胶质细胞向神经元的线粒体转移可防止周围神经病变

Mitochondrial transfer from glia to neurons protects against peripheral neuropathy

作者信息Jing Xu, Yize Li, Charles Novak, Min Lee, Zihan Yan, Sangsu Bang, Aidan McGinnis, Sharat Chandra, Vivian Zhang, Wei He, Terry Lechler, Maria Pia Rodriguez Salazar, Cagla Eroglu, Matthew L Becker, Dmitry Velmeshev, Richard E Cheney, Ru-Rong Ji
PMID41501451
期刊Nature
发布时间2026-02
DOI10.1038/s41586-025-09896-x

实验完整度

包含体外共培养、离体全组织、体内MitoTag谱系追踪、电镜超微结构、人样本snRNA-seq及行为学验证等多种独立证据层级,并有功能获得/丧失验证。

主要模型

小鼠DRG SGC-感觉神经元共培养 小鼠DRG全组织离体培养 Aldh1l1-creERT2:MitoTag小鼠体内模型 人DRG组织及SGC-神经元共培养

重点核对

SGC纯度:FABP7、Kir4.1等标记阳性率94.9%-97.1% 体外线粒体转移:MitoTracker标记SGC与神经元共培养24小时 体内线粒体转移:MitoTag小鼠Tam处理5天,第10天检测MitoTag+神经元比例23.0% MYO10敲低:siRNA转染SGC后共培养,检测TNT形成及线粒体转移 糖尿病模型:STZ诱导或db/db小鼠,以及人糖尿病供体DRG样本

摘要

背根神经节(DRG)中的初级感觉神经元具有长轴突,对线粒体需求高,线粒体功能障碍已被认为与糖尿病和化疗后的周围神经病变有关1,2。然而,初级感觉神经元维持其线粒体供应的机制仍不清楚。DRG中的卫星胶质细胞(SGCs)包裹感觉神经元并调节神经元活动和疼痛3。这里我们表明,SGCs能够通过形成含有SGC来源的肌球蛋白10(MYO10)的隧道纳米管,在体外、离体和体内将线粒体转移至DRG感觉神经元。扫描和透射电子显微镜揭示了小鼠和人DRG中SGCs与感觉神经元之间存在隧道纳米管样超微结构。在 naïve 小鼠中阻断线粒体转移导致神经变性和神经病理性疼痛。单核RNA测序和原位杂交显示,MYO10在人SGCs中高表达。此外,来自糖尿病患者的DRG SGCs表现出MYO10表达和向神经元线粒体转移减少。将人SGCs过继转移至小鼠DRG可提供依赖MYO10的针对周围神经病变的保护。本研究揭示了外周胶质细胞先前未被认识的作用,并为糖尿病中的小纤维神经病变提供了见解,为神经病理性疼痛的管理提供了新的治疗策略。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
DRG感觉神经元如何维持线粒体供应,以及这一机制在周围神经病变中扮演何种角色?
核心机制
SGCs通过MYO10介导的隧道纳米管(TNTs)向感觉神经元转移线粒体,这一过程受神经元活动调控,并在糖尿病和化疗条件下受损。
主要证据
体外共培养、离体全组织培养、Aldh1l1:MitoTag小鼠体内示踪、电镜超微结构、人DRG样本、SGCs过继转移等实验表明,阻断线粒体转移导致神经变性及痛觉过敏,而健康SGCs或线粒体转移可减轻疼痛。
研究意义
揭示了外周胶质细胞通过线粒体转移保护神经的新机制,为糖尿病小纤维神经病变提供病理见解,并提示SGC转移或线粒体直接递送可作为神经病理性疼痛的治疗策略。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

