餐后与禁食状态T细胞代谢与功能表型比较
探究餐后代谢状态对人及小鼠T细胞基础代谢和功能的影响。
分别从禁食和餐后的人外周血及小鼠淋巴器官分离T细胞,检测葡萄糖摄取、中性脂质含量、线粒体质量、耗氧率、细胞外酸化率及细胞因子产生。
Postprandial lipid metabolism durably enhances T cell immunity
包含人体与小鼠T细胞体外代谢与功能检测、体内感染与肿瘤模型、嵌合体及CAR-T细胞治疗验证,并涉及转录组、表观遗传及蛋白质组等多层级证据。
人外周血CD8+ T细胞 小鼠脾脏及淋巴结CD8+ T细胞 OT-I TCR转基因小鼠 Pmel-1 TCR转基因小鼠 B16-F10黑色素瘤小鼠模型 NSG小鼠人白血病异种移植模型
禁食时间(人:过夜≥12小时;小鼠:12小时)及再进食时间(人:6小时) 小鼠品系(C57BL/6J)及年龄(6-8周) T细胞分离方法(负选磁珠,Miltenyi 130-096-543) 体外激活条件(anti-CD3/CD28磁珠,Thermo Fisher 11452D)及扩增因子(mIL-2,50 IU/mL) 乳糜微粒处理条件(甘油三酯浓度100 μg/mL,处理时间6小时)
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
探究餐后代谢状态对人及小鼠T细胞基础代谢和功能的影响。
分别从禁食和餐后的人外周血及小鼠淋巴器官分离T细胞,检测葡萄糖摄取、中性脂质含量、线粒体质量、耗氧率、细胞外酸化率及细胞因子产生。
验证餐后获得的代谢和功能优势是否在T细胞激活和扩增后及在体内免疫应答中持续存在。
将禁食和餐后来源的T细胞在体外用anti-CD3/CD28激活并扩增7天,或过继转移至小鼠后感染VV-OVA,检测扩增后及体内应答中的代谢和功能指标。
明确血清中何种成分能够传递餐后效应至T细胞。
分别用禁食或餐后热灭活血清处理T细胞,检测代谢变化;通过单营养素灌胃实验、代谢抑制剂和乳糜微粒分离实验,鉴定功能性成分。
验证乳糜微粒是否通过LDLR和mTORC1通路发挥作用。
使用LDLR缺陷骨髓嵌合小鼠、雷帕霉素处理及蛋白质组学分析,检测信号通路激活和翻译水平变化。
检验餐后状态是否改善用于肿瘤免疫治疗的T细胞产品功能。
从禁食或餐后状态获取Pmel-1或人CD3+ T细胞,体外扩增或制备CAR-T细胞,在小鼠肿瘤模型中进行过继转移实验。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| T细胞分离 | CD8a+ T细胞分选试剂盒 | Miltenyi Biotec | 130-096-543 |
| T细胞激活 | Dynabeads小鼠T细胞激活磁珠CD3/CD28 | Thermo Fisher Scientific | 11452D |
| 代谢检测 | MitoTracker Green线粒体染料 | Life Technologies | -- |
| BODIPY-NL (493/503) 中性脂质染料 | -- | -- | |
| GluCy3葡萄糖探针 | -- | -- | |
| 菲律宾菌素III | Millipore | F4767 | |
| 线粒体压力测试 | Seahorse XFe96细胞外通量分析仪 | Seahorse Biosciences | -- |
| 寡霉素 | -- | -- | |
| 鱼藤酮 | -- | -- | |
| 2-脱氧-D-葡萄糖 | -- | -- | |
| 依托莫昔 | -- | -- | |
| UK5099 | -- | -- | |
| BPTES | -- | -- | |
| mTORC1抑制 | 雷帕霉素 | Sigma | 553210 |
| 蛋白质合成检测 | 嘌呤霉素 | Sigma | P8833 |
| 胰岛素受体阻断 | S961 | MedChemExpress | HY-P2093 |
| 胆固醇转运抑制 | 伊曲康唑 | -- | -- |
| 细胞因子检测 | 布雷菲德菌素A | eBioscience | 4506-51 |
| 莫能菌素 | eBioscience | 4505-51 | |
| 细胞增殖检测 | Click-iT Plus EdU流式细胞术检测试剂盒 | Life Technologies | C10633 |
| 蛋白定量 | BCA蛋白定量试剂盒 | Thermo Fisher | 23225 |
| 线粒体分离 | 线粒体分离试剂盒 | Thermo Scientific | 89874 |
| Western blot | 总OXPHOS啮齿动物Western blot抗体混合物 | Abcam | ab11013 |
| 抗β-肌动蛋白抗体(克隆C4) | Santa Cruz Biotechnology | sc-47778 | |
| 抗HSP60抗体(克隆1C7) | Novus Biologicals | NBP1-77397 | |
| 蛋白质组学 | S-Trap微型柱 | ProtiFi | -- |
| 胰蛋白酶 | Promega | -- | |
| Q Exactive HF质谱仪 | Thermo Fisher Scientific | -- | |
| nanoACQUITY高效液相色谱仪 | Waters | -- | |
| RNA-seq | RNeasy微型试剂盒 | Qiagen | -- |
| ATAC-seq | ATAC-seq试剂盒 | Active Motif | 53150 |
| 人T细胞培养 | X-Vivo 15培养基 | Lonza | -- |
| 人AB血清 | Valley Biomedical | -- | |
| GlutaMAX补充剂 | Gibco | -- | |
| 人CAR-T细胞制备 | TransAct激活试剂 | Miltenyi Biotec | 130-111-160 |
| 人白细胞介素-2 | Cellgenix | -- | |
| Retronectin重组人纤连蛋白片段 | -- | -- | |
| G-Rex 6M孔板 | Wilson Wolf | -- | |
