SNOR促进休眠后的翻译重启

SNOR promotes translation restart after dormancy

作者信息Maciej Gluc, Higor Rosa, Maria Bozko, Lesley A Turner, Cassidy R Prince, Yelena Peskova, Heather A Feaga, Kathleen L Gould, Simone Mattei, Ahmad Jomaa
PMID42129552
期刊Nature
发布时间2026-07
DOI10.1038/s41586-026-10530-7

实验完整度

包含近原子分辨率的原位冷冻电镜结构解析、体外生化与功能实验、体内遗传学及多聚体分析,证据层级完整,且包含功能性验证。

主要模型

粟酒裂殖酵母(Schizosaccharomyces pombe)细胞 体外纯化的核糖体大亚基(60S) 兔网织红细胞裂解液(RRL)体外翻译系统

重点核对

葡萄糖耗竭诱导的休眠模型:细胞在含0.5%葡萄糖的EMM中培养7天 SNOR的CRISPR基因敲除(rtc3Δ::ura4+)及敲入突变株(K68E/H96A/R97E、G100STOP) eIF5A羟腐胺化抑制实验:GC7处理(20μM) 翻译重启检测:多聚体谱分析,葡萄糖恢复后2小时 细胞活力检测:连续稀释斑点试验(10倍系列稀释)

摘要

细胞休眠通过可逆地抑制蛋白质合成,使细胞在长期营养限制期间得以存活。当营养恢复时,失活的真核核糖体如何被重新激活尚不清楚。在此,我们利用粟酒裂殖酵母(Schizosaccharomyces pombe)中的高分辨原位冷冻电子断层扫描,鉴定出SNOR——一个含有SBDS结构域的核糖体相关因子,在葡萄糖耗竭诱导的休眠期间,它结合于肽基转移酶中心并与eIF5A的羟腐胺化环接触。SNOR并非作为典型的休眠因子发挥作用,而是许可休眠核糖体进行快速的翻译重启。葡萄糖恢复后,SNOR和eIF5A共同作用,促进多聚体的有效恢复和休眠退出。这些发现定义了一个应激响应的核糖体重启模块,该模块将碳源限制与核糖体活性位点的监视及蛋白质合成的再激活联系起来。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
真核细胞在休眠期间如何将核糖体保持在不活但可重启的状态,以在营养恢复时迅速恢复蛋白质合成?
核心机制
SNOR是一个含SBDS结构域的核糖体相关因子,在葡萄糖剥夺期间结合于核糖体PTC,并与eIF5A及uL1形成三部分界面,稳定L1柄和H69螺旋,使核糖体处于休眠兼容但可重启的构象;葡萄糖恢复后,SNOR解离,eIF5A保持就绪,促进翻译重启。
主要证据
通过原位冷冻电镜(3.38 Å)和单颗粒冷冻电镜(2.8-3.5 Å)解析SNOR结合核糖体的结构;体外共沉降和翻译抑制实验显示SNOR特异性结合60S并抑制翻译;体内多聚体谱分析显示SNOR敲除或突变体无法恢复多聚体,且GC7处理抑制翻译重启。
研究意义
该研究揭示了一种保守的碳应激诱导的核糖体重启模块,为理解真核核糖体如何从休眠过渡到活跃翻译提供了机制框架,突出了整合的原位结构生物学在揭示翻译控制动态调节层中的价值。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

结构鉴定:通过原位冷冻电镜识别SNOR

在休眠核糖体上识别新的核糖体结合因子并解析其结构

制备粟酒裂殖酵母休眠细胞(0.5%葡萄糖培养7天),进行冷冻FIB减薄和倾斜系列采集,获得高分辨原位冷冻电镜图,通过亚断层平均和分类确定核糖体相关因子,并进行模型构建。

2

表达分析:SNOR在葡萄糖应激下的诱导表达

探究SNOR在葡萄糖剥夺过程中的表达变化及特异性

通过RT-qPCR检测SNOR mRNA水平,通过免疫印迹检测蛋白水平,比较不同葡萄糖浓度和其他胁迫条件下的表达。

3

结合验证:SNOR与核糖体的体外结合

验证SNOR是否直接结合核糖体并鉴定结合位点

通过蔗糖垫共沉降实验检测SNOR与40S、60S、80S核糖体的结合,并通过单颗粒冷冻电镜解析60S-SNOR复合物结构。

4

突变分析:SNOR核糖体结合的关键残基

确定SNOR与rRNA和核糖体蛋白相互作用的关键氨基酸,并验证其对结合的影响

构建SNOR点突变体和C端截短突变体,通过共沉降实验检测其与80S核糖体的结合能力。

5

功能验证:SNOR和eIF5A在翻译调控中的作用

探究SNOR单独及与eIF5A协同对蛋白质合成的影响

在兔网织红细胞裂解液中进行体外翻译实验,添加野生型SNOR、突变体或eIF5A,检测报告基因表达水平,验证SNOR对翻译的抑制作用以及eIF5A的协同效应。

6

体内功能:SNOR在翻译重启和细胞活力中的作用

验证SNOR与eIF5A在葡萄糖恢复后对翻译重启和细胞存活的影响

构建SNOR敲除和敲入突变体菌株,在葡萄糖剥夺7天后恢复葡萄糖,通过多聚体谱分析检测翻译恢复,通过斑点试验检测细胞活力;并用GC7抑制eIF5A羟腐胺化验证其作用。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
Quantifoil R2/2铜网Quantifoil--
Aquilos 2 冷冻聚焦离子束/扫描电镜Thermo Scientific--
Titan Krios G4i 冷冻透射电子显微镜Thermo Scientific--
Falcon4i 探测器Thermo Scientific--
K3 直接电子探测器Gatan--
RNeasy试剂盒QIAGEN74104
Verso cDNA合成试剂盒Thermo ScientificAB1453A
SYBR Green 预混液Thermo ScientificA25742
SurePAGE 预制胶GenScriptM00653
MES 电泳缓冲液GenScriptM00677
硝酸纤维素膜LI-COR926-31092
Flag抗体GenScriptA00187
GAPDH抗体Proteintech60004-1-Ig
抗鼠二抗InvitrogenA21058
Odyssey成像系统LI-COR--
HisTrap HP 亲和层析柱Cytiva17524802
ÄKTA Pure快速蛋白液相色谱系统Cytiva--
Amicon Ultra离心超滤管(100 kDa截留)MilliporeUFC8100
Amicon Ultra离心超滤管(3 kDa截留)MilliporeUFC8003
QuickChange定点突变试剂盒Agilent210518
E. coli BL21-CodonPlus (DE3) 感受态细胞Agilent230245
LB培养基Fisher BioreagentsBP1426
兔网织红细胞裂解物PromegaL4540
RiboLock RNA酶抑制剂Thermo FisherEO0382
GC7硫酸盐MedChemExpressHY-108314A
Orbitrap Exploris480质谱仪Thermo Fisher Scientific--
ESPript 3.0----

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
原位冷冻电镜样本制备
细胞在含0.5%葡萄糖的EMM中培养7天;冻前OD600=0.6;铜网类型Quantifoil R2/2;冷冻条件(液态乙烷);FIB减薄厚度约160nm
阅读提示:Methods: Sample preparation for cryo-ET; Cryo-FIB milling
SNOR表达分析
RT-qPCR检测自第0天至第3天;免疫印迹检测第1、4、7天;葡萄糖浓度(0%, 0.5%, 2%, 20%);氨基酸饥饿、氮饥饿、1.1M NaCl处理2小时
阅读提示:Methods: RT–qPCR; Monitoring SNOR protein levels using different stress conditions
核糖体共沉降实验
核糖体浓度0.2μM;蛋白浓度2μM;结合缓冲液成分(HEPES pH7.7, KCl, MgCl2, C12E8, 甘油);孵育时间30分钟,30℃;蔗糖垫浓度40%;离心条件(100,000rpm,2小时,4℃)
阅读提示:Methods: Ribosome co-pelleting assay
体外翻译实验
RRL浓度66.7%;报告mRNA浓度0.5μg/μl;SNOR/eIF5A浓度3μM;KCl 81mM;MgAc2 2mM;氨基酸混合物24μM;孵育时间25分钟,32℃
阅读提示:Methods: Small-scale in vitro translation
多聚体谱分析
细胞在0.5%葡萄糖EMM中培养7天;恢复时用YES培养基,OD600=1,30℃孵育2小时;放线菌酮100μg/ml处理15分钟;上样10 A260单位;蔗糖梯度10-50%
阅读提示:Methods: Glucose restart experiment and polysome gradient profiling