体外SGC-神经元共培养与线粒体转移检测

验证SGCs是否能够向DRG感觉神经元转移线粒体并观察TNT结构。

分离小鼠SGC和DRG神经元,用MitoTracker标记SGC后共培养,24小时后观察线粒体转移和TNT形成。

2

离体全组织DRG共培养

在组织水平验证SGCs与DRG之间线粒体转移及TNT形成。

将MitoTracker标记的SGCs与半切全组织DRG共培养,观察TNT延伸至组织内部。

3

体内SGC-神经元线粒体转移的遗传示踪

在活体小鼠中验证SGCs向神经元转移线粒体及其调控因素。

使用Aldh1l1-creERT2:MitoTag小鼠,Tam诱导后检测DRG神经元中的MitoTag信号,并施加神经元活动或病理条件处理。

4

MYO10在TNT形成和线粒体转移中的作用

确定MYO10是否为SGCs形成TNT及转移线粒体所必需。

使用siRNA敲低SGC中的Myo10,检测TNT形成和线粒体转移的变化;并分析Myo10+/−杂合小鼠的痛觉行为和DRG形态。

5

糖尿病及化疗条件下的线粒体转移障碍

研究病理条件(糖尿病、化疗)对SGC-神经元线粒体转移的影响。

在STZ诱导的糖尿病小鼠、PTX诱导的CIPN小鼠以及人糖尿病供体DRG样本中检测线粒体转移效率、MYO10表达和神经病变。

6

过继转移SGCs或线粒体的治疗评估

检验过继转移SGCs或分离的线粒体能否缓解神经病理性疼痛并保护神经。

将健康或Myo10敲低的人/鼠SGCs,或分离的线粒体注射到神经病理性疼痛小鼠的DRG中,通过行为学和组织学评估疗效。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
Neurobasal培养基----
胎牛血清----
B27添加剂----
青霉素-链霉素----
多聚-D-赖氨酸ThermoA3890401
胶原酶Sigma10103578001
分散酶IISigmaD4693
胰蛋白酶-EDTAGibco25200-056
MitoTracker深红染料Thermo FisherM22426
MitoTracker绿色染料ThermoM7514
紫杉醇SigmaT7402
他莫昔芬SigmaT5648
链脲佐菌素Sigma-AldrichS0130
完全弗氏佐剂----
布比卡因----
细胞松弛素BSigmaC2743
Y-27632Sigma688001
Pitstop2Abcamab120687
甘珀酸SigmaC4790
辣椒平MCEHY-15640
粘噻唑SigmaT5580
寡霉素SigmaO4876
FCCPSigmaC2920
鱼藤酮SigmaR8875
siMyo10Ambion Life TechnologysiRNA
siMYO10Ambion Life TechnologysiRNA
对照siRNAAmbion Life Technology4459405
Lipofectamine 2000转染试剂Thermo Fisher11668027
FABP7抗体NeuromicsMO22188
Kir4.1抗体AlomoneAPC-035
AQP4抗体Proteintech16473-1-AP
连接蛋白43抗体Zymed71-0700
谷氨酰胺合成酶抗体NovusNB110-41404
MYO10抗体SigmaHPA024223
βIII-微管蛋白抗体Abcamab18207
Iba1抗体Wako019-19741
GFAP抗体SigmaG3893
TOM20抗体Proteintech11802-1-AP
PGP9.5抗体ThermoPA5-29012
GFP抗体Abcamab5450
COX4抗体Abcamab16056
FABP7抗体 (人)ThermoPA5-24949
JC-1染料InvitrogenT3168
ROS检测试剂盒Thermo Fisher88-5930-74
Seahorse XFe96细胞外流量分析仪Agilent--
XF基础培养基Agilent103575-100
葡萄糖Agilent103577-100
谷氨酰胺Agilent103579-100
蔡司LSM 880共聚焦显微镜Zeiss--
蔡司LSM 780共聚焦显微镜Zeiss--
蔡司Elyra 7显微镜Zeiss--
Apreo 2扫描电子显微镜ThermoFisher Scientific--
JEOL 2100透射电子显微镜JEOL--
VivaView FL培养箱荧光显微镜Olympus--
尼康荧光显微镜Nikon--
von Frey纤维丝Stoelting--
Hargreaves热辐射仪IITC Life Science--
ANY-Maze软件Stoelting--
PEI MAX转染试剂Polysciences24765
Benzonase核酸酶Millipore70664
AAV-MaCPNS2-Syn-jRGECO1a----
RNAscope探针Hs-MYO10Advanced Cell Diagnostics440691
OCT包埋剂Tissue-Tek--
DAPI Fluoromount-G封片剂Southern Biotech0100-20
L-929细胞ATCC--

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
SGC培养
SGC纯度(FABP7、Kir4.1等标记阳性率),培养时间(DIV5),和非SGC去除方法(手动振摇)
阅读提示:Methods: Mouse DRG SGC culture
体外线粒体转移
MitoTracker标记浓度和处理时间,共培养时间(24小时),神经元和SGCs数量比
阅读提示:Methods: Mouse DRG SGC–neuron co-cultures and mitochondrial transfer analysis
药物处理
CytoB浓度(3.5 μM)、Y-27632浓度(10 μM)、Pitstop2浓度(20 μM)、CBX浓度(20 μM)
阅读提示:Methods: Mouse DRG SGC–neuron co-cultures and mitochondrial transfer analysis
体内线粒体转移
Tam浓度(100 mg/kg)和注射频率(每日一次共5天),MitoTag荧光检测时间点(第5、10天)
阅读提示:Methods: Mitochondrial imaging in the DRG and spinal cord of MitoTag mice
MYO10敲低
siRNA序列和浓度(15 nM),转染试剂(Lipofectamine 2000),体内注射量(4 μg/μl)和注射部位(L4/L5 DRG)
阅读提示:Methods: siRNA transfection in vitro; Intra-ganglionic (DRG) injection of siRNA
行为测试
von Frey filament力度范围(0.02-2.56 g),测试时间点(如siRNA后第3天),动物品系和性别
阅读提示:Methods: Behavioural tests for pain in mice