建立EC-ERa-KO和DKO小鼠模型
验证EC特异性ERa和/或MR敲除对动脉粥样硬化斑块炎症的影响。
将floxed ERa或MR/ERa双floxed小鼠与VE-Cdh-Cre小鼠杂交,并交叉到LDLR-KO背景,确认基因重组。
Endothelial Estrogen Receptor Alpha Inhibits Plaque Inflammation in Both Sexes
包含体内小鼠模型(LDLR-KO、EC-ERa-KO、EC-MR-KO、DKO)和体外人类细胞实验(HAECs、HCAECs、HUVECs),并进行了功能验证(黏附分子表达、炎症细胞浸润)和机制验证(ChIP、siRNA敲低)。
LDLR-KO小鼠 EC-ERa-KO/LDLR-KO小鼠 EC-MR-KO/LDLR-KO小鼠 EC-ERa/MR-DKO/LDLR-KO小鼠 原代人主动脉内皮细胞(HAECs) 原代人冠状动脉内皮细胞(HCAECs) 人脐静脉内皮细胞(HUVECs)
EC-ERa-KO小鼠中ERa基因重组和EC特异性缺失的确认 高脂饮食(HFD)喂养12周的方案 雄性和雌性小鼠的对照(Cre−)和基因敲除(Cre+)同窝小鼠 体内实验中样本量(每性别每基因型N=8-26) 体外激素处理浓度:10 nmol/L醛固酮和10 nmol/L雌二醇
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
验证EC特异性ERa和/或MR敲除对动脉粥样硬化斑块炎症的影响。
将floxed ERa或MR/ERa双floxed小鼠与VE-Cdh-Cre小鼠杂交,并交叉到LDLR-KO背景,确认基因重组。
检测EC-ERa缺失对斑块大小、组成和炎症的影响。
通过主动脉根部组织学染色(Oil Red O、H&E、Masson's Trichrome、Mac2免疫荧光)和主动脉弓流式细胞术量化斑块面积、脂质、坏死核心、纤维化和炎症细胞浸润。
评估EC-ERa缺失对主动脉黏附分子蛋白表达的影响。
通过免疫印迹检测主动脉弓和降主动脉中ICAM1、VCAM1、E-selectin、P-selectin的蛋白水平。
验证ERa在调控人EC黏附分子表达中的作用及性别差异。
比较来自年轻男性和女性的原代人主动脉EC的ERa、ERb和黏附分子表达;在HCAECs中敲低ERa,检测黏附分子变化。
研究雌激素对醛固酮诱导的ICAM1表达的影响。
用醛固酮、雌二醇或两者联合处理人EC(HAECs、HCAECs、HUVECs),检测ICAM1蛋白和mRNA水平。
确定雌激素是否阻止MR在ICAM1启动子上的富集。
在HUVECs中用醛固酮、雌二醇或联合处理1小时后进行ChIP-qPCR,检测MR和ERa在ICAM1启动子的结合。
验证MR在EC-ERa-KO诱导的斑块炎症和ICAM1表达中的必要性。
分析EC-MR-KO和DKO小鼠的斑块炎症和ICAM1表达,与对照组比较。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 动物模型 | VE-钙黏蛋白-Cre小鼠 | The Jackson Laboratory | -- |
| LDLR-KO小鼠 | The Jackson Laboratory | -- | |
| 高脂饮食(TD.88317) | Envigo | -- | |
| 代谢测量 | Amplex Red胆固醇检测试剂盒 | Invitrogen | -- |
| 生理测量 | CODA系统 | Kent Scientific | -- |
| 细胞分离 | Dynabeads磁珠 | Invitrogen | -- |
| 抗PECAM-1抗体 | Pharmingen | -- | |
| RNA提取 | DNeasy试剂盒 | Qiagen | -- |
| RNeasy Mini试剂盒 | Qiagen | -- | |
| RT-qPCR | iTaq Universal SYBR Green一步法试剂盒 | Bio-Rad | -- |
| 细胞培养 | 人脐静脉内皮细胞 | ATCC | -- |
| 原代人冠状动脉内皮细胞 | ATCC | -- | |
| 含10%胎牛血清的内皮细胞培养基 | Cell Biologics | -- | |
| 炭剥离血清 | Cell Biologics | -- | |
| 激素处理 | 醛固酮 | Sigma | -- |
| 雌二醇 | Sigma | -- | |
| 转染 | Lipofectamine RNAiMAX试剂 | Invitrogen | -- |
| Opti-MEM无血清培养基 | Invitrogen | -- | |
| DsiRNA | Integrated DNA Technology | -- | |
| 免疫沉淀 | 抗人MR抗体 | University of Iowa | rMR1–18 1D5 |
| 抗人ERa抗体 | Abcam | ab32063 | |
| 免疫印迹 | 增强化学发光试剂 | Fisher | -- |
| 数据分析 | GraphPad Prism 10版 | -- | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 动物模型 | 小鼠基因型(EC-ERa-KO、EC-MR-KO、DKO、LDLR-KO)、Cre重组酶(VE-Cdh-Cre)、性别和年龄(8周开始高脂饮食)、饮食(42%脂肪,0.2%胆固醇,12周) 阅读提示:Methods: Mouse models |
| 细胞培养 | 细胞类型(HUVECs、HAECs、HCAECs)、供体性别和年龄(24-40岁)、培养基和血清(10%胎牛血清或炭剥离血清)、培养至80%融合 阅读提示:Methods: In Vitro Human Endothelial Cell Studies and Reagents |
| 激素处理 | 激素浓度(10 nmol/L)、处理时间(60分钟用于ChIP,24小时用于蛋白/mRNA)、溶剂对照 阅读提示:Methods: In Vitro Human Endothelial Cell Studies and Reagents |
| 转染 | siRNA序列、浓度(20 nM/孔)、转染试剂(Lipofectamine RNAiMAX)、处理时间(24小时) 阅读提示:Methods: RNA Interference for ERa Knock Down |
| ChIP | 抗体(抗MR和抗ERa)、交联时间(10分钟)、超声条件(20循环)、引物(ICAM1启动子区域) 阅读提示:Methods: ChIP-PCR |