建立小鼠结直肠癌肝转移模型
建立模拟结直肠癌肝转移的动物模型,用于评估后续治疗效果。
向7-8周龄雄性BALB/c小鼠脾内注射1.4×10^5 CT26细胞(悬浮于200µL PBS),通过H&E染色验证肝转移灶的形成。
Vaccinia virus armed with IL-21 can cure murine colorectal cancer liver metastases via intravenous administration
体外细胞实验、小鼠疾病模型、流式细胞术、IFN-γ释放实验、RNA-seq及生物信息学分析等多个独立证据层级,并包含功能验证和机制验证。
CT26小鼠结直肠癌细胞系 BALB/c小鼠结直肠癌肝转移模型 BALB/c小鼠
VVLΔTK-STCΔN1L-mIL21给药剂量为2×10^8 PFU,尾静脉注射 治疗时间点为第7、9、11、21、23、25天 肝转移模型通过脾内注射1.4×10^5 CT26细胞建立 生存分析每组11只小鼠 RT-qPCR检测病毒拷贝数,使用VLTF基因特异性引物
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
建立模拟结直肠癌肝转移的动物模型,用于评估后续治疗效果。
向7-8周龄雄性BALB/c小鼠脾内注射1.4×10^5 CT26细胞(悬浮于200µL PBS),通过H&E染色验证肝转移灶的形成。
评估VVLΔTK-STCΔN1L-mIL21经尾静脉注射对CRLM小鼠的治疗效果。
在模型建立后第7、9、11、21、23、25天,通过尾静脉注射PBS、2×10^8 PFU/140µL的VVLΔTK-STCΔN1L或VVLΔTK-STCΔN1L-mIL21,并监测小鼠生存期。
验证静脉注射后病毒能否到达肝转移灶并持续存在。
在第7、9、11天给予病毒治疗后,于第14和18天收集肝脏,提取基因组DNA,通过qPCR(RT-qPCR)检测VLTF基因拷贝数。
评估病毒治疗对肝和脾中T细胞、树突状细胞和巨噬细胞亚群的影响。
在第14和18天收集肝和脾组织,制备单细胞悬液,用特异性抗体染色,通过流式细胞术分析CD8+ T、CD4+ T、Treg、TEM、树突状细胞、巨噬细胞等亚群。
评估脾细胞在体外对抗原刺激的响应能力,反映T细胞功能。
从脾脏中分离CD45+细胞,与CT26细胞、KRAS、GP70和B8R肽共孵育72小时,通过ELISA检测上清中IFN-γ的水平。
全局分析病毒治疗对CD8+和CD4+ T细胞基因表达及信号通路的影响,揭示机制。
在第18天收集脾脏,使用磁珠分选CD8+和CD4+ T细胞,进行转录组测序,并进行差异表达基因筛选、GO富集分析和CIBERSORT免疫浸润分析。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | RPMI 1640培养基 | -- | -- |
| 胎牛血清 | -- | -- | |
| 动物实验 | 阿佛丁 | -- | -- |
| 病毒检测 | Fast Pure细胞/组织DNA提取迷你试剂盒 | Vazyme | DC102-01 |
| StepOnePlus实时荧光定量PCR系统 | -- | -- | |
| 流式细胞术 | CD45-PerCP抗体 | BioLegend | 103130 |
| CD3-PE/Cyanine7抗体 | BioLegend | 100220 | |
| CD8a-FITC抗体 | BioLegend | 100706 | |
| CD4-BV510抗体 | BioLegend | 100449 | |
| CD62L-PE抗体 | BioLegend | 100408 | |
| CD127-BV711抗体 | BioLegend | 135035 | |
| CD25-BV421抗体 | BioLegend | 102034 | |
| CD11b-FITC抗体 | BioLegend | 101206 | |
| F4/80-PE/Cyanine7抗体 | BioLegend | 123114 | |
| MHCII-BV605抗体 | BioLegend | 107639 | |
| CD163-PE/Dazzle 594抗体 | BioLegend | 155315 | |
| CD3-BV510抗体 | BioLegend | 100233 | |
| CD49b-APC抗体 | BioLegend | 103515 | |
| Gr1-PE抗体 | BioLegend | 108407 | |
| CD11C-BV711抗体 | BioLegend | 117349 | |
| BD FACS Aria III流式细胞仪 | BD | -- | |
| IFN-γ释放实验 | CD45小鼠磁珠 | Miltenyi | 130-052-301 |
| 小鼠IFN-γ未包被ELISA试剂盒 | Invitrogen | 88-7314-88 | |
| RNA-seq | CD8a (Ly2)小鼠磁珠 | Miltenyi | 130-117-044 |
| CD4 (L3T4)小鼠磁珠 | Miltenyi | 130-117-043 |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 动物模型建立 | 小鼠品系:BALB/c,雄性,7-8周龄;麻醉剂Avertin剂量:0.45 mg/g体重;CT26细胞剂量:1.4×10^5个/200µL PBS;注射途径:脾内注射 阅读提示:Materials and methods - Murine colorectal cancer liver metastases models establishment |
| 药物治疗方案 | 病毒剂量:2×10^8 PFU/140µL;给药途径:尾静脉注射;给药时间点:第7、9、11、21、23、25天;对照组:PBS、VVLΔTK-STCΔN1L 阅读提示:Materials and methods - Survival analysis |
| 病毒拷贝数检测 | 治疗时间:第7、9、11天;检测时间:第14和18天;DNA提取试剂盒:Fast Pure Cell/Tissue DNA Isolation Mini Kit;qPCR引物和探针:VLTF基因特异性 阅读提示:Materials and methods - RT-qPCR |
| 流式细胞术分析 | 治疗时间:第7、9、11天;检测时间:第14和18天;抗体组合(T细胞、髓系细胞);仪器:BD FACS Aria III 阅读提示:Materials and methods - Flow cytometry |
| IFN-γ释放实验 | CD45+细胞分离:CD45 MicroBeads;刺激物:MMC-CT26、KRAS (GADGVGKSA)、GP70 (SPSSYVYHQF)、B8R (TSYKFESV);孵育时间:72小时;ELISA试剂盒:Mouse IFN-γ uncoated ELISA kit 阅读提示:Materials and methods - Interferon-γ release assay |
| RNA-seq | CD8+和CD4+ T细胞分离:磁珠分选;测序时间:第18天;差异表达基因筛选标准:|log2FC|>1 (CD8) 或 >0.5 (CD4), p<0.05 阅读提示:Materials and methods - Transcriptome sequencing and Bioinformatics analysis |