| 杀伤实验 | xCelligence RTCA DP eSight实时细胞分析仪 | Agilent Technologies | 380601600 |
| 细胞因子检测 | GolgiPlug蛋白转运抑制剂 | BD | -- |
| 流式分析 | BD LSRFortessa流式细胞仪 | BD Biosciences | -- |
| 细胞分选 | Sony MA900细胞分选仪 | Sony | -- |
| 体内小鼠模型 | 环磷酰胺一水合物 | Sigma | C0768 |
| OVA肽 (257-264) (SIINFEKL) | Genscript | RP10611 | |
| 乳糜微粒分离 | 3H-三油酸甘油酯 | -- | -- |
| 甘油三酯检测试剂盒 | Randox | -- | |
| 液体闪烁计数器 | Beckman Coulter | -- | |
| 抗体 | 抗小鼠CD8抗体(克隆53-6.7) | BioLegend | -- |
| 抗小鼠CD62L抗体(克隆MEL-14) | BioLegend | -- | |
| 抗小鼠CD44抗体(克隆IM7) | BioLegend | -- | |
| 抗小鼠Thy1.1抗体(克隆OX-7) | BioLegend | -- | |
| 抗小鼠Thy1.2抗体(克隆53-2.1) | BioLegend | -- | |
| 抗小鼠IFNγ抗体(克隆XMG1.2) | BioLegend | -- | |
| 抗小鼠TNF抗体(克隆MP6-XT22) | BioLegend | -- | |
| 抗小鼠IL-2抗体(克隆JES6-5H4) | BioLegend | -- | |
| 抗人CD8抗体(克隆HIT8a) | BioLegend | -- | |
| 抗人IFNγ抗体(克隆4S.B3) | BioLegend | -- | |
| 抗人TNF抗体(克隆Mab11) | BioLegend | -- | |
| 抗嘌呤霉素抗体(克隆2A4) | BioLegend | 381508 | |
| 抗磷酸化S6抗体(克隆N7-548) | BD Bioscience | 560433 | |
| 抗磷酸化AKT-S473抗体(克隆D9E) | Cell Signaling | 4071S | |
| 抗磷酸化4E-BP1抗体(克隆M89-61) | BD Bioscience | 562599 | |
| 抗TCF-1抗体(克隆C63D9) | Cell Signaling | -- | |
| 人T细胞分选 | MojoSort人CD3 T细胞分选试剂盒 | BioLegend | 480131 |
| MojoSort人CD8 T细胞分选试剂盒 | BioLegend | 480129 | |
| 其他 | Zombie活力染料 | BioLegend | -- |
| Foxp3/转录因子染色试剂盒 | Thermo Fisher Scientific | 00-5523-00 | |
| BD Cytofix/Cytoperm固定液 | BD | -- | |
| ACK红细胞裂解液 | -- | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 小鼠T细胞分离与培养 | 小鼠品系(C57BL/6J)、年龄(6-8周)、禁食时间(12小时)、T细胞分离方法(负选磁珠,Miltenyi 130-096-543) 阅读提示:Methods: Animals; Mouse T cell isolation and culture |
| 人T细胞分离 | 禁食时间(过夜≥12小时)、餐后采血时间(5-6小时)、T细胞分离方法(负选,BioLegend 480131或480129) 阅读提示:Methods: Human T cell isolation |
| 代谢检测 | 代谢染料浓度(GluCy3、BODIPY-NL (493/503)、MitoTracker Green),线粒体压力测试条件(细胞数150,000/孔,抑制剂浓度:oligomycin 2μM,FCCP 2μM,rotenone/antimycin A 0.5μM) 阅读提示:Methods: Flow cytometry: staining and analysis; Measurement of mitochondrial respiration |
| 乳糜微粒处理 | 分离方法(肠系膜淋巴管插管),处理浓度(甘油三酯100 μg/mL),处理时间(6小时),对照(hApoCIII-Tg小鼠乳糜微粒) 阅读提示:Methods: Chylomicron isolation and in vitro treatment |
| 人CAR-T细胞制备 | 激活试剂(TransAct,1:100)、IL-2浓度(200 IU/mL)、转导方法(spin-transduction,2小时,2000g)、扩增时间(约10天) 阅读提示:Methods: Human CAR-T cell generation |
| 体内感染模型 | VV-OVA剂量(10^6 PFU腹腔注射),OT-I细胞转移比例(1:1),检测时间点(第11天、第45天) 阅读提示:Figure 2 legend; Methods: In vivo therapeutic T cell experiments |
| 体内肿瘤模型 | 肿瘤细胞注射数量(B16-F10:125,000;NALM6:0.5×10^6),T细胞转输数量(Pmel-1:5×10^6;CAR-T:0.5×10^6),环磷酰胺剂量(200 mg/kg) 阅读提示:Methods: Murine tumour growth curve and analysis; In vivo therapeutic T cell experiments |
| mTORC1通路验证 | 雷帕霉素给药剂量(5 mg/kg腹腔注射),给药时间(禁食/进食期间),检测指標(p-S6、p-4E-BP1、p-AKT、puromycin掺入) 阅读提示:Figure 4 legend; Methods: Chemical reagents; Phospho protein staining |