨酰胺、青霉素/链霉素) 阅读提示:Methods: Immune cell lines, Cell culture |
| 刺激条件 | 刺激物及浓度(anti-CD40, anti-IgM, anti-CD3, PMA, LPS),刺激时间(4 小时) 阅读提示:Methods: Stimulation conditions for ABC maps and CRISPRi experiments |
| ATAC-seq 实验 | 细胞数量(50,000),裂解缓冲液(Nuclei Isolation EZ),转座酶(TDE1),PCR 循环数(15) 阅读提示:Methods: ATAC-seq |
| H3K27ac ChIP-seq | 细胞数量(5 百万),甲醛交联(1%),抗体(Anti-H3K27ac),磁珠(Protein A/G),测序深度(>30 百万 reads) 阅读提示:Methods: H3K27ac ChIP-seq |
| CRISPRi-FlowFISH | gRNA 文库,细胞系,KRAB-dCas9 表达,刺激条件,PrimeFlow 探针,FACS 分箱(6 箱),数据分析(最大似然估计) 阅读提示:Methods: CRISPRi-FlowFISH |
| 线粒体膜电位检测 | THP1 细胞,CRISPRi gRNA 池(靶向 e-PPIF, PPIF 启动子, 对照),MitoTracker Red/Green 浓度(200 nM),刺激(LPS 或 PMA+LPS),流式分选(3 箱) 阅读提示:Methods: Assessing the effect of PPIF and e-PPIF on mitochondrial membrane potential |