Erk活性的周期性抑制驱动连续体节分割

Periodic inhibition of Erk activity drives sequential somite segmentation

作者信息M Fethullah Simsek, Angad Singh Chandel, Didar Saparov, Oriana Q H Zinani, Nicholas Clason, Ertuğrul M Özbudak
PMID36517597
期刊Nature
发布时间2023-01
DOI10.1038/s41586-022-05527-x

实验完整度

包含体外模型(斑马鱼胚胎)和体内实验(药物处理),并通过活体成像、免疫组化、基因操作和模拟验证功能与机制,证据层级多。

主要模型

斑马鱼胚胎 斑马鱼时钟缺陷突变体 Df(Chr05:her1,her7)b567/b567 her1ci301her7hu2526 时钟突变体

重点核对

使用 Tg(ubi:ERK-KTR(NLS3)-mTagBFP)ci304 报告基因检测 ERK 活性 使用 Tg(her7:her7-Venus)ci303 报告基因检测时钟动态 时钟缺陷突变体:Df(Chr05:her1,her7)b567/b567 或 her1ci301her7hu2526 药物处理:30 μM SU5402 或 600 nM PD184352,脉冲方案为 10 分钟处理加 30 分钟洗脱 固定样本的免疫组化(IHC)用于 ppERK 和 Her7-Venus 检测

摘要

连续分割创造了多种后生动物胚胎的模块化身体结构。体节发生建立了脊椎动物体轴的节段模式。前体节中胚层(PSM)中的分子分割时钟设定了体节形成的节奏。然而,细胞如何被启动在特定位置形成体节边界仍然未知。在这里,我们开发了时钟和双磷酸化ERK(ppERK)梯度的精确报告基因。我们发现Her1/7振荡器通过周期性降低ppERK来驱动节段性承诺,从而将其振荡投射到ppERK梯度上。脉冲抑制ppERK梯度可以完全替代时钟的作用,而运动学时钟波对于连续分割不是必需的。时钟在ppERK上游起作用,而ppERK又使相邻细胞能够离散地建立体节边界。在不同物种中,分子上不同的时钟和形态发生素梯度被鉴定出来。我们的发现意味着,只要它们抑制梯度,多样的时钟可能在不同的物种中建立连续分割。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
分割时钟如何驱动连续体节分割,特别是细胞如何在特定位置被启动形成体节边界?
核心机制
分割时钟通过周期性抑制 ppERK 梯度,从而在空间折叠变化(SFC)上离散化位置信息,驱动体节边界的顺序形成。
主要证据
通过活体双报告基因成像显示 ERK 活性与时钟反相振荡;时钟突变体中 ERK 活性不振荡;脉冲抑制 Fgf 信号可诱导时钟突变体形成体节边界,并恢复 SFC 的离散位移。
研究意义
提出了时钟驱动的振荡梯度(COG)模型,揭示了分割时钟通过抑制梯度实现节段性承诺的普遍设计原则,可能有助于工程化组织构建。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

生成时钟和 ERK 活性报告基因转基因斑马鱼

实现时钟和 ERK 活性的实时、单细胞分辨率成像。

构建 Tg(her7:her7-Venus)ci303 时钟报告基因和 Tg(ubi:ERK-KTR(NLS3)-mTagBFP)ci304 ERK 活性报告基因,并通过注射 Tol2 转座酶和质粒产生转基因系。

2

检测时钟驱动的 ppERK 梯度动力学

确定分割时钟是否以及如何影响 ppERK 梯度的时空动态。

对同一体节期的胚胎按 PSM 长度分为三个相位,进行 ppERK 免疫组化,比较时钟完整和缺陷胚胎的梯度振幅。

3

单细胞水平同时成像时钟和 ERK 活性

揭示时钟和 ERK 活性在单个细胞中的相对动态。

使用双报告基因斑马鱼进行活体时间序列成像,追踪 pPSM 细胞的 ERK 活性(通过 KTR 报告基因)和时钟(Her7-Venus)。

4

热激诱导时钟基因过表达

测试时钟蛋白对 ppERK 梯度的直接抑制效果。

使用 hsp70l:HA-her1 转基因胚胎进行热激诱导 Her1 过表达,通过免疫组化检测 ppERK 和 HA-Her1 水平。

5

脉冲抑制 Fgf/MEK 信号

检验周期性抑制 ppERK 能否替代时钟驱动体节分割。

对时钟缺陷突变体进行脉冲式 SU5402(FGFR 抑制剂)或 PD184352(MEK 抑制剂)处理,然后分析体节边界形成。

6

验证诱导体节边界的功能

确认诱导的体节边界具有正常结构和功能。

通过 xirp2a 原位杂交、pFAK 免疫组化和肌肉标记(F59、Phalloidin)检测诱导边界的完整性和附着的肌纤维长度。

7

构建 COG 模型并进行模拟

提出解释时钟如何离散化位置信息的理论模型。

基于实验数据建立数学模型,模拟时钟对 ppERK 的抑制效应及体节边界形成。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

验证样本或模型特征
验证细胞功能变化
验证机制链路
评估体内效果
数据分析与统计

产品清单

实验环节名称品牌货号
抗磷酸化ERK1/2抗体SigmaM9692
抗β-连环蛋白抗体CST9562
抗GFP抗体InvitrogenA10262
抗HA抗体Roche3K10
抗F59肌球蛋白重链抗体DSHBAB528373
抗磷酸化FAK抗体Invitrogen44-624G
Alexa Fluor 488山羊抗鸡IgG二抗InvitrogenA11039
Alexa Fluor 594山羊抗小鼠IgG二抗InvitrogenA11005
Alexa Fluor 647山羊抗兔IgG二抗InvitrogenA21245
Alexa Fluor 647山羊抗大鼠IgG二抗InvitrogenA21247
Alexa Fluor 488 鬼笔环肽Thermo FisherA12379
SU5402----
PD184352----
RNAscope荧光多路检测试剂盒Advanced Cell Diagnostics320851
Her1-C3探针--433201-C3
EGFP-C1探针--400281
抗荧光素碱性磷酸酶Fab片段Roche1426338
Nikon A1R HD共聚焦显微镜Nikon--
Nikon A1R GaAsP倒置共聚焦显微镜Nikon--
Nikon Ti-2显微镜Nikon--
Leica LS2倒置显微镜Leica--

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
免疫组化(IHC)
胚胎阶段(同一体节期)、PSM长度分组(三个相位)、固定和通透条件、抗体浓度和孵育时间
阅读提示:Methods:Immunohistochemistry and Imaging
活体成像
转基因系类型(双报告或单报告)、注射mRNA浓度、成像温度(25.0±0.7°C)、成像时长、麻醉剂使用
阅读提示:Methods:Live Embryo Imaging
脉冲药物处理
药物类型和浓度(SU5402 30 μM,PD184352 600 nM)、脉冲时长(10分钟处理+30分钟洗脱)、脉冲次数(5-12次)、胚胎阶段(14体节期开始)、对照组(DMSO)
阅读提示:Methods:Pulsatile Drug Treatments
热激实验
热激温度(37.5°C)、热激时长(10-60分钟)、胚胎阶段(16体节期)、对照条件
阅读提示:Methods:Heatshock Experiments
模型模拟
模型参数(反应速率和延迟)、时钟周期(30-86分钟)、组织尺寸、模拟时长
阅读提示:Methods:Mathematical Modelling