bASC分离和表征
从乳腺癌患者的肿瘤邻近和远处脂肪组织分离bASCs,并进行表面标志物和分化能力鉴定。
术前收集乳腺脂肪组织,基于距离肿瘤≤3cm(aT)或≥9cm(dT)分离bASCs,进行细胞培养和早期传代(P2-P6),并通过流式细胞术验证阳性(CD73、CD90、CD146)和阴性标志物(CD14、CD31、CD106)。
Obesity- and tumor-derived signals drive cancer-associated state transitions in breast mesenchymal stromal/stem cells reprogrammed by IL1RA or JAK inhibition
包含原代bASCs分离、RNA-seq、scRNA-seq重分析、qPCR、ELISA、胶原收缩、共培养、ALDH活性等多层级实验,并进行功能验证和机制探究。
人乳腺脂肪组织来源间充质基质/干细胞(bASCs) MCF7人乳腺癌细胞系 MDA-MB-231人三阴性乳腺癌细胞系
患者BMI分层:肥胖(BMI≥35)与瘦弱(BMI<25)的bASC亚组对比 bASC亚组:肿瘤邻近(aT)与肿瘤远处(dT)来源的配对样本 TGFβ处理浓度5 ng/ml,处理3天诱导myCAF表型 IL1RA(anakinra)浓度10 μg/ml、JAKi(AZD1480)浓度500 nM处理72小时 共培养时间最长14天,用于EMT和干性评估
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
从乳腺癌患者的肿瘤邻近和远处脂肪组织分离bASCs,并进行表面标志物和分化能力鉴定。
术前收集乳腺脂肪组织,基于距离肿瘤≤3cm(aT)或≥9cm(dT)分离bASCs,进行细胞培养和早期传代(P2-P6),并通过流式细胞术验证阳性(CD73、CD90、CD146)和阴性标志物(CD14、CD31、CD106)。
比较不同bASC亚组(ln-aT、ln-dT、ob-aT、ob-dT)的基因表达差异,揭示肿瘤和肥胖对bASC状态的影响。
对每个亚组提取总RNA进行全基因组RNA-seq,鉴定差异表达基因,并进行KEGG和GO通路富集分析。
验证RNA-seq发现的ECM相关基因在蛋白水平的表达变化。
通过qPCR验证FN1、COL1A1和COL4A1的mRNA表达,并通过免疫荧光染色评估3D球体中的蛋白表达。
评估不同bASC亚组的运动能力和向癌细胞趋化的能力。
进行运动性实验和归巢实验,观察bASC向MDA-MB-231细胞的迁移。
确定bASC在不同BMI条件下向iCAF或myCAF样表型的分化。
利用RNA-seq和qPCR分析CAF相关标志物(如FAP、CCL2、LIF、IL1R1、PDGFRβ、PDPN、ACTA2),并通过免疫荧光检测iCAF标志物CXCL5,进行胶原凝胶收缩实验衡量myCAF活性。
验证TGFβ是否足以诱导myCAF表型,并确认TGFβ信号通路的必要性。
用重组TGFβ处理ln-和ob-dT bASCs 3天,进行RNA-seq和qPCR分析CAF基因表达;用A83-01抑制ALK5/ALK4/ALK7,检测myCAF标志物变化。
评估IL1RA或JAK抑制剂(AZD1480)能否逆转肿瘤教育的bASC表型。
对ln-和ob-aT bASCs分别用IL1RA(10 μg/ml)、JAKi(500 nM)或TGFβ(5 ng/ml)处理72小时,随后通过RNA-seq、qPCR和ELISA分析iCAF和myCAF标志物及细胞因子表达。
评估重编程的bASC对乳腺癌细胞EMT的影响。
将MCF7细胞与预处理后的ln-或ob-aT bASCs共培养14天,随后通过FACS分选(CD24/CD73)和RNA-seq分析EMT相关基因,并进行免疫荧光染色检测E-cadherin和vimentin。
评估重编程的ob-aT bASC对MDA-MB-231细胞癌症干细胞特征的影响。
将MDA-MB-231细胞与预处理后的ob-aT bASCs共培养14天,分选(CD90)后RNA-seq分析CSC相关基因,进行ALDH活性检测(ALDEFLUOR)和qPCR验证MYC通路基因。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | DMEM培养基 | -- | -- |
| 胎牛血清 | -- | -- | |
| 青霉素 | -- | -- | |
| 链霉素 | -- | -- | |
| 细胞消化 | 胶原酶 | -- | -- |
| 红细胞裂解 | 红细胞裂解液 | -- | -- |
| 药物处理 | 阿那白滞素 | -- | -- |
| AZD1480 | -- | -- | |
| 转化生长因子β | -- | -- | |
| 白细胞介素1α | -- | -- | |
| 白血病抑制因子 | -- | -- | |
| A83-01 | -- | -- | |
| 胶原凝胶收缩实验 | 大鼠尾胶原I型 | Thermo Fisher Scientific | A1048301 |
| ALDH活性检测 | ALDEFLUOR试剂盒 | Stem Cell Technologies | 01700 |
| 流式分析 | FACSCalibur流式细胞仪 | BD Bioscience | -- |
| 胶原凝胶实验成像 | AxioObserver Z1显微镜 | Zeiss | -- |
| AxioCam MRm相机 | Zeiss | -- | |
| 数据分析 | ImageJ软件 | -- | -- |
| 流式数据分析 | Flowing软件 | -- | -- |
| 统计分析 | R | -- | -- |
| 单细胞数据分析 | Seurat | -- | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| bASC分离 | 组织来源:肿瘤邻近(aT)≤3cm,远处(dT)≥9cm;患者BMI分类(瘦弱BMI<25,肥胖BMI≥35);去除非贴壁细胞 阅读提示:Materials and methods: bASC isolation |
| CAF表型诱导 | TGFβ浓度5 ng/ml处理3天;A83-01浓度1 μM处理3天 阅读提示:Results: TGFβ drives myCAF-like de-differentiation |
| 药物处理 | IL1RA(anakinra)浓度10 μg/ml;JAKi(AZD1480)浓度500 nM;处理72小时 阅读提示:Results: IL1RA or JAKi reprograms cancer-educated bASCs |
| 共培养实验 | bASC与乳腺癌细胞共培养14天;分选标志物:MCF7用CD24/CD73,MDA-MB-231用CD90 阅读提示:Results: Reprogrammed ln- and ob-aT bASCs...; Figure 6; Figure 7 |
| ALDH活性检测 | 使用ALDEFLUOR试剂盒;流式细胞术或免疫荧光定量 阅读提示:Materials and methods: Cell cycle distribution...; Results: Blockade of IL1R... |