表达和纯化PfRCR复合物及其组分
获取用于结构研究和功能实验的蛋白样品
在昆虫细胞(S2)和哺乳动物细胞(Expi293F)中表达PfRH5、PfCyRPA、PfRIPR等蛋白,并通过亲和纯化和凝胶过滤得到纯化的PfRCR复合物。
The PfRCR complex bridges malaria parasite and erythrocyte during invasion
本研究包含冷冻电镜结构解析、生化结合实验、细胞侵袭功能实验、动物模型(Aotus猴)和人源化挑战等多种独立证据,并进行功能验证和机制研究。
恶性疟原虫3D7株 人红细胞 Drosophila S2细胞表达系统 Expi293F细胞表达系统
PfRH5CL双重二硫键锁定设计(CC1和CC5)及其功能验证 PfRCR复合物与basigin的结合(使用MST和SPR) 抗PfCyRPA抗体(Cy.003, Cy.004, Cy.007)对PfRCR结合红细胞的阻断作用(FACS) PfRIPR尾部与PfCSS-PfPTRAMP复合物的结合(SPR)
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
获取用于结构研究和功能实验的蛋白样品
在昆虫细胞(S2)和哺乳动物细胞(Expi293F)中表达PfRH5、PfCyRPA、PfRIPR等蛋白,并通过亲和纯化和凝胶过滤得到纯化的PfRCR复合物。
确定PfRCR复合物的高分辨率结构
使用Cy.003 Fab稳定PfRCR复合物,通过冷冻电镜收集数据,经过三维分类、局部细化等处理,获得3.0 Å分辨率的复合物结构。
验证PfRH5在入侵过程中是否需要打开
设计二硫键锁定PfRH5的N-和C-末端一半(PfRH5CL),通过转基因恶性疟原虫条件替换系统表达,检测红细胞入侵效率和钙离子通量。
阐明抗PfCyRPA抗体中和入侵的分子机制
使用流式细胞术检测PfRCR与红细胞的结合,以及加入抗PfCyRPA抗体后的阻断效果。
确定PfRIPR与PfCSS-PfPTRAMP复合物的结合位点
通过表面等离子体共振检测PfCSS-PfPTRAMP与全长PfRIPR及PfRIPR尾部的结合亲和力。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 冷冻电镜结构解析 | PfRCR-Cy.003复合物制备条件(蛋白比例、孵育时间、凝胶过滤柱) 阅读提示:Methods: Structure determination using cryo-EM |
| PfRH5功能实验 | PfRH5CL设计(二硫键位置)和转基因寄生虫生成条件(雷帕霉素浓度、处理时间) 阅读提示:Methods: Design and expression of cysteine-locked PfRH5; P. falciparum culture and transfection; Extended Data Fig. 6 |
| 抗体中和实验 | 抗体浓度(2倍摩尔过量)、CaCl2浓度(1 mM)、检测抗体R5.011浓度 阅读提示:Methods: Flow cytometry analysis of PfRCR binding to erythrocytes; Figure 4d |
| SPR结合实验 | PfCSS-PfPTRAMP浓度(8.0或7.7 µM)、二倍稀释系列、注射时间 阅读提示:Methods: Surface plasmon resonance; Figure 4a |