肥胖和肿瘤来源的信号驱动由IL1RA或JAK抑制重编程的乳腺癌间充质基质/干细胞中的癌症相关状态转变

Obesity- and tumor-derived signals drive cancer-associated state transitions in breast mesenchymal stromal/stem cells reprogrammed by IL1RA or JAK inhibition

作者信息Andreas Ritter, Samira Catharina Hoock, Nina-Naomi Kreis, Susanne Roth, Rosario Carolina Torres Colin, Alexandra Friemel, Julia Maria Wildner, Ilona Scherr, Frank Louwen, Christine Solbach, Juping Yuan
PMID41645323
发布时间2026-02-05
DOI10.1186/s40164-026-00747-7

实验完整度

包含原代bASCs分离、RNA-seq、scRNA-seq重分析、qPCR、ELISA、胶原收缩、共培养、ALDH活性等多层级实验,并进行功能验证和机制探究。

主要模型

人乳腺脂肪组织来源间充质基质/干细胞(bASCs) MCF7人乳腺癌细胞系 MDA-MB-231人三阴性乳腺癌细胞系

重点核对

患者BMI分层:肥胖(BMI≥35)与瘦弱(BMI<25)的bASC亚组对比 bASC亚组:肿瘤邻近(aT)与肿瘤远处(dT)来源的配对样本 TGFβ处理浓度5 ng/ml,处理3天诱导myCAF表型 IL1RA(anakinra)浓度10 μg/ml、JAKi(AZD1480)浓度500 nM处理72小时 共培养时间最长14天,用于EMT和干性评估

摘要

乳腺癌中的肿瘤微环境(TME)是由癌细胞与其周围的基质细胞群之间的相互作用塑造的。在这里,我们展示了乳腺癌脂肪组织来源的基质/干细胞(bASCs)响应肿瘤线索和全身代谢状态而发生不同的状态转变。通过使用来自患有或不患有肥胖的乳腺癌患者的肿瘤邻近和肿瘤远处脂肪组织原代bASCs,我们鉴定了两种功能不同的肿瘤教育基质表型:在瘦弱邻近bASCs(ln-aT)中占主导的富含细胞因子的炎症性CAF样(iCAF)状态,以及在肥胖邻近bASCs(ob-aT)中出现的肌成纤维细胞CAF样(myCAF)状态。重要的是,转化生长因子β(TGFβ)足以在肥胖预处理的bASCs中诱导myCAF样重编程,而白细胞介素1(IL1)-Janus激酶(JAK)信号促进iCAF特征。对乳腺癌样本单细胞RNA-seq数据的重新分析显示,在肥胖个体中,基质和免疫细胞类型中TGFβ表达增加。机制上,IL1受体阻断(anakinra)或JAK抑制(AZD1480)可逆转iCAF和myCAF表型,并在功能上抑制基质驱动的上皮间质转化以及乳腺癌细胞中的癌症干性。这些发现建立了肥胖信号、基质可塑性和乳腺癌进展之间的机制联系,并揭示IL1/JAK信号是治疗性重编程乳腺癌基质的可行靶点。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
肥胖和肿瘤信号如何影响乳腺癌中bASCs的状态转变,以及IL1/JAK信号通路是否可作为重编程基质的靶点?
核心机制
TGFβ信号足以驱动肥胖预处理的bASCs向myCAF表型转化,而IL1/JAK信号则促进iCAF表型;IL1RA或JAK抑制可逆转两种表型,并通过下调MYC信号抑制基质诱导的EMT和癌症干细胞形成。
主要证据
基于RNA-seq和scRNA-seq分析及功能实验,包括凝胶收缩实验、共培养实验、ALDH活性检测,证实ob-aT bASCs高表达ECM和myCAF标志物,并通过分泌因子激活MYC信号促进干性。
研究意义
揭示IL1/JAK信号轴作为治疗性重编程乳腺癌基质的可操作靶点,为肥胖相关乳腺癌(尤其TNBC)的基质靶向治疗提供理论依据。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

bASC分离和表征

从乳腺癌患者的肿瘤邻近和远处脂肪组织分离bASCs,并进行表面标志物和分化能力鉴定。

术前收集乳腺脂肪组织,基于距离肿瘤≤3cm(aT)或≥9cm(dT)分离bASCs,进行细胞培养和早期传代(P2-P6),并通过流式细胞术验证阳性(CD73、CD90、CD146)和阴性标志物(CD14、CD31、CD106)。

