SARS-CoV-2刺突蛋白1通过干扰素ISG15依赖性机制诱导内皮炎症和血管功能障碍

Spike 1 protein of SARS-CoV-2 induces endothelial inflammation and vascular dysfunction through interferon ISG15-dependent mechanisms

作者信息Francisco J Rios, Augusto C Montezano, Livia L Camargo, Rheure A Lopes, Ana B García-Redondo, Elihu Aranday-Cortes, Ana M Briones, John McLauchlan, Rhian M Touyz
PMID42150851
发布时间2026-05-18
DOI10.1093/cvr/cvag111

实验完整度

高

研究包含体外细胞实验(人内皮细胞)、基因敲除细胞、药理抑制、siRNA敲低、离体血管功能实验(WT、高血压和ISG15-/-小鼠)及分子机制验证,证据层级丰富。

主要模型

人微血管内皮细胞(HMEC) 人淋巴内皮细胞(HLEC) 高血压小鼠(LinA3)模型 ISG15敲除小鼠

重点核对

SP1浓度1 μg/mL,处理时间5 h或24 h IFNα浓度100 IU/mL,IFNλ3浓度100 ng/mL ADAM17抑制剂marimastat 3.8 nmol/L和TAPI-0 100 nmol/L STAT1抑制剂fludarabine 1 μmol/L IFNLR1 siRNA敲低

摘要

目的:干扰素α(IFNα)和λ3(IFNλ3)是机体对严重急性呼吸综合征冠状病毒2(SARS-CoV-2)感染的第一道免疫防线,通过增加干扰素刺激基因(ISGs)的表达发挥作用。长期产生IFN可能加剧炎症,导致COVID-19中的内皮炎和血管功能障碍。我们研究了SARS-CoV-2刺突蛋白S1(SP1)是否通过IFN影响人血管和淋巴内皮细胞(ECs)的炎症,以及这些过程是否在高血压背景下导致血管功能障碍。我们重点关注ISG15,这是一种关键的免疫蛋白,也与高血压相关的血管损伤有关。方法和结果:微血管EC暴露于SARS-CoV-2的SP1诱导ISGs表达:ISG15、MX1和IFIT1。这些效应被IFNs增强,并被ADAM17和STAT1抑制剂以及IFNα和β受体亚基1(IFNAR1)的基因抑制所减弱。在微血管EC中,IFNλ3和IFNα增加了ISGs、TMPRSS2、ADAM17的表达,以及促炎介质(肿瘤坏死因子[TNF]α、白细胞介素[IL]-6、纤溶酶原激活物抑制剂[PAI]-1)的产生,并降低了eNOS(Ser1177)的磷酸化。在肺、淋巴和主动脉EC中,IFNα而非IFNλ3增加了ISGs和IL-6的表达。为了探索在完整血管中的相关性,我们在野生型(WT)、高血压和ISG15-/-小鼠的离体微血管中研究了IFNs的作用。IFNα、IFNλ3和SP1降低了WT血管中内皮依赖性舒张,而IFNα增加了高血压小鼠血管的收缩。在ISG15-/-小鼠的血管中,IFNα、IFNλ3或刺突蛋白诱导的血管功能障碍被消除。结论:SP1和IFNs通过ADAM17协同增加EC中ISGs的表达。IFNλ3和IFNα通过ISG15促进内皮炎症和血管功能障碍。这些过程可能在SP1相关的内皮病变和血管损伤中发挥作用,并可能有助于SARS-CoV-2感染的心血管后遗症,包括高血压。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
SARS-CoV-2刺突蛋白S1是否通过干扰素(IFN)诱导内皮炎症,并在高血压背景下导致血管功能障碍?
核心机制
SP1和IFNs通过ADAM17和STAT1协同增加内皮细胞中ISGs(ISG15、MX1、IFIT1)表达,进而通过ISG15依赖性机制促进内皮炎症和血管功能障碍。
主要证据
人内皮细胞中SP1诱导ISGs表达,IFNs增强效应,ADAM17和STAT1抑制剂阻断该效应;离体小鼠血管实验中,IFNα、IFNλ3和SP1导致内皮依赖性舒张功能受损,而在ISG15-/-小鼠中这些效应消失。
研究意义
该研究提示SP1和IFN相关的ISG15通路可能在内皮病变和血管损伤中发挥作用,并可能参与SARS-CoV-2感染的心血管后遗症(如高血压),对IFN治疗策略的血管副作用具有潜在意义。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

SP1诱导内皮细胞ISGs表达

验证SP1是否能激活内皮细胞中的干扰素刺激基因(ISGs)

用SP1(1 μg/mL)刺激人微血管内皮细胞(MEC)5或24小时,通过RT-qPCR检测ISG15、MX1、IFIT1、IFNα和IFNλ的mRNA表达水平;同时检测不同内皮细胞(AEC、PEC、LEC)中的表达。

2

ADAM17、TMPRSS2和ACE2在SP1诱导ISGs表达中的作用

确定ADAM17、TMPRSS2和ACE2是否参与SP1诱导的ISGs表达

MEC分别用MLN-4760(ACE2抑制剂,5 nmol/L)、camostat mesylate(TMPRSS2抑制剂,50 μmol/L)、marimastat(3.8 nmol/L)和TAPI-0(100 nmol/L)预处理30分钟,然后刺激SP1 5小时,检测ISG15、IFIT1、MX1、MCP1和IL-6的mRNA表达。

3

IFNα和IFNλ3对STAT/MAPK信号通路及炎症介质的影响

探究IFNα和IFNλ3激活的细胞内信号通路及其对炎症反应的作用

MEC用IFNα(100 IU/mL)或IFNλ3(100 ng/mL)刺激10或30分钟,通过Western blot检测STAT1、STAT2、ERK1/2、p38 MAPK的磷酸化;并检测24小时后IL-6、TNFα、PAI-1等炎症介质的产生。

4

STAT1和IFNLR1在SP1诱导ISGs表达中的作用

验证STAT1和IFNLR1是否为SP1诱导ISGs表达所必需

使用STAT1抑制剂fludarabine(1 μmol/L)预处理MEC 30分钟,或使用IFNLR1 siRNA转染MEC,再刺激SP1 5小时,检测ISG15、IFIT1和MX1的mRNA表达。同时,在STAT1或IFNLR1敲除的A549细胞中进行验证。

5

IFN和SP1对离体血管功能的影响

在离体血管水平评估IFNα、IFNλ3和SP1对血管功能的影响,并探究ISG15的作用

取WT、高血压(LinA3)和ISG15-/-小鼠的肠系膜小动脉,用不同内皮素预收缩后,加入IFNα、IFNλ3、SP1或重组刺突蛋白,检测乙酰胆碱诱导的内皮依赖性舒张反应。

6

IFN和SP1诱导血管功能障碍的ISG15依赖性

验证IFN和SP1诱导的血管功能障碍是否依赖于ISG15

比较ISG15+/+和ISG15-/-小鼠血管对IFNα、IFNλ3、SP1或重组刺突蛋白的反应,通过肌动描记器记录内皮依赖性舒张功能。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

验证样本或模型特征
验证分子表达变化
验证细胞功能变化
验证免疫效应
评估体内效果
数据分析与统计

产品清单

实验环节名称品牌货号
内皮细胞生长培养基PromocellC-22010
内皮细胞生长培养基MV2PromocellC-22022
青霉素/链霉素Invitrogen--
DMEM培养基Invitrogen--
胎牛血清Thermo-Fisher-GibcoA5670801
Lipofectamine 2000转染试剂Thermo Fisher11668019
嘌呤霉素Thermo FisherA1113803
干扰素αR&D Systems11105-1
干扰素λ3R&D Systems5259-IL-025
聚肌胞苷酸R&D Systems4287/10
重组SARS-CoV-2刺突蛋白S1亚基RayBiotech230-01101-100
重组SARS-CoV-2刺突蛋白S2亚基RayBiotech230-01103-100
MLN-4760Sigma-Aldrich5306160001
马立马司他Sigma AldrichM2699
TAPI-0Tocris5523
甲磺酸卡莫司他Sigma-AldrichSML0057
磷酸氟达拉滨Sigma-AldrichF98130
IFNLR1 siRNAThermo Fischer4392420
Lipofectamine RNAiMAX转染试剂Thermo Fischer13778075
阴性对照siRNAAmbion4390844
DAF-FM二乙酸酯Life Technologies--
DC蛋白定量试剂盒Pierce--
NuPAGE 4-12% Bis-Tris凝胶Invitrogen--
硝酸纤维素膜Thermo Scientific--
ACE2抗体Proteintech66699-1-Ig
ADAM17抗体Cell Signalling6978
磷酸化eNOS (Ser1177)抗体Cell Signalling--
β-肌动蛋白抗体Sigma-Aldrich--
ReleSR细胞消化液StemCell Technologies100-0483
Zombie NIR固定活性染料试剂盒BioLegend423105
Foxp3/转录因子染色缓冲液套装eBioscience00-5523-00
PE标记抗人IL-28RA抗体Biolegend337803
PE标记小鼠IgG2a同型对照Biolegend400213
CellTrace CFSE细胞增殖示踪染料Thermo FisherC34554
QIAzol裂解试剂Qiagen--
高容量cDNA逆转录试剂盒Applied Biosystems--
Power SyBr Green预混液Applied Biosystems--
人DuoSet ELISA试剂盒R&D Systems--
人MILLIPLEX多重检测试剂盒Merck Life Science UK--
ECHO Rebel显微镜Echo Biocompany--
wire肌动描记器Danish Myo Technology--
U46619Sigma-Aldrich--
乙酰胆碱Sigma-Aldrich--
硝普钠Sigma-Aldrich--
重组SARS-CoV-2刺突蛋白R&D Systems10549-CV
BP 2000血压分析系统Visitech--

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
细胞培养与刺激
细胞类型(HMEC、HLEC等)、SP1浓度(1 μg/mL)、IFNα浓度(100 IU/mL)、IFNλ3浓度(100 ng/mL)、刺激时间(5或24小时)
阅读提示:Methods 2.1.1和2.1.2
抑制剂处理
抑制剂浓度(MLN-4760 5 nmol/L、marimastat 3.8 nmol/L、TAPI-0 100 nmol/L、camostat mesylate 50 μmol/L、fludarabine 1 μmol/L)、预处理时间(30分钟)
阅读提示:Methods 2.1.2
siRNA转染
siRNA浓度(20 nmol/L)、转染试剂(Lipofectamine RNAiMAX)、转染时间(6小时)
阅读提示:Methods 2.1.3
血管功能检测
小鼠品系(WT、LinA3、ISG15-/-)、血管类型(肠系膜小动脉)、IFN浓度(100 IU/mL、100 ng/mL)、SP1浓度(1 μg/mL)、处理时间(1或2小时)
阅读提示:Methods 2.8和2.9
统计设计
统计方法(双尾未配对t检验、单因素或双因素ANOVA)、显著性阈值(P<0.05)、样本量
阅读提示:Methods 2.10