线粒体移植对大鼠盲肠浆液模型的免疫调节作用

The immune modulatory effects of mitochondrial transplantation on cecal slurry model in rat

作者信息Jung Wook Hwang, Min Ji Lee, Tae Nyoung Chung, Han A Reum Lee, Jung Ho Lee, Seo Yoon Choi, Ye Jin Park, Chul Hee Kim, Isom Jin, Seong Hoon Kim, Hyo-Bum Kwak, Jun-Won Heo, Kwangmin Na, Sangchun Choi, Yong-Soo Choi, Kyuseok Kim
PMID33413559
期刊Crit Care
发布时间2021-01-07
DOI10.1186/s13054-020-03436-x

实验完整度

包含体内大鼠盲肠浆液模型、体外LPS刺激人单核细胞模型,并验证存活率、细菌清除、免疫调节、凋亡和线粒体动力学。

主要模型

大鼠盲肠浆液脓毒症模型 人PBMC来源单核细胞LPS刺激模型 L6细胞和脐带间充质干细胞来源分离线粒体

重点核对

大鼠模型中盲肠浆液剂量:6.0 mL/kg(生存研究和急性炎症研究)或4.5 mL/kg(免疫麻痹研究) 线粒体移植剂量:50 μg,通过尾静脉注射,在脓毒症诱导后1小时和7小时给予 LPS刺激浓度:体内外模型使用1 μg/mL(巨噬细胞极化实验)或10 ng/mL(人单核细胞模型),人单核细胞模型中LPS刺激时间4小时 ETC抑制剂处理:分离的线粒体与10 mM二甲双胍(复合物I抑制剂)或1 μM寡霉素(复合物V抑制剂)在37°C孵育30分钟 样本量:生存研究每组n=16;急性炎症研究每组n=6;免疫麻痹研究每组n=10-13

摘要

脓毒症具有高死亡率,但尚无特效药物被证明有效,这推动了新药的开发。在免疫学上,脓毒症可涉及过度炎症、免疫麻痹或两者兼有,这可能给药物开发带来挑战。近期,线粒体移植已成为治疗多种涉及线粒体功能障碍疾病的一种治疗方式,但从未在脓毒症中进行过测试。我们从L6肌细胞和脐带间充质干细胞中分离线粒体,并测试了分离线粒体的质量。我们进行了体内和体外脓毒症研究。我们研究了静脉注射线粒体移植对大鼠盲肠浆液模型的存活率、细菌清除率和免疫应答的影响。此外,我们观察了线粒体移植对过度炎症和免疫麻痹两种免疫反应的影响。为此,我们研究了大鼠盲肠浆液模型脾脏中早期和晚期细胞因子的产生。我们还使用了脂多糖(LPS)刺激的人PBMC单核细胞模型来确认线粒体移植的免疫学效应。在脓毒症脾脏中研究了凋亡和内在凋亡途径。线粒体移植改善了存活率和细菌清除率。它还减轻了脓毒症脾脏中的线粒体功能障碍和细胞凋亡,并减弱了大鼠盲肠浆液模型脾脏中的过度炎症和免疫麻痹。这一效应通过LPS刺激的人PBMC研究得到证实。在大鼠多微生物盲肠浆液模型中,线粒体移植改善了结局,可能具有免疫调节作用。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
线粒体移植是否对脓毒症具有治疗潜力,并如何影响免疫反应?
核心机制
线粒体移植通过减轻脾脏线粒体功能障碍和细胞凋亡,调节免疫反应,在过度炎症阶段抑制炎症,在免疫麻痹阶段增强免疫,表现出双相免疫调节作用。
主要证据
在大鼠盲肠浆液模型中,线粒体移植提高了存活率和细菌清除率,减轻了脾脏线粒体功能障碍和凋亡;在LPS刺激的人单核细胞模型中,线粒体移植减少了TNF-α的产生,并通过ETC抑制剂封闭效应支持机制。
研究意义
线粒体移植作为脓毒症的一种潜在新疗法,具有改善结局的效果。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

线粒体分离与质量评估

获取可用于移植的功能性线粒体,并验证其质量。

从L6细胞和UC-MSCs中分离线粒体,并通过粒度和zeta电位、蛋白质含量、ATP含量和合成能力、纯度(MitoTracker Red染色和细胞器标志物Western blot)评估质量。

2

大鼠盲肠浆液脓毒症模型建立与分组

建立多微生物脓毒症模型,并分配实验组以评估线粒体移植的效果。

从供体大鼠收集粪便,用5%葡萄糖盐水稀释(1:3)后腹腔注射,根据体重调整体积。随后随机分配至线粒体移植组或对照组。

3

体内安全性及疗效评估(存活率、细菌清除、乳酸)