2

转录组分析

比较不同bASC亚组(ln-aT、ln-dT、ob-aT、ob-dT)的基因表达差异,揭示肿瘤和肥胖对bASC状态的影响。

对每个亚组提取总RNA进行全基因组RNA-seq,鉴定差异表达基因,并进行KEGG和GO通路富集分析。

3

ECM相关基因和蛋白表达验证

验证RNA-seq发现的ECM相关基因在蛋白水平的表达变化。

通过qPCR验证FN1、COL1A1和COL4A1的mRNA表达,并通过免疫荧光染色评估3D球体中的蛋白表达。

4

运动能力和趋化性评估

评估不同bASC亚组的运动能力和向癌细胞趋化的能力。

进行运动性实验和归巢实验,观察bASC向MDA-MB-231细胞的迁移。

5

CAF样表型鉴定

确定bASC在不同BMI条件下向iCAF或myCAF样表型的分化。

利用RNA-seq和qPCR分析CAF相关标志物(如FAP、CCL2、LIF、IL1R1、PDGFRβ、PDPN、ACTA2),并通过免疫荧光检测iCAF标志物CXCL5,进行胶原凝胶收缩实验衡量myCAF活性。

6

TGFβ诱导和抑制实验

验证TGFβ是否足以诱导myCAF表型,并确认TGFβ信号通路的必要性。

用重组TGFβ处理ln-和ob-dT bASCs 3天,进行RNA-seq和qPCR分析CAF基因表达;用A83-01抑制ALK5/ALK4/ALK7,检测myCAF标志物变化。

7

IL1RA或JAKi重编程实验

评估IL1RA或JAK抑制剂(AZD1480)能否逆转肿瘤教育的bASC表型。

对ln-和ob-aT bASCs分别用IL1RA(10 μg/ml)、JAKi(500 nM)或TGFβ(5 ng/ml)处理72小时,随后通过RNA-seq、qPCR和ELISA分析iCAF和myCAF标志物及细胞因子表达。

8

共培养实验评估EMT

评估重编程的bASC对乳腺癌细胞EMT的影响。

将MCF7细胞与预处理后的ln-或ob-aT bASCs共培养14天,随后通过FACS分选(CD24/CD73)和RNA-seq分析EMT相关基因,并进行免疫荧光染色检测E-cadherin和vimentin。

9

共培养实验评估癌症干性

评估重编程的ob-aT bASC对MDA-MB-231细胞癌症干细胞特征的影响。

将MDA-MB-231细胞与预处理后的ob-aT bASCs共培养14天,分选(CD90)后RNA-seq分析CSC相关基因,进行ALDH活性检测(ALDEFLUOR)和qPCR验证MYC通路基因。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
DMEM培养基----
胎牛血清----
青霉素----
链霉素----
胶原酶----
红细胞裂解液----
阿那白滞素----
AZD1480----
转化生长因子β----
白细胞介素1α----
白血病抑制因子----
A83-01----
大鼠尾胶原I型Thermo Fisher ScientificA1048301
ALDEFLUOR试剂盒Stem Cell Technologies01700
FACSCalibur流式细胞仪BD Bioscience--
AxioObserver Z1显微镜Zeiss--
AxioCam MRm相机Zeiss--
ImageJ软件----
Flowing软件----
R----
Seurat----

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
bASC分离
组织来源:肿瘤邻近(aT)≤3cm,远处(dT)≥9cm;患者BMI分类(瘦弱BMI<25,肥胖BMI≥35);去除非贴壁细胞
阅读提示:Materials and methods: bASC isolation
CAF表型诱导
TGFβ浓度5 ng/ml处理3天;A83-01浓度1 μM处理3天
阅读提示:Results: TGFβ drives myCAF-like de-differentiation
药物处理
IL1RA(anakinra)浓度10 μg/ml;JAKi(AZD1480)浓度500 nM;处理72小时
阅读提示:Results: IL1RA or JAKi reprograms cancer-educated bASCs
共培养实验
bASC与乳腺癌细胞共培养14天;分选标志物:MCF7用CD24/CD73,MDA-MB-231用CD90
阅读提示:Results: Reprogrammed ln- and ob-aT bASCs...; Figure 6; Figure 7
ALDH活性检测
使用ALDEFLUOR试剂盒;流式细胞术或免疫荧光定量
阅读提示:Materials and methods: Cell cycle distribution...; Results: Blockade of IL1R...