CTCF是cohesin介导的环挤压过程中依赖DNA张力的屏障

CTCF is a DNA-tension-dependent barrier to cohesin-mediated loop extrusion

作者信息Iain F Davidson, Roman Barth, Maciej Zaczek, Jaco van der Torre, Wen Tang, Kota Nagasaka, Richard Janissen, Jacob Kerssemakers, Gordana Wutz, Cees Dekker, Jan-Michael Peters
PMID37076620
期刊Nature
发布时间2023-04
DOI10.1038/s41586-023-05961-5

实验完整度

包含体外单分子成像(CTCF扩散、cohesin扩散、环挤压)和磁镊实验等多个独立证据层级,并明确进行了功能验证和机制验证。

主要模型

体外单分子DNA系统(26.1 kb和31.8 kb DNA) 重组人CTCF和cohesin蛋白 HeLa细胞纯化CTCF和cohesin蛋白

重点核对

DNA张力范围(0.04-0.08 pN用于比较整体阻断效率) CTCF取向(N端或C端朝向cohesin) 环挤压起始后到CTCF的时间 环大小和DNA端到端长度 阻断事件和通过事件的统计比较

摘要

在真核生物中,基因组DNA被cohesin挤压成环。通过限制这一过程,DNA结合蛋白CCCTC结合因子(CTCF)产生拓扑关联结构域(TAD),这些结构域在发育和疾病中的基因调控和重组中具有重要作用。目前尚不清楚CTCF如何建立TAD边界,以及这些边界对cohesin的可渗透性如何。为了回答这些问题,我们在体外可视化单个CTCF和cohesin分子在DNA上的相互作用。我们证明CTCF足以阻断扩散中的cohesin,这可能反映了cohesive cohesin在TAD边界的积累,并且也足以阻断环挤压中的cohesin,这反映了CTCF如何建立TAD边界。正如预测的那样,CTCF不对称地发挥作用;然而,CTCF依赖于DNA张力。此外,CTCF通过改变cohesin的环挤压方向并诱导环收缩来调节其环挤压活性。我们的数据表明,CTCF不仅仅是cohesin介导的环挤压的简单屏障,而是这一过程的主动调节因子,TAD边界的渗透性可通过DNA张力进行调节。这些结果揭示了CTCF控制环挤压和基因组结构的机制原理。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
CTCF如何作为cohesin介导的环挤压的屏障建立TAD边界,以及这些边界的渗透性如何受到调节?
核心机制
CTCF作为不对称的、DNA张力依赖的屏障,通过阻断cohesin的环挤压、改变其挤压方向或诱导环收缩来调节cohesin的活性。
主要证据
单分子荧光显微镜观察到CTCF阻断cohesin扩散和环挤压的效率与DNA张力相关,N端阻断效率约为C端的3.6倍,并观察到方向切换和环收缩现象。
研究意义
揭示了CTCF通过多种方式控制cohesin和基因组结构,为未来研究CTCF在基因调控、重组和肿瘤发生中的关键功能提供了基础。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

CTCF结合特异性分析

验证重组CTCF能特异性结合其DNA识别位点,并受DNA甲基化影响。

使用EMSA检测CTCF与含有单个CTCF结合位点的DNA寡核苷酸的结合,并测试未标记竞争物和DNA甲基化的影响。

2

CTCF单分子扩散与结合位点搜索

研究CTCF如何在DNA上寻找其结合位点,并测量其扩散行为和停留时间。

利用HILO显微镜观察TMR标记的CTCF在26.1 kb DNA上的扩散和结合,测量扩散系数和停留时间。

3

cohesin扩散实验

测试CTCF是否能阻断沿DNA扩散的cohesin,并检测阻断的方向性。

在DNA上预结合CTCF,然后引入荧光标记的cohesin,观察其扩散是否被CTCF阻断,并用EcoRI(E111Q)作为对照。

4

环挤压实验

测试CTCF是否阻断环挤压的cohesin,并研究其方向性和张力依赖性。

使用31.8 kb DNA,在CTCF结合后,加入HeLa cohesin和NIPBL-MAU2及ATP,通过荧光显微镜观察环挤压过程,记录阻断、通过、方向切换和环收缩事件。

5

磁镊实验测量cohesin步长

测量不同DNA张力下cohesin在环挤压过程中的步长,以评估步长变化是否解释了CTCF阻断的张力依赖性。

使用磁镊设备,在不同力(0.1-1 pN)下测量cohesin介导的DNA环挤压步长。

6

模拟研究

评估cohesin步长变化是否能解释CTCF阻断效率的张力依赖性。

基于磁镊测得的步长分布,进行计算机模拟,计算cohesin遇到CTCF的概率。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

验证分子表达变化
数据分析与统计

产品清单

实验环节名称品牌货号
Phusion Hot Start DNA聚合酶NEBM0535S
FspAI限制酶Thermo Fisher ScientificER1661
SpeI限制酶New England BiolabsR3133S
Gibson组装NEBE2621
Q5聚合酶NEBM0515
GoTaq 2PromegaM7845
Wizard SV凝胶和PCR纯化系统PromegaA9282
Qiafilter质粒中提试剂盒Qiagen12243
T4 DNA连接酶NEBM0202L
Sephacryl S-1000 SF凝胶过滤介质Cytiva--
[γ-32P]ATPHartmann AnalyticSCP-301
T4多核苷酸激酶NEBM0201S
M.SssI CpG甲基转移酶NEBM0226S
EaeI限制酶NEBR0508S
poly(dI-dC)Thermo Fisher Scientific20148E
Lipofectamine 2000Invitrogen11668019
Halotag TMR配体PromegaG8251
NiNTA琼脂糖Qiagen30230
Anti-FLAG M2亲和凝胶Sigma-AldrichA2220
Halotag TMR配体PromegaG8252
Halotag Alexa660配体PromegaG8472
Sartorius Vivaspin 50 kDa MWCO浓缩器SartoriusVS2031
Sytox GreenThermo Fisher ScientificS7020
Sytox OrangeThermo Fisher ScientificS11368
Avidin DNVector LaboratoriesA3100
葡萄糖氧化酶Sigma-AldrichG2133
过氧化氢酶Sigma-AldrichC-40
TroloxCayman Chemical10011659
ATPJena BiosciencesNU-1010-SOL
dCas9NEBM0652T
链霉亲和素包被的超顺磁珠(DynaBeads MyOne)LifeTechnologies--

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
CTCF结合特异性分析
CTCF蛋白浓度、DNA探针浓度、竞争物浓度
阅读提示:Methods 'EMSA'部分
CTCF单分子扩散与结合位点搜索
DNA长度、CTCF浓度、成像时间间隔
阅读提示:Methods 'Recombinant CTCF single-molecule imaging characterization'部分
cohesin扩散实验
DNA构造、CTCF和cohesin浓度、NIPBL-MAU2浓度、缓冲液组成
阅读提示:Methods 'Cohesin diffusion assay'部分
环挤压实验
DNA构造(CTCF位点位置和方向)、HeLa CTCF浓度、HeLa cohesin浓度、NIPBL-MAU2浓度、ATP浓度、成像缓冲液成分(葡萄糖氧化酶、过氧化氢酶、葡萄糖、Trolox)
阅读提示:Methods 'Loop-extrusion assay'部分
磁镊实验
DNA长度、cohesin和NIPBL-MAU2浓度、ATP浓度、施加力范围
阅读提示:Methods 'Magnetic-tweezer experiments'部分