靶细胞制备
建立表达特定抗原的靶细胞系,用于后续T细胞结合和分离。
将LLC-JSP细胞转染OVA257-264小基因,H1975细胞转染HLA-A*03:01或HLA-A*02:01及目标抗原基因,K562细胞转染HLA-A*02:01和突变HER2,培养并验证抗原表达。
Unbiased avidity-based isolation of antigen-specific T cells
包含体外细胞模型、微流控平台验证、人类和小鼠系统实验,及功能验证(ELISPOT、MIP-1β ELISA),证据层级完整。
LLC-JSP-OVA细胞系 OT-I和C57BL/6 CD8+ T细胞 H1975肿瘤细胞系 健康供者PBMC来源的TCR-T细胞
使用的靶细胞系及其抗原表达状态:LLC-JSP-OVA表达SIINFEKL,H1975表达HLA-A*03:01或HLA-A*02:01 T细胞与靶细胞的比例:1:1 施加的剪切应力:恒定低剪切应力(1 dyne/cm²用于鼠,3 dyne/cm²用于人) 细胞染色方法:CFSE、CellTracker Deep Red、CMAC等 分离后功能验证:MIP-1β ELISA和IFN-γ ELISpot
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
建立表达特定抗原的靶细胞系,用于后续T细胞结合和分离。
将LLC-JSP细胞转染OVA257-264小基因,H1975细胞转染HLA-A*03:01或HLA-A*02:01及目标抗原基因,K562细胞转染HLA-A*02:01和突变HER2,培养并验证抗原表达。
获得用于ATTACH分离的抗原特异性T细胞或对照非特异性T细胞。
从小鼠脾脏分离CD8+ T细胞并扩增(OT-I和C57BL/6),或从健康供者PBMC分离CD8+ T细胞并转导TCR(EGFR、FOXM1、HER2等),以获得特异性T细胞。
使T细胞与靶细胞接触,通过TCR-MHC-肽相互作用产生特异性结合。
将荧光标记的T细胞加入铺有靶细胞的微流控通道或T-25瓶中,共孵育一定时间,使T细胞沉降并与靶细胞相互作用。
通过施加受控剪切应力,去除低亲和力或非特异性结合的T细胞,保留高亲和力的抗原特异性T细胞。
使用注射泵以恒定或递增的剪切应力冲洗通道,通过荧光显微镜观察并收集保留的细胞。
验证回收的细胞是否具有抗原特异性及功能活性。
回收保留的细胞(通过胰酶消化),用流式细胞术或荧光定量分析富集效果,并通过ELISA或ELISpot检测细胞因子分泌(如MIP-1β、IFN-γ)以验证功能。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | 潮霉素B | Corning | 30-240-CR |
| RPMI 1640培养基 | Corning | 10-040-CV | |
| 胎牛血清 | GenDEPOT | F601-050 | |
| 支原体检测试剂盒 | Lonza | LT07-218 | |
| T细胞分离 | 红细胞裂解液 | Santa Cruz Biotechnology | sc-296258 |
| 正常大鼠血清 | Sigma-Aldrich | R9759 | |
| EasySep小鼠CD8+分选试剂盒 | STEMCELL Technologies | 19853 | |
| 细胞计数 | VitaStain AOPI染色液 | Nexcelom Biosciences | CS2-0106 |
| Cellometer K2细胞计数仪 | Nexcelom Biosciences | -- | |
| T细胞扩增 | 抗小鼠CD3抗体(克隆2C11) | Bio X Cell | BE0001-1 |
| 抗小鼠CD28抗体(克隆37.51) | Bio X Cell | BE0015-1 | |
| 重组小鼠IL-7 | R&D Systems | 407-ML-005 | |
| 重组小鼠IL-2 | R&D Systems | 402-ML-020 | |
| TCR-T细胞生成 | Lipofectamine 3000转染试剂 | Thermo Fisher Scientific | L00015 |
| Retronectin重组人纤连蛋白片段 | Takara Bio | T100B | |
| T细胞分离 | 人CD8+ T细胞分选试剂盒 | STEMCELL Technologies | 17953 |
| T细胞激活 | ImmunoCult人CD3/CD28/CD2 T细胞激活剂 | STEMCELL Technologies | 10970 |
| TCR-T细胞扩增 | G-Rex培养容器 | Wilson Wolf | 80-660M |
| 流式细胞术 | APC标记的抗H-2Kb结合SIINFEKL抗体(克隆25-D1.16) | BioLegend | 141606 |
| 抗小鼠CD4-FITC抗体(克隆RM4-5) | BioLegend | 100509 | |
| 抗小鼠CD8-FITC抗体(克隆53-6.7) | BD Pharmingen | 553030 | |
| 抗小鼠CD8-PE抗体(克隆100708) | BioLegend | 100708 | |
| 7AAD活力染色液 | BioLegend | 420404 | |
| 免疫荧光染色 | CellTracker蓝色CMAC染料 | Invitrogen | C2110 |
| CFSE染料 | Invitrogen | 65-0850-85 | |
| CellTracker深红色染料 | Invitrogen | C34565 | |
| MitoTracker深红色染料 | Invitrogen | M22426 | |
| ELISA | 人MIP-1β(CCL4)即时ELISA试剂盒 | Invitrogen | BMS2030INST |
| SmartReader 96微孔板吸光度读数仪 | Accuris | -- | |
| ELISpot | HER2肽 | GenScript | -- |
| CEF对照肽池 | AnaSpec | -- | |
| 人IFN-γ ELISpot试剂盒 | CTL | hIFNg-2M/2 | |
| CTL S6 Entry M2读板仪 | CTL | -- | |
| 微流控分离 | μ-Slide I0.4 luer通道载玻片 | ibidi | 80176 |
| Luer锁母接头 | ibidi | 10825 | |
| 弯头公接头 | ibidi | 10802 | |
| 1.6 mm硅胶管 | ibidi | 10842 | |
| 哈佛仪器PHD ULTRA自动注射泵 | Harvard Apparatus | -- | |
| Nikon A1RSi共聚焦显微镜 | Nikon | -- | |
| Nikon ECLIPSE Ti共聚焦显微镜 | Nikon | -- | |
| 蔡司Axio Observer 7显微镜 | Zeiss | -- | |
| 链霉亲和素 | Thermo Fisher Scientific | 430431 | |
| 牛血清白蛋白 | MilliporeSigma | 9048-46-8 | |
| 磺基-NHS-LC-生物素 | Thermo Fisher Scientific | A39257 | |
| 活细胞成像 | 碘化丙啶 | -- | -- |
| EVOS显微镜 | Thermo Fisher Scientific | -- | |
| 统计分析 | GraphPad Prism V.10 | GraphPad Software | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 靶细胞制备 | 靶细胞系及其抗原表达:LLC-JSP-OVA表达SIINFEKL,H1975表达HLA-A*03:01或HLA-A*02:01及目标抗原,K562表达HLA-A*02:01和HER2 阅读提示:详见细胞系部分 |
| T细胞制备 | T细胞来源:OT-I和C57BL/6小鼠脾脏CD8+ T细胞扩增,或健康供者PBMC分离CD8+ T细胞并转导TCR 阅读提示:详见Murine CD8+ T cell isolation and expansion、Generation of TCR-T cells |
| 共孵育 | 效应细胞与靶细胞比例1:1,但不同实验中可能变化,需确认具体比例及孵育时间 阅读提示:见各实验描述 |
| 剪切应力分离 | 施加的剪切应力值及持续时间:鼠去富集为1 dyne/cm²持续5分钟,人实验为3 dyne/cm²持续5分钟 阅读提示:见Microfluidic isolation of antigen-specific T cells |
| 功能验证 | 使用HER2肽或CEF肽池进行ELISpot,或检测MIP-1β分泌,需确认具体刺激条件 阅读提示:见ELISPOT和MIP-1β ELISA部分 |