评估线粒体移植对脓毒症大鼠生存和感染控制的影响。

在生存实验中监测14天存活;在免疫麻痹阶段测定脾脏和血液中的细菌负荷(CFU)以及血浆乳酸浓度。

4

免疫反应评估(急性炎症和免疫麻痹阶段)

评估线粒体移植对脓毒症不同阶段免疫反应的影响。

在急性炎症阶段(6小时)测量脾脏和血浆中的TNF-α、IL-6、IL-10;在免疫麻痹阶段(24小时)测量脾细胞离体LPS刺激后的细胞因子产生和吞噬功能。

5

离体人单核细胞模型验证

在人体细胞中验证线粒体移植对过度炎症和免疫麻痹的免疫调节作用。

从健康志愿者PBMCs中分离CD14+单核细胞,用LPS刺激建立过度炎症或内毒素耐受模型,在LPS刺激前或后加入线粒体,测量TNF-α产生。

6

凋亡和线粒体动力学分析

探讨线粒体移植对脓毒症脾脏凋亡和线粒体分裂融合的影响。

通过TUNEL染色检测脾脏凋亡;通过Western blot检测内在凋亡通路(BAX、BCL-2、细胞色素c、裂解的caspase 9和caspase 3)和线粒体动力学标志物(OPA1、MFN2、DRP-1、p-DRP-1)。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
Oroboros Oxygraph-2KOroboros Instruments--
Malvern Nano-ZS 90Malvern Instruments--
Pierce BCA蛋白测定试剂盒Thermo Fisher--
MitoTracker Red CMXROSMolecular Probes--
CytoFLEXBeckman Coulter--
CellTiter-Glo发光细胞活力检测试剂盒Promega--
Synergy HTXBioTex--
TSA琼脂平板BD Biosciences--
乳酸比色测定试剂盒BioVison--
VersaMaxMolecular Devices--
DeadEnd比色TUNEL检测系统PromegaG7130
RPMI1640培养基Gibco--
胎牛血清Gibco--
CD14磁珠Miltenyi Biotec--
LS柱Miltenyi Biotec--
QuadroMACS分选器Miltenyi Biotec--
脂多糖(大肠杆菌O111:B4)Sigma-Aldrich--
TNF-α ELISA试剂盒R&D Systems Inc.--
寡霉素----
FITC-CD80抗体eBioscience--
RIPA裂解液Biosesang--
蛋白酶抑制剂混合物Sigma-Aldrich--
PVDF膜Millipore--
ECL Plus化学发光试剂Bio-Rad--
发光图像分析仪(LAS-1000)Fuji Film--
IL-6 ELISA试剂盒R&D SystemsR6000B
IL-10 ELISA试剂盒Abcamab214566
TNF-α ELISA试剂盒Abcamab236712
Leica CM1950冷冻切片机Leica Biosystems--
ECLIPSE E400荧光显微镜Nikon--

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
线粒体分离与质量评估
L6细胞和UC-MSCs的来源、分离离心参数、储存条件(4°C)
阅读提示:Methods: Mitochondria isolation, Quality control of isolated mitochondria
大鼠盲肠浆液模型建立
大鼠品系、体重范围(270-330 g)、盲肠浆液剂量(6.0或4.5 mL/kg)、麻醉药物剂量(Zoletil 50 mg/kg,Xylazine 10 mg/kg)、辅助治疗(头孢曲松150 mg/kg,补液30 mL/kg)
阅读提示:Methods: In vivo cecal slurry model in rats
线粒体移植
线粒体剂量(50 μg)、给药途径(尾静脉)、时间点(脓毒症诱导后1小时和7小时)
阅读提示:Methods: Experiment 1 Survival study, Experiment 2 Acute hyperinflammation study, Experiment 3 Late immune paralysis study
免疫反应评估
采样时间点(6小时或24小时)、细胞因子测量(TNF-α、IL-6、IL-10)、LPS刺激浓度(1 μg/mL或10 ng/mL)和持续时间(5和24小时或4小时)
阅读提示:Methods: Ex vivo splenocyte stimulation with LPS, In vitro LPS stimulation model, Cytokine measurements
凋亡和线粒体动力学分析
TUNEL染色切片厚度(3 μm)、计数方法(5个非连续视野)、Western blot抗体清单及稀释比例
阅读提示:Methods: Apoptosis study, Mitochondrial dynamics study, Western blot